第一篇：病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度
病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度 第三军医大学第二附属医院
病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度 第一章 总则
第一条 为进一步规范病理标本运送流程，提高病理诊断质量，保证医疗质量和医疗安全，根据等级医院评审及有关规范要求，结合医院实际，制订本制度。
第二条 病理标本包括手术前活检、手术中取样冰冻组织、手术后切除组织以及穿刺、脱落细胞学标本。
第三条 本制度适用于全院各科室医务人员。第二章 病理标本采集
第四条 采取标本时，勿用有齿镊或钳夹取，勿挤压，以免发生变形。手术标本送检前勿自行剖取，应保持原形全部送检。必须剖取时，最好邀请病理医师在场；或在病理检查申请单中详细描述剖取前后情况。临床科室对手术标本有特殊要求时（如照相等），应提前通知病理科，以免病理科取材时破坏其完整性。
第五条 标本应置于敞口容器内，固定液不少于标本体积的7－10倍，标本从离体到固定的时间不宜超过半小时。
第六条 冰冻切片的手术标本应保持新鲜，不得加用固定液或用含水溶液清洗，以免影响制片和诊断。
第七条 痰液细胞学检查的标本必须新鲜，从呼吸道深部咯出。咯痰前先漱口，痰中不应含食物碎渣和唾液，一般连续送检三天。第八条 胸、腹水等体液细胞学检查应保持标本新鲜、及时送检。第九条 宫颈刮/涂片及穿刺液应及时做成涂片送检。
第三章 送检病理申请
第十条 病理申请单上各项内容均应逐项填写，字迹清晰可辨，并由申请医师签名确认。痰液细胞学检查、体液细胞学检查、涂片检查的申请单填写参照病理检查申请单的要求，并在“标本来源”一项中注明标本的类别：“痰”、“胸水”、“涂片”等。
第十一条 凡需行术中冰冻病理检查者，临床医师应在手术前一天通知病理科，并与患者（或家属）签订《手术中冰冻切片快速病理检查知情同意书》。
第十二条 冰冻标本申请单除填写病人一般情况外，还应填写影像学、同位素及腔镜检查等相关结果，并注明手术部位，重点部位应做标记或加以说明，同时注明手术科室医师所在的手术间及手术医师、巡回护士电话，以便病理科与手术医师取得联系。
第十三条 所有送检标本容器的标签上均应注明患者姓名及ID号。第四章 标本运送及交接
第十四条 手术室、临床科室和检查室应指派专人负责运送病理标本，凡术中病理标本由手术室安排专人送检。
第十五条 病理标本的送检、接收科室均应建立病理标本签收登记本，每次送检标本必须与申请单同时送达，且接送双方核对无误后，在签收登记本上确认签名，以避免丢失标本或申请单内容与标本不一致。第十六条 病理标本运送至少采用二层容器包装，第一层容器为直接装样品，应防渗漏。第二层容器，容纳并保护第一层容器的运输用外层包装箱，应密闭、易于消毒。
第十七条 运送人员在运输途中禁止逗留。凡需送检冰冻病理标本的，应在手术医师手术切除标本后立即送到病理科。
第十八条 标本接收确认项目：标本容器是否完好、有无破损，标本和固定液有无，标本容器标签上是否注明患者姓名及ID号，申请单是否逐项填写、字迹是否清晰可辨、申请内容是否与标本相符。第十九条 验收标本人员不得对申请单中由临床医师填写的各项内容进行改动。
第二十条 如出现标本严重自溶、腐败、干涸，标本过小，不能或难以制作切片等情况，接收科室可不予接收。
第五章 取材与保存管理
第二十一条 病理科按照相关技术操作规范进行病理组织取材。凡遇送检标本与临床医师填写的申请单有疑问时，病理科应及时与临床医师沟通，必要时邀请临床医师到场指导取材。
第二十二条 病理科应建立病理切片及蜡块保存制度。所有外检病理标本保存时间不少于1个月，尸检大体标本保存时间不少于1年，病理切片、蜡块和阳性细胞学涂片保存期限不低于15年，阴性细胞学涂片保存期限不低于1年。涉及医疗纠纷或事故的标本，在未做出鉴定处理之前，应单独妥善管理，待鉴定结论后方可按规定处理及保存。第六章 诊断报告
第二十三条 病理科应建立病理医师与临床医师沟通机制。在取材、报告等方面如有疑问时应及时与临床沟通，以保证报告的及时性和准确性。
第二十四条 病理科应建立科内会诊制度和院际会诊制度，疑难病理应提交科内会诊或院际会诊，以避免误诊、漏诊，并做好相关会诊记录。第二十五条 所有病理诊断报告由具有资质的病理医师以纸质形式签发，尸检报告必须由科主任或主任医师审核签发，冰冻病理结果实行双复核制度。常规病理诊断报告时间5个工作日，细胞学诊断报告时间2个工作日（疑难病例和特殊标本除外），冰冻病理结果报告时间30分钟。
第二十六条 以下情况不适宜做“冰冻”诊断：
1.疑为恶性淋巴瘤，送检组织过小（检材长径≤0.2cm）或为脂肪、骨组织和钙化组织；
2.需要依据核分裂象计数判断良、恶性的软组织肿瘤； 3.已知具有传染性的标本；
4.胸、腹水、心包液及术中的冲洗液等。
第二十七条 所有诊断报告由病理科指定专人负责发送，并做好与接收科室的确认签收。
第二十八条 病理标本和病理诊断报告不允许病人或家属自送和自取，如有特殊情况，病理科签收人员必须核查身份，并请患方或家属签名确认。
第二篇：14病理标本的采集、运送、接受、取材、保存制度
病理标本的采集、运送、接受、取材、保存制度
一、病理标本的采集
1、组织标本的收集：在活检或手术过程中，对病变部分应尽量保存完好，完整切除，避免挤压变形，活检组织应取肿瘤的部分，而不要取肿瘤周围、表面或坏死部分。
2、组织标本的固定：手术标本切除后应马上用10%的中性福尔马林固定，以免细胞自溶影响诊断，大标本应间隔3CM用平行切口切开，以利固定液渗透。
3、细胞学标本的收集：脱落细胞学检查标本，包括痰、胸腹水、脑脊液等取材后马上送病理科；咽、喉、宫颈、阴道拭子涂片等，及时涂片固定；穿刺细胞学标本，穿刺后置于载玻片，用另一张载玻片轻柔地推片，将穿刺物均匀地涂在载玻片上（不能太厚），马上固定于95%的乙醇（或乙醚酒精）。
4、标本容器上写上或贴上有病人姓名的标签，涂片应有编号及病人姓名。
二、病理标本的运送
1、临床各科室及门诊应安排人员负责标本的清点、查对、登记、运送（不允许让病人或其家属送标本），并与病理科值班人员交接核对，并在专设的标本登记本上签收。
2、手术室标本（含门诊小手术室）：由手术室工作人员根据医师开出的病理会诊单负责清点、查对登记、运送；病理科值班人员签收。
3、病理科验收各种标本，对标本不符合要求及申请单填写不规范、不整洁，单与标本不符合者，应及时退还，待纠正后重新核对、签收。
4、标本的送检及交接时间
(1)细胞学标本： 痰上午8:00～9:00
刮片及穿刺涂片：上午9:00～11:30，下午2:30～5:00 胸腹水、尿液等随到随收
(2)组织活检标本：每天16：00点前。
(3)冰冻切片诊断，冰冻切片提前一天填写冰检查申请单和知青同意书送至病理科，周一至五上午8:00-下午5:00随送随检，其余时间应预先通知；应专人运送标本标本，并做好登记交接。
5、病理报告的发出和回送
门诊的病理报告及细胞学报告由病理科专人至门诊导诊台并签收；住院病人的病理报告及细胞学报告，每天下午（5:00前）送回各送检科室，由当班医师或护士在专设的报告单登记本上签收。特殊者随时发送报告；冰冻报告，随即电话通知手术医生，随后书面报告送至手术室。
三、病理标本的接受
1、病理科应有专人验收普通活体组织病理学检查(常规活检)申请单和送检的标本。
（1）同时接受同一患者的申请单和标本。
（2）认真核对每例申请单与送检标本及其标志(联号条或其他写明患者姓名、送检单位和送检日期等的标记)是否一致;对于送检的微小标本,必须认真核对送检容器内或滤纸上是否确有组织及其数量。发现疑问时,应立即向送检方提出并在申请单上注明情况。
（3）认真检查标本的标志是否牢附于放置标本的容器上。
（4）认真查阅申请单的各项目是否填写清楚,包括:①患者基本情况[姓名、性别、年龄、送检单位(医院、科室)、床位、门诊号/住院号、送检日期、取材部位、标本数量等];②患者临床情况[病史(症状和体征)、化验/影像学检查结果、手术(包括内镜检查)所见、既往病理学检查情况(包括原病理号和诊断)和临床诊断等]。
（5）在申请单上详细记录患者或患方有关人员的明确地址、邮编及电话号码,以便必要时进行联络,并有助于随访患者。
2、验收标本人员不得对申请单中由临床医师填写的各项内容进行改动。
3、下列情况的申请单和标本不予接收。（1）申请单与相关标本未同时送达病理科。（2）申请单中填写的内容与送检标本不符合。（3）标本上无有关患者姓名、科室等标志。（4）申请单内填写的字迹潦草不清。（5）申请单中漏填重要项目。
2（6）标本严重自溶、腐败、干涸等。（7）标本过小,不能或难以制做切片。
(8)其他可能影响病理检查可行性和诊断准确性的情况。病理科不能接收的申请单和标本一律当即退回,不予存放。
4、临床医师采取的标本应尽快置放于盛有固定液(4%中性甲醛,即10%中性福尔马林)的容器内,固定液至少为标本体积的5倍。对于需要做特殊项目检查(如微生物、电镜、免疫组织化学、分子生物学等)的标本,应按相关的技术要求进行固定或预处理。
5、病理医师只对病理科实际验收标本的病理学诊断负责。
四、病理标本的取材
1、标本收集后，首先进行编号登记；
2、标本取材前，应先校对送检标本瓶上的标签号码、患者姓名以及标本性质、瓶数与送检单所描述的是否相符，然后才开始取材；
3、检查标本，观察其大小形态、色泽、硬度及肉眼病理改变并进行描述。检查病变部位应按诊断的实际要求取材，组织块厚度不超过0.3cm，大小在22×22mm范围内，放入用铅笔写好号码的组织脱水盒内，每合原则上放一块（小块组织例外），如放入两块以上者，应在组织脱水盒上号码后注明A、B、C……字样，以便区分；
4、芝麻或帽针头大的组织，必须用擦镜纸包裹，色泽灰白色者应加染伊红，以免在制作过程中失落；
5、标本必须全埋者，在送检单上注明全埋字样。皮肤，囊壁或管状组织必须全埋者亦在送检单上注明全埋字样；
6、骨及钙化组织应行脱钙处理，取材时要用骨锯忌用凿子，组织块厚度通常不超过0.5cm，并向技术室当班者交待清楚；
7、取材完毕，肉眼标本应按顺序排列归档、保留两周，如需要继续保存者，通知技术室保存；
8、凡重切重埋或加特殊染色项目的标本，应书面通知技术室当班者；
9、取材完毕，工具在稀来苏溶液中消毒30min，取出用肥皂水洗，然后以自来冲洗、擦干，必要时抹上防锈油，以便下次使用。
五、病理标本的保存
1、实验室负责人应依照国家卫生主管部门或医院主管部门的要求保存或运送病理样本，定期进行安全检查。
2、实验室普通病理标本实行责任人保管制，即病理标本在送达病理科至取材前由病理技术人员负责管理，取材后至病理标本销毁前由病理报告医师管理，存放在指定的位置。特殊病理标本（教学、科研等）由专人保存。
3、保管人妥善保存病理标本，防止病理标本丢失及腐烂。
4、对于病理生物标本应密封分类保存，包装材料必须符合防水、防破损、防外泄的要求。
5、病理样本运送、销毁时，必须有专人护送，护送人员应接受实验室生物安全相关知识培训，并采取必要的防护措施。
第三篇：标本采集、运送、保存程序
标本采集、运送、保存成序
1.目的
规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。2.范围 微生物标本。3.职责
3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。4.程序
4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名
4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h.5 采集方法 5.1 血液及骨髓 5.1.1 血液
5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血
培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本）
5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。
5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。
5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。
5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论图片或培养，必须于采集后立即送检。5.3 上呼吸道标本
5.3.1 鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深度停留20～30s,然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽部中细菌的污染）。
5.3.2 喉标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样。喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人。将转运管安全封口，注明标识和日期，将标本尽快送到实验室。5.4 下呼吸道标本 5.4.1 痰
5.4.1.1 采集标本以晨痰为好。支气管扩张症病人清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰标本。
5.4.1.2 自然咳痰法：在留取痰之前，用清水反复漱口，从气管深部咳出痰，吐入无菌容器内。
5.4.1.3 支气管镜下采集法：在病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
5.4.1.4 气管穿刺法：在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌氧菌培养。
5.4.1.5 棉拭采集法：用无菌棉拭子轻轻擦拭病人鼻咽部黏膜，留取标本，置无菌试管内送检，放置时间不应超过2h.5.4.2 支气管灌洗液：用不少于140ml无菌生理盐水灌洗小支气管和肺泡，40～80ml回收的灌洗液中包含约1ml支气管末梢和肺泡中的分泌物；弃去前段可能污染的部分，收集其余部分后立即送检。5.4.3 保护毛刷(PSB):保护毛刷因有双层套管保护，不易污染上呼吸道和口腔定植菌。用无菌剪刀剪断毛刷，置于1ml生理盐水的无菌容器中（仅供需氧培养），快速送检。5.5 穿刺液标本
5.5.1 采用无菌方法采集体内可疑感染部位的液体约2ml，注入无菌试管，或抽取穿刺液1～2ml注入多功能体液培养瓶，或抽取穿刺液2～5ml注入血培养瓶，混匀，立即送检。
5.5.2 标本保存：采集标本后立即送到实验室，若不能及时送检可置于室温，放置时间不应超过2h.5.6 生殖器来源
5.6.1 阴道：经过阴道口（introitus），将拭子插入约5ml,轻轻转动10～30s。确保拭子触及阴道壁，小心退出，不要触及皮肤，将拭子转移到Aptima采集管，与第二线折断。拭子必须必须置于运输管中，尽快送抵实验室。梅毒螺旋体标本从外生殖器的硬下疳处蘸取渗出液，置于载玻片上，加盖玻片后立即送检。
5.6.2 前庭大腺：不要在黏膜部位使用乙醇。皮肤准备参见一般部位，吸取前庭大腺脓肿，使用厌氧转运培养基送至实验室。5.6.3 用于培养基的子宫颈（宫颈管）标本
5.6.3.1 准备阴道窥器，除温水外，避免使用润滑剂，插入阴道窥器，见到子宫颈，用棉拭子拭去多余的黏液，将涤纶拭子插入子宫颈，轻轻转动，并停留10～30s,取出拭子，置于细菌转运培养基。5.6.3.2 一般情况下，阴道标本培养不会产生有意义的结果，所以除B群链球菌筛检外，不推荐阴道标本培养。阴道标本不用于厌氧培养。5.6.4 羊膜腔穿刺术：通常由医生经超声定位留取样本，置于封口的注射器或厌氧转运培养基送抵实验室。
5.7 前列腺：用肥皂水清洗阴茎头，经直肠前列腺按摩获取前列腺液，用无菌拭子采集前列腺液，在室温下运送标本，选择前列腺按摩前和最近时刻的尿液同时送去培养。5.8 尿
5.8.1 女性：先以肥皂水清洗外阴部，再以无菌水冲洗，用无菌纱布擦拭，以手指将阴唇分开排尿，弃去前段尿，留取中段尿5～7ml于无菌试管内。
5.8.2 男性：翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，用清水冲洗，留取中段尿。
5.8.3 儿童、婴儿：先以无菌生理盐水棉球清洗其外阴或外生殖器，将无菌拭管或瓶口对准尿道口，以胶布固定于皮肤上，待尿排出后送检。
5.8.4 两侧肾盂尿：由专科医生采集，左右侧标本必须标明，避免混淆而误诊。
5.8.5 膀胱穿刺：此法用于厌氧菌培养。耻骨上皮肤经碘酊消毒后，再以75%乙醇擦拭，用无菌注射器行膀胱穿刺，吸取尿液后排去注射器内的空气，针头插于无菌橡皮塞上及时送检，2h内进行接种。5.9 粪便标本
5.9.1 自然排便采集：自然排便后，挑取其脓血、黏液部分2～3g,黏液粪便取絮状物2～3ml，盛于灭菌容器内，或置于保存液（运送培养基）、增菌培养基中送检。
5.9.2 直肠拭子：如不易获得粪便时，或排便困难病人及婴儿，可用直肠拭子采取，即以无菌棉拭用保存液或生理盐水湿润后，插入肛门
内4～5cm（幼儿2～3ml）轻轻转动取出，插入卡布（Cary-Blair）运送培养基内或无菌培容器内送检。
5.9.3 粪便标本应该立即送检，室温保存下不能超过2h，如不能及时送检可以发放入磷酸盐甘油（ph7.0）或转运培养基，但不能超过24h.培养艰难梭菌的标本保存于20℃以下。培养沙门菌和致贺菌的标本应放置磷酸盐甘油溶液中保存。保存弯曲杆菌和弧菌的标本，需加Cacl2(100mg/L)试剂。5.10 脓及创伤标本
5.10.1 封闭性脓肿消毒局部皮肤或黏膜表面后，用无菌注射器抽取，用无菌手术刀切开栗粒状脓肿（miliary abscess），使用无菌注射器和针头采集露出的标本。
5.10.2 将脓液注入多功能培养瓶或无菌试管内送检。疑为厌氧菌感染时，应做床边接种或厌氧运送培养基内送检。
5.10.3 开放性脓肿和脓性分泌物用无菌盐水或75﹪乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡深处采集2支拭子，1支为图片检查用，1支为培养用。
5.10.4 大面积烧伤的创面分泌物用灭菌棉拭取多部位创面的脓液或分泌物，置灭菌试管内（注明采集部位）送检。
5.10.5 对未引流脓肿：使用无菌注射器和针头，按无菌操作技术，从中采集脓性物。用无菌手术刀切开栗粒状脓肿，使用无菌注射器和针头采集露出的标本。
5.10.6 疑为放线菌属、奴卡菌属感染时，在检查单上注明需要排除
放线菌属、奴卡菌属。
5.11 褥疮溃疡：用无菌盐水清洗表面后如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集损伤底部。由于褥疮溃疡拭子临床价值不大，一般选择组织活检或针头抽吸样本。
5.12 大疱、蜂窝组织炎、小疱：皮肤消毒同血液培养，用无菌针头和注射器抽吸液体或化脓性物质，如果获得了抽吸物，将之置于合适细菌转运培养基。如果没有得到抽吸物，将小疱或大疱性病变打开，使用棉拭子采集病变部位，置于转运培养基中。
5.13 中心静脉导管标本：用无菌镊子将5cm导管尖端或近心端送至实验室。5.14 耳部标本
514.1 内耳：穿刺前用肥皂水清洗外耳道再进行消毒程序，最后用注射器穿刺鼓室抽吸脓液。对鼓室破裂者，用专用采样管中配备的细头软杆拭子采集脓液，脓液量大也可采用注射器抽吸。
5.14.2 外耳：先用润湿的棉签清洁外耳道，再用专用采样管中配备的毛刷状采样拭子在外耳道内用力旋转摩擦取样。5.15 眼部标本
5.15.1 结膜：采样前先用无菌盐水润湿拭子，再绕结膜取样，最好两眼各采集2支拭子：其中1支用于涂片。建议在床边接种。采集时，须小心地避免感染延至眼部临近区域。注意，须标明左眼、右眼的标本。
5.15.2 角膜：由眼科医生采用刮取法采集标本：采集前先滴2滴局
部麻醉液，再用角膜上皮刮铲刮取病变角膜组织，将刮擦物用少许生理盐水洗下，置无菌杯中送检。
5.16组织标本采集：表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除，对窦道和瘘管应深部刮取，获得部分管壁组织。深部组织标本可在手术过程中或采取穿刺活检或抽取分泌物送检，也可使用相应的内镜采集活检标本。标本置无菌容器中并加入少量生理盐水以保持湿度，或置肉汤增菌液中送检。如怀疑为军团菌感染，肺组织切片不要滴加生理盐水（能抑制军团菌生长）。如果怀疑为厌氧菌感染，应把组织放入厌氧的传输系统内立即送检。5.17引流液：用70%乙醇消毒导管采集部位，用注射器从引流管无菌采集2～3ml。标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
第四篇：输血标本采集运送保存外送管理制度
输血标本采集、运送、接收、保存、外送
管理制度与操作流程
1、在确定输血后，临床护士根据输血申请单上的要求，当面核对受血者的姓名、姓别、年龄、床号、血型和诊断等信息后，再进行采集血样。
2、采集的血液标本上条形码必须正确标记。
3、血标本采集量应有3-4ml，并观察是否溶血、乳糜血、如有此现象，应再留标本并做记录。
4、由医护人员或专门经过了输血培训上岗的人员，将采集的血样与输血申请单运送到输血科（血库），输血科（血库）工作人员接收标本。
5、输血科（血库），收到血样本后，在《输血标本接收、血型复核登记表》上进行登记。双方进行逐项核对。
6、交叉配血后的标本，以及受血者与供血者样本都应存入4±2℃冰箱中，标本必须密封或盖紧，有明确标识，保存7天以上，以便对输血不良反应追查原因。
7、输血科工作人员应每日检查、对交叉血标本进行分类放置、清理交叉血标本。
8、血标本应视为感染性物质，输血科工作人员应做好生物安全保护。用黄色生物垃圾袋封存，按保存日期填写《标本接受、保存、清除登记》，并按生物安全管理要求高压灭菌处理，保持容器完整，交给医院专业清洁人员，双方签名后运出实验室，再交医院垃圾暂存点按医疗废弃物统一处理。
第五篇：标本采集接收处理程序
标本采集、接收和处理程序
1． 目的 规范标本采集、接收和处理工作，确保标本质量，保证结果的准确可靠，确保输血安全。
2． 范围 适用于标本采集、接收和处理。3． 职责
科主任：负责标本采集、接收和处理的管理工作。
工作人员：负责标本采集、接收和处理的日常工作。
质量监督员：负责标本采集、接收和处理日常监督工作。4． 程序
1．标本采集：①标本采集前作好充分准备，各种物料、器材准备充分；②采集标本时须让受检者知情同意；③认真核对患者姓名、性别、年龄、病案号、病室或门急诊、床号、血型和诊断等，准确无误后方可采集标本；④采集标本时严格消毒，无菌操作；⑤采集的标本准确放入有唯一性标记的容器内，一一对应；⑥对标本采集过程中使用的材料进行安全处置。
2．标本接收：①认真核对标本管与《临床输血申请单》内容是否一致；②检查标本质量是否符合要求，标签粘贴是否牢固；③检查《临床输血申请单》是否填写完整、是否有执业医师签名；④接收标本时，双方核对无误后，记录标本的接收时间、数量，签字认可，标本放入冰箱按规定保存；⑤拒收标本应说明拒收理由。
3．标本处理：①检测前根据不同的检测目的严格按照标准操作规程对标本进行离心、分离、加样等处理，做好树立记录；②检测中严格按照各项目的检测方法加样、加试剂、孵育、反应、读结果等，并做好记录；③检测后交叉配血后标本2-8℃保存7d,7d后按规定进行销毁，并做好销毁记录。
4．监督管理：①科主任不定期对标本采集、接收和处理进行监督检查，发现问题，发《限期整改通知书》，限期整改；②质量监督员对标本采集、接收和处理进行日常监督，发现问题，及时上报科主任。
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