生理学实验报告-蛙心灌流 [全文5篇]

第一篇：生理学实验报告-蛙心灌流

蛙类离体心脏灌流

一、【目的要求】

1、学习离体蛙心灌流法。

2、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh),乳酸对离体心脏活动的影响。

二、【原理】

将离体蛙心（失去神经支配的蛙心）保持在适宜的环境中，在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩，心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境，离体心脏也是如此，离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响，可以通过改变灌流液的某些成分，观察其对心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性，都与钠、钾及钙等离子有关。外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。

三、【实验仪器】

青蛙、常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。套管夹、0．65％NaCl、2％CaCl2、1％KCl、1：10000肾上腺素、1：10000乙酰肌碱、3%乳酸。

四、【方法与步骤】

1、斯氏蛙心插管法

（1）一只青蛙，双毁髓后背位置于蜡盘中，按前面的方法暴露心脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎(动物个体小时，结扎位置可靠上些)。再从左右两主动脉下方穿一线，并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线，右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜的蛙心套管，然后将盛有少量(套管内2～3 cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管，山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖端到达动脉圆锥基部时，应将套管稍稍后退，使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进，经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插入，但不可插得过深，以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血液冲人套管，并使液面随心脏搏动而亡下移动，表明操作成功(否则需退回并重新插入)。用滴管吸去套管中的血液，更换新鲜任氏液。稳定住套管后，轻轻提起备用线，将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧(不得漏液)，再将结线固定在套管的小玻璃钩上，然后剪断结扎线上方的血管。轻轻提起套管和心脏，看清静脉窦的位置，于静脉窦下方剪断有牵连的组织，仅保留静脉窦与心脏的联系，使心脏离体(切勿损伤静脉窦)。用任氏液反复冲洗心室内余血，使套管内灌流液不再有残留血液。保持套管内液面高度一致(1.5～2 cm)，即可进行实验。

（2）将插好离体心脏的套管固定在支架上，用蛙心夹夹住少许心尖部肌肉(不可夹得过多，以免因夹破心室而漏液)。再将蛙心夹上的系线绕过一个滑轮与张力传感器相连（如右图）。注意：勿使灌流液滴到传感器上。调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。

2、实验观察

(1)记录正常心搏曲线

(2)改用0．65％NaCI溶液灌流，并作好加药标记，观察心搏变化。待曲线 氏插管装置出现明显变化时，立即吸去套管中的灌流液，同时做好冲洗标记，并用新鲜任氏液清洗2—3次，待心搏恢复正常。注意：换液时切勿碰套管，以免影响描记曲线的基线，同时保持灌流液面一致(以下同)。

观察可得，NaCI溶液会阻遏心脏搏动。

(3)迅速用新鲜任氏液清洗2～3次，待心搏恢复正常。向套管内加入1～3滴2％CaCI：溶液，观察并记录心搏曲线的变化。当出现明显变化时，立即更换任氏液，待心搏恢复正常(如果恢复迟缓，可多次冲洗)。

(4)同法向套管中加1—2滴1％KCl溶液，记录心搏曲线的变化。当心搏曲线变化时，同法更换灌流液，待心搏恢复正常。

(5)同法记录套管中加入l～2滴的肾上腺素溶液(1：10 000)后心搏曲线的变化。(6)同法记录套管中加入1—2滴乙酰胆碱溶液(1：10 000)后心搏曲线的变化。（7）同法记录套管中加入l～2滴的3%乳酸后心搏曲线的变化。

五、【实验结果与原因分析】 曲线的幅度————收缩的程度 曲线的密度————心率

曲线的基线————舒张的程度

1、正常收缩曲线图

2、滴加0.65%NaCl溶液图

分析：滴加0.65%NaCl溶液后，心跳减弱，这是由于用0.65%NaCl溶液灌注蛙心时，由于灌注液中缺乏Ca2+（），以致心肌细胞动作电位2期内流Ca2+减少，细胞质Ca2+浓度减少，心肌的收缩活动也随之减弱。

3、滴加2%CaCl溶液

2＋＋＋分析：细胞外Ca在细胞膜上对Na内流有竞争性抑制作用，称为膜屏障作用。[Ca2]

＋20增高时，Na内流受抑制，细胞0期除极速度与幅度减小，使兴奋性及传导性均降低。[Ca＋＋] 0增高使Ca2内流增多，因此慢反应细胞0期去极化加快加强，传导性增高，而快反应细

＋＋胞平台期缩短，有效不应期缩短，复极加速。Ca2内流增多，使心肌收缩能力增强。[Ca2] 0降低时，所引起的变化与高钙时相反。因此加入CaCl2后，心率减少、振幅减少，基线上移。

4、滴加1%KCl溶液

分析：滴加1％KCl后的心搏曲线发现，曲线的频率逐渐减小，愈来愈疏，幅度逐渐下降，最后停止在基线处，即心脏停博于舒张状态。因为当细胞K+浓度增高时，K+与Ca2+有竞争性拮抗作用，K+抑制细胞膜对Ca2+的转运，使进入细胞内Ca2+减少，心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱，心肌收缩力降低。所以心搏曲线振幅减小。

5、滴加1：10000肾上腺素溶液

分析：滴加肾上腺素后，蛙心收缩增强，心脏舒张完全，描记的心搏曲线幅度明显增大。其作用机理是，肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合，提高心肌细胞和肌浆网膜Ca2+通透性，导致肌浆中Ca2+浓度增高，使心肌收缩增强。另外，肾上腺素还有降低肌钙蛋白与Ca2+亲和力，促使肌钙蛋白对Ca2+的释放速率增加，提高肌浆网膜摄取Ca2+的速度，刺激Na+与Ca2+交换，使复极期向细胞外排出Ca2+的作用加速，这样，将使心肌舒张速度增快，整个舒张过程明显增强。

6、滴加1：10000乙酰胆碱溶液

分析：上图可示，蛙心收缩减弱，心率减慢，最后出现蛙心停止舒张阶段。其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合，一方面提高心肌细胞膜K+通道的通透性，促使K+外流，将引起：1）窦房强细胞复极时K+外流增多，最大复极电位绝对值增大；Ik衰减过程减弱，自动除极速度减慢。这两方面因素导致窦房自律性降低，心率减慢。2）复极过程中K+外流增加，动作电位2、3期缩短，Ca2+进入细胞内减少，使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制Ca2+通道，减少Ca2+内流，进而使心肌收缩减弱。

7、滴加3%乳酸溶液

分析：H与Ca的竞争机制，导致心肌细胞动作电位2期内流Ca2+减少，细胞质Ca2+浓度减少，心肌的收缩活动也随之减弱。

六、【注意事项】

1.制备蛙心标本时，勿伤及静脉窦。

2.上述各实验项目，一旦出现作用应立即用正常任氏液换洗，以免心肌受损，而且必须+2+

待心搏恢复正常后方能进行下一步实验。

3.尽量选用健壮、体大的雄性蟾蜍，手术过程中注意保护心脏，避免损伤。4.实验中及时用任氏液冲洗心脏，待曲线恢复平稳后再进行下一步操作。

5.每次更换任氏液都必须保持灌流液液面高度恒定，以免因灌流量变化而影响结果。6.严格控制每次药品加入量，先加一滴，效果不明显再加一滴。

7.吸滴瓶中的任氏液和吸蛙心套管内溶液的吸管应区分专用，不可混淆使用，以免影响实验结果。

七、【讨论】

1.离体蛙心制备好后，有时候馆内的液面上下移动很不明显，是何原因？如何处理？ 答：离体蛙心制备好后，蛙心插管内的液体应随蛙心室的收缩和舒张活动而上下移动。其实质是：在心室收缩时，心室容积减少，室内压升高，将心室内的液体压入插管内，管内液面上升；在心室舒张的时候，心室容积增大，心室内压减少，将插管内液体吸入心室，管内液面下降。

但是有时候蛙心插管内液面波动不明显，其主要原因是： ⑴ 插管内尖端出现血凝块。

⑵ 插管尖端不在心室腔内，而是在心房或者脉间结缔组织等地方。⑶ 插管进入心室腔内过深，以致尖端抵住了心室壁。⑷ 蛙心由于长期心肌失血，导致活力下降。

2.实验过程中，为什么必须保持蛙心插管内液面高度的恒定？液面过高或过低会产生怎样的影响？

答：在实验过程中，蛙心插管内液面高度发生变化，心脏收缩曲线会相应发生变化。心肌缩短幅度和速度受到前负荷和后负荷的影响。插管液面高度所产生的压力，在心室舒张期末期相当于心肌的前负荷，心室开始收缩的时候，此液体所产生的压力又成为心肌收缩时的后负荷。故高度的改变，进而引起的前后负荷的改变将改变心肌收缩的幅度和频率。

当液面过高时。心缩曲线幅度将降低。因为过高的液面，将使心室前负荷超过了最适前负荷，将导致粗细肌丝过于疏远，而导致收缩的潜力减少，心肌收缩不再增加或下降。而类似的，过高的后负荷，也使心肌收缩的幅度和速度大大下降。而当液面过低时，心室收缩的幅度也会减少。因为前负荷过小，将导致粗细肌丝过于接近，而导致收缩的潜力减少，实际上，此时由于前负荷的减少导致心室收缩的效力的减少比前负荷增加而导致的还有明显。类似的，后负荷相应的减少也会导致心室收缩的减弱。所以，在实验中保持最适的液面高度。是取得较好实验结果的前提。

3． 各种离子成分改变蛙心收缩的原理是什么？

答：由于心肌细胞生物电活动和收缩过程与离子密切相关，因此，细胞外液中离子浓度升高或降低均会影响到心肌的电生理特性和收缩性。

（1）钾离子的影响

K与静息电位的形成有关。细胞外液K浓度[K]0变化对心肌生理特性的影响较为复杂。高钾：[K＋]0轻度或中度增高时，膜内、外K＋浓度差减小，静息电位绝对值减小，与阈电位差距缩短，因此，兴奋性增高。[K＋]0显著升高时，由于静息电位绝对值减小过多（膜内达-55mV左右），Na＋通道失活，因而兴奋性降低甚至消失。另外，还使0期去极化速度和幅度减小，传导性降低，导致兴奋传导减慢，甚至传导阻滞。此外，＋

＋

＋

[K＋]0增高还可提高膜对K＋的通透性，加速K＋外流，动作电位平台期缩短，因此，不应期缩短。此外由于平台期缩短，减少了Ca2＋的内流，加上细胞外K＋与Ca2＋在膜上有竞争性抑制作用，导致心肌收缩功能减弱；

（2）钙离子的影响 细胞外Ca2在细胞膜上对Na内流有竞争性抑制作用，称为膜屏障作

＋

＋用。[Ca2] 0增高时，Na内流受抑制，细胞0期除极速度与幅度减小，使兴奋性及传导性均＋＋降低。[Ca2] 0增高使Ca2内流增多，因此慢反应细胞0期去极化加快加强，传导性增高，＋

＋而快反应细胞平台期缩短，有效不应期缩短，复极加速。Ca2内流增多，使心肌收缩能力增

＋强。[Ca2] 0降低时，所引起的变化与高钙时相反。＋（3）钠离子的影响

细胞外液中钠浓度差梯度的变化一般对心肌活动影响不明显。只有当[Na] 0明显增高时，膜内外钠的浓度差梯度增大，因此，快反应细胞Na内流加快，0期去极速度和幅度均增加，导致传导性和自律性增高。同时，Na内流的增多促进细胞内Ca2

＋＋

＋

＋＋

＋的外运使细胞内Ca2浓度降低，因此，心肌收缩能力减弱。反之，当[Na] 0降低，使心肌传导性和自律性降低，心肌收缩能力增强。

2010级临床二系四班

张娜

2010221462

张秋

2010221463

张雪蕊

2010221465

祝杰

2010221484

邹彬

2010221485(本次书写)

第二篇：生理学实验报告

生理学实验报告，请按照以下格式书写，将实验结果（包括图表）填写在实验结果项下，并对实验结果进行讨论与分析，每次实验课结束后一周内提交有效，逾期将无法提交。（写作业时可将本报告格式模板复制粘贴，以方便书写）（临床医学）专业生理学实验报告 第（1）次 【实验名称】坐骨神经——腓肠肌标本的制备

【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术，为以后实验打下基础。

【实验材料】两栖类手术器械一套（粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、金属探针、玻璃分针、蛙板）、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、脱脂棉、任氏液。【实验步骤】

1· 手术

（1）破坏脑和脊髓

取蟾蜍1只，用水冲洗干净。左手按住蟾蜍，用拇指按压背部，食指按压头部前端使其头部前俯，右手持刺蛙针在头前缘沿正中线向尾端刺划，所触划到的头部后端的凹陷处，即枕骨大孔。在此处将刺蛙针垂直刺入皮肤，有突破感后再将刺蛙针折向前经枕骨大孔刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织；再将刺蛙针刺入脊椎管，反复提插捣毁脊髓。此时若蟾蜍的四肢松软，呼吸运动消失，表示脑和脊髓已完全破坏，否则应按上法再行捣毁。

（2）剪除躯干上部及内脏

在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起，在骶髂关节水平以上0.5~1cm处用粗剪刀剪断脊柱，然后将粗剪刀向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤，是蟾蜍头、上肢与内脏自然下垂，将其一并剪除弃去，仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴与脊柱两侧的坐骨神经。在整个剪除过程中注意误伤神经。

（3）剥皮

左手用组织镊夹紧脊柱断端（注意：不要夹住或触碰神经），右手捏住其上的皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤，将标本放在盛有任氏液的平皿中。将手及用过的全部手术器械洗净，再进行下述步骤。

（4）分离两腿

用镊子从背位夹住脊柱将标本提起，剪去向上突出的骶骨，然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半，并从耻骨联合中央剪开两侧大腿，然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。

（5）制作坐骨神经腓肠肌标本。

①游离坐骨神经

取一腿放于蛙板上，用玻璃分针沿脊柱侧游离坐骨神经。将标本背侧向上放置，划开梨状肌群及其附近的结缔组织，循坐骨神经沟，找出坐骨神经的大腿部分，用玻璃分针小心剥离。用玻璃分针将坐骨神经轻轻提起，以眼科剪剪断其所有分支，并将神经一直游离至腘窝为止，再用粗剪刀剪下一小段与坐骨神经相连的脊柱，并将游离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上。

②去除大腿肌肉

在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉并用组织剪将股骨刮干净，然后在股骨中部剪去上段股骨。

③完成坐骨神经腓肠肌标本

用眼科剪剪开跟腱腱膜，在跟腱处穿针结扎，并于结扎线远端剪断跟腱。游离腓肠肌至膝关节处，然后沿膝关节将小腿其余部分全部剪掉，这样就制得一个具有附着在股骨上的腓肠肌并带有支配腓肠肌的坐骨神经的标本。2．用锌铜弓检查标本

将锌铜弓在任氏液中沾湿后，迅速接触坐骨神经，如腓肠神经发生明显而灵敏的收缩，则表示标本的兴奋性良好。即刻将标本放在盛有任氏液的平皿中，以保持其兴奋性。

【实验结果】（图表粘贴处）

【结果讨论与分析】这次试验总体来说，是非常成功的。我们完整地观察了蟾蜍坐骨神经反射的全过程，还观察到了阈上刺激和阈下刺激，通过串刺激观察到了蟾蜍的肌肉完成的强直性收缩过程，我们得到了清晰的数据图表。很好地锻炼了我们的动手实践能力。深刻理解了坐骨神经-腓肠肌标本完成的不同刺激强度、刺激频率对骨骼肌收缩的影响实验。尤其是强直收缩的生理意义：正常体内由运动神经传到骨骼肌的兴奋冲动都是快速连续的，体内骨骼肌收缩几乎都属于完全强直收缩。强直收缩显然可以产生更大的收缩效果，强直收缩所能产生的最大张力可达单收缩的4倍左右。另外肌肉发生强直收缩时，结合课文所学，动作电位也不会发生融合，肌肉动作电位只出现频率加快，却始终各自分离而不会发生融合或叠加。这是由于肌肉的动作电位只持续1～2ms，即使刺激频率落于前一次刺激引起的动作电位持续期间之内，组织又正好处于兴奋性的绝对不应期，这时新的刺激将无效，既不能引起新的动作电位，也不引起新的收缩。最后应注意，为了保证试验成功，用玻璃分针分离神经时，不可用金属器械碰触。及时用任氏液浸湿标本，保持其兴奋性。

第三篇：生理学实验报告

生理学实验报告

坐骨神经-腓肠肌标本的制备

一、实验目的及要求

学习蛙类动物双毁髓的方法

掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。

二、实验原理

蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。因

此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。

三、实验对象

蟾蜍或蛙。

四、实验器材及药品

蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。

五、实验方法及步骤

1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。

2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。

3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持

金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。

4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。

5、分离股骨头：沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，保留股骨的后2/3，剪断股骨。

6、游离腓肠肌：在腓肠肌跟腱下穿线并结扎，提起结扎线，剪断肌腱与胫腓骨的联系，游离腓肠肌，剪去膝关节下部的后肢，保留腓肠肌与股骨的联系，制备出完整的坐骨神经-腓肠肌标本。标本应包括：坐骨神经、腓肠肌、股骨头和一段脊柱骨四部分。

7、检验标本：用任氏液沾湿的锌铜弓的两极接触神经，如腓肠肌发生收缩，则标本机能正常，把标本固定在肌槽上。

8、连接好装置，调节适宜的灵敏度及刺激强度，开动记录仪，走纸速度为10mm/s,用手控触发开关，以单脉冲刺激神经，记录肌肉的单收缩曲线。

9、分别用1 Hz、2 Hz、3 Hz、4 Hz、6 Hz、12 Hz、24 Hz、30Hz等频率去刺激坐骨神经，记录肌肉的收缩曲线。

六、分析及讨论

七、思考题

• 1．剥去皮肤的后肢，能用自来水冲洗吗？为什么？

• 不能。自来水会对肌肉产生刺激。

• 2．金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌，可能引起哪些不良后果？

金属器械碰压神经与腓肠肌,会引起肌肉收缩,如果碰的较重,损伤部位及近端的神经就死亡了,以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分.另外容易使标本疲劳,失去活性.• 3．如何保持标本的机能正常？

金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌，保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会。

• 4 ．锌铜弓刺激检测标本活性的原理是什么？

• Zn的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压），锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一段分开，则接触样本（例如神经干）时，会引起样本局部去极化，引发动作电位。

• 何为复合动作电位，如何产生的？

• 3

• 什么是阈刺激，如何产生的，是多少？

• 什么是最适刺激，如何产生的，是多少？

• 何为双向动作电位，如何产生的，图像的每一部分产生的原理是什么？ •

• 何为单向动作电位，如何产生的，图像的每一部分产生的原理是什么？

第四篇：生理学实验报告参考

生理学实验报告

实验一：坐骨神经-腓肠肌标本和腓肠肌标本制备

一、目的要求：略

二、实验材料：略

三、实验流程（或操作步骤）：

四、注意事项：略

五、结果分析：【网上查找的】神经细胞的静息膜电位为外正内负，在细胞膜外使用直流电刺激细胞，通电时兴奋只发生在负极，正极的兴奋性下降，而锌铜弓的锌极表面电离出正离子，里面形成负离子，铜相当于负极；断电时产生反向电流，兴奋只发生在正极，而锌铜弓的锌极表面电离出正离子，里面形成负离子，锌相当于正极；另外，通电的刺激强度大于断电。

上述过程也就是说用锌极刺激坐骨神经时，肌肉收缩发生在接触通电时；用铜极刺激坐骨神经时，肌肉收缩发生在接触断电时。而且用锌极刺激坐骨神经时，肌肉收缩强度大于铜极。

六、结论：

实验二：骨骼肌收缩特性和收缩形式的观测

一、目的要求：略

二、基本原理：略

三、实验材料：略

四、实验流程（或操作步骤）：

五、结果分析：【附上图】

【在第一个图中标出阈刺激、阈下刺激、潜伏期、收缩期、舒张期和最适刺激】，并用文字稍作分析，如刺激强度与肌肉收缩两者间的关系。

【在第二个图中标出完全强直收缩和不完全强制收缩】，并用文字稍作分析，如刺激间隔与收缩强度等等。

以上均为我个人看法，难免存在错误，大家看看就好。

第五篇：17生理学实验报告的写作

2017生理学实验报告的写作

今天小编为大家收集资料整理回来了关于实验报告的范文，希望能够为大家带来帮助，希望大家会喜欢。同时也希望给你们带来一些参考的作用，如果喜欢就请继续关注我们当热网()的后续更新吧!

写实验报告是对所做实验的再理解再创造的工作，是检查学生知识掌握和衡量能力的重要尺度之一，是今后撰写科学论文的初始演练。

(一)一般要求

使用学校统一印制的报告纸。填全各栏目，并标明学号或组号，“日期”一栏填做实验日期，写报告日期可标于文末。“指导教师”一栏不写，系留阅报告

人签名用。报告要求格式标准、卷面整洁、图表准确、字迹端正、简明精练，按时上交。写报告不得使用圆珠笔，绘图宜用铅笔。注意文字规范，语句通顺，不用自造的不规范的简化字、代号。

(二)基本格式与写法

生理实验有的侧重于操作方法(如神经-肌肉标本制备)，有的侧重于现象观察(胃肠运动的直接观察)，有的侧重于结果及分析(影响尿生成的因素)，多数则兼而有之。应根据实验类型，选用合适的报告格式及详略安排各栏目。

实验报告大体上有两种格式：一种是一般实验报告式，另一种是仿学术论文式，其对应关系如下表。一般认为操作类宜选用前者，而侧重结果的实验后者更适用。

表4 实验报告的基本格式

一般实验报告式仿学术论文式

题目(内容)题目

目的原理引言(导言)

实验对象与用品材料与方法

方法步骤

结果与分析结果与分析

讨论讨论与结论(语)

(结论或结语)

注意事项原始记录附录(含原始记录，公式

实验分工体会与建议推导，参考文献，致谢等)

(三)注意事项

写报告应以事实为根据，尽量用自己的话表述，忌抄书，不许修改、编造数据。实验方法与步骤可视重要否而详略，但报告应独立成章，不可用“见书第××页”字样而省略。有的实验报告中，结果、分析甚至实验项目可以列表表达。“讨论”是一篇报告的核心，应紧扣结果联系相关理论进行，忌就事论事或离题万里;结果也不可轻易推断或引申。“结果与分析”一栏可在实验小组内讨论，必要时也可以参考其他组数据(需注明)，但报告必须按要求独立完成，禁止互相抄袭。

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