植物的无性繁殖实验报告

第一篇：植物的无性繁殖实验报告

植物的无性繁殖实验报告

--------探究大蒜的无性繁殖

实验目的：了解大蒜的无性繁殖过程

实验器材：一个小“花盆”、2瓣大蒜（带根）、适量泥土、适量水 实验方法：实验法+观察法 实验步骤：1、2、3、4、5、将大蒜埋进“花盆” 加适量水，并等待其发芽 发芽后观察、记录 撰写实验报告

实验结果如下（有图有真相）：

第一天

第五天

第七天

第三天

实验结果：经过一周，两瓣大蒜均成功发芽，然后越长越高。

无性繁殖的意义：无性繁殖的优点是它能够保持品种优良特性，生长快。但其缺点在于其繁殖办法不如有性繁殖简单。

第二篇：植物营养学实验报告

实验：过磷酸钙中有效磷的测定

实验学时：3 实验类型：验证性实验 实验要求：必修

一、实验目的

过磷酸钙与重过磷酸钙均为水溶性磷肥，所含有的能被植物吸收利用的不仅是水溶性的速效磷，也有一部分为不溶于水但能被柠檬酸提取的磷。测定其有效磷的含量对评定肥料品质、合理施用磷肥均具有重要意义。通过本实验的学习，使学生掌握过磷酸钙中有效磷的测定方法，理解影响过磷酸钙中有效磷变化的因素。

二、实验内容

（1）用2%柠檬酸浸提过磷酸钙，制备待测液。（2）用钒钼黄比色法定量测定，并计算出过磷酸钙中的有效磷的含量。

三、实验原理、方法和手段

用2%柠檬酸浸提过磷酸钙(或重过磷酸钙)中的有效磷(其中包括Ca(H2PO4)2·CaHPO4和游离H3PO4)，浸出液中的正磷酸盐利用钒钼黄比色法定量测定。

四、实验组织运行要求

本实验采用集中授课形式；2人为1组，共同完成实验操作。

五、实验条件

仪器设备:分光光度计、振荡机、电子天平、容量瓶、小漏斗、三角瓶、滤纸等。试剂：(1)50mg/LP标准溶液：准确称取105℃烘干的磷酸二氢钾KH2PO4(AR)0.2195g溶于约400ml蒸馏水中，加入25ml 3mol/L H2SO4，定容至1L，即为50mg/L的标准溶液，可长期保存使用。

(2)2%柠檬酸溶液：称取20g结晶柠檬酸(H3C6H5O7·H2O，AR)溶于水中，定容至1L即可。

(3)3mol/L H2SO4：量取浓硫酸166.7ml，用蒸馏水稀释至1L。

(4)钒钼酸铵显色剂：称取12.5g(NH4)6Mo7O24·4H2O(钼酸铵)溶于约200ml水中。另将0.625gNH4VO3(偏钒酸铵)溶于150ml沸水中，冷却后加入125ml浓硝酸，再冷至室温。然后将钼酸铵溶液缓缓倒入偏钒酸铵的硝酸溶液中，随倒随搅拌，最后用水稀释至500ml。

六、实验步骤

1．称取通过100目筛孔的过磷酸钙样品0.5～1.0000g于150ml三角瓶中，加入2%柠檬酸溶液50ml，用橡皮塞塞紧瓶口，振荡30min，立即用干滤纸过滤，最初7—8ml滤液弃去。2．吸取清亮滤液1～5.00ml于50ml容量瓶中，加水至约35ml，准确加入10ml钒钼酸铵显色剂，定容、静置30分钟后用490nm波长，1cm光径比色皿在光电比色计上进行比色(以空白调节比色计吸收值为零点)。

3．标准曲线的制备：吸取50mg/L(ppm)的P标准溶液0、2.5、5.0、7.5、12.5、15.0、20分别放入50ml容量瓶中，加水至35ml，准确加入10ml钒钼酸铵显色剂，定容，15～20min后用490nm波长、1cm光径比色皿在光电比色计上比色。以吸收率为纵坐标，五氧化二磷的浓度(mg/L)为横坐标，绘制标准曲线。

4．结果计算：P2O5%=A×显色体积×分取倍数/m×10×100×2.291 A：从标准曲线查得待测液中P2O5浓度mg/L； m：样品质量g； 10：将mg/L换算成g； 100：换算为百分含量； 2.291：将P转换为P2O5的系数。6

6七、思考题

静置是目的是什么？

八、实验报告

根据贵州大学实验报告的格式按时完成实验报告，特别要分析实验结果。

九、其它说明

（1）本方法显色时间较短，常温下15～20min即可显色完全。但在冬季较低温度下显色慢。

（2）根据比色时磷含量的多少，选择合适的比色波长，2～10mg/kgP2O5选用420nm，14～40mg/kgP2O5选用490nm，待测液中铁含量高而产生黄色干扰时，通常选用较长的波长如450nm或470nm。本法比色选用的波长范围为400～490nm，然而值得注意的是波长由400nm增加到490nm时，灵敏度会降低10倍。

实验：植物全氮、磷、钾的测定

实验学时：3 实验类型：验证性实验 实验要求：必修

一、实验目的

在植物必需的常量元素中，氮、磷、钾的测定更为经常和重要。不论在诊断作物氮、磷、钾的营养水平和土壤供应各该元素的丰缺情况时，或者在确定作物从土壤摄取各元素的数量和施肥效应时，都经常要测定植物全株或某些部位器官中有关元素的含量。通过本实验的学习，使学生了解植物中的氮磷钾的存在形态与消化的关系，掌握植物中全氮磷钾的测定方法，了解测定时应注意的事项。

二、实验内容

（1）植物样品的消煮—待测液的制备。（2）植物全氮的测定(半微量蒸馏法)。（3）植物全磷的测定(钒钼黄吸光光度法)。（4）植物全钾的测定(火焰光度法)。

三、实验原理、方法和手段

（一）植物样品的消煮(H2SO4—H2O2法)方法原理植物中的氮磷大多数以有机态存在，钾以离子态存在。样品经浓H2SO4和氧化剂H2O2消煮，有机物被氧化分解，有机氮和磷转化成铵盐和磷酸盐，钾也全部释出。消煮液经定容后，可用于氮、磷、钾等元素的定量。

本法采用H2O2加速消煮剂，不仅操作手续简单快速，对氮磷钾的定量没有干扰，而且具有能满足一般生产和科研工作所要求的准确度，但要注意遵照操作规程的要求操作，防止有机氮被氧化成N2或氮的氧化物而损失。

（二）植物全氮的测定(半微量蒸馏法)植物样品经开氏消煮、定容后，吸取部分消煮液碱化，使铵盐转变成氨，经蒸馏和扩散，用H3BO3吸收，直接用标准酸滴定，以甲基红—溴甲酚绿混合指示剂指示终点。

（三）植物全磷的测定(钒钼黄吸光光度法)

植物样品经浓H2SO4消煮使各种形态的磷转变成磷酸盐。待测液中的正磷酸与偏钒酸和钼酸能生成黄色的三元杂多酸，其吸光度与磷浓度成正比，可在波长400～490nm处用吸光光度法测定磷。磷浓度较高时选用较长的波长，较低时选用较短的波长。此法的优点是操作简便，可在室温下显色，黄色稳定。在HNO3，HCl,HClO4和H2SO4等介质中都适用，对酸度和显色剂浓度的要求也不十分严格，干扰物小。在可见光范围内灵敏度较低，适测范围广(约为1—20mg/L，P)故广泛应用于含磷较高而且变幅较大的植物和肥料样品中磷的测定。

（四）植物全钾的测定(火焰光度法)植物样品经消煮或浸提，并经稀释后，待测液中的K可用火焰光度法测定。

②① 3

四、实验组织运行要求

本实验采用集中授课形式；2人为1组，共同完成实验操作。

五、实验条件

1．仪器设备：

2．试剂：)硫酸(化学纯、比重1.84)、30%H2O2(分析纯)、40%(m/v)NaOH溶液、2%H3BO3—指示剂溶液、标准溶液［C(HCl或1/2H2SO4)=0.01mol/L］、碱性溶液、钒钼酸铵溶液、6mol/LNaOH溶液、0.2%二硝基酚指示剂、磷标准液［C(P)＝50mg/L］、K标准溶液[C(K)＝100mg/L]。

六、实验步骤

（一）消煮：称取植物样品(0.5mm)0.3～0.5g(称准至0.0002g)，放入100ml开氏瓶中，加1ml水润湿，加入4ml浓H2SO4摇匀，分两次各加入H2O22ml，每次加入后均摇匀，待激烈反应结束后，置于电炉上加热消煮，使固体物消失成为溶液，待H2SO4发白烟，溶液成褐色时，停止加热，此过程约需10分钟。待冷却至瓶壁不烫手，加入H2O22ml，继续加热消煮约5—10分钟，冷却，再加入H2Ｏ2消煮，如此反复一直至溶液呈无色或清亮后(一般情况下，加H2O2总量约8—10ml)再继续加热5—10分钟，以除尽剩余的H2O2。取下冷却后用水将消煮液定量地转移入100ml容量瓶中，定容(v1)。

同时做空白试验，校正试剂和方法误差。

（二）全氮的测定

吸取定容后的消煮液5.00—10.00ml，(V2，含NH4—N约1ml)，注入半微量蒸馏器的内室，另取150ml三角瓶，内加入5ml2%H3BO3—指示剂溶液，放在冷凝管下端，管口置于H3BO3液面以下，然后向蒸馏器内室慢慢加入约3ml40%(m/v)NaOH溶液，通入蒸气蒸馏，(注意开放冷凝水，勿使馏出液的温度超过40℃)待馏出液体积约达50～60ml时，停止蒸馏，用少量已调节至pH为4.5的水冲洗冷凝管末端。用酸标准溶液滴定馏出液至由蓝绿色突变为紫红色(终点的颜色应和空白测定的终点相同)。用酸标准溶液，同时进行空白液的蒸馏测定，以校正试剂和滴定误差。

结果计算

全N%=C(v-v0)×0.041×100/(m×v2/v1)式中

C—酸标准溶液浓度，mol/L； v—滴定试样所用的酸标准液，ml； v0—滴定空白所用的酸标准液，ml； 0.041—N的毫摩尔质量，g/mmol； m—称样量，g；

v1—消煮液定容体积，ml；

v2—吸取测定的消煮液体积ml。

（三）全磷的测定

吸取定容、过滤或澄清后的消煮液10.00ml(V2含磷0.05～0.75mg)放入50ml容量瓶中，加2滴二硝基酚指示剂，滴加6mol/LNaOH中和至刚呈黄色，加入10.00ml钒钼酸铵试剂，用水定容(V3)。15分钟后用1cm光径的比色杯在波长440mm处进行测定，以空白溶液(空白试验消煮液按上述步骤显色)调节仪器零点。

标准曲线或直线回归方程 准确吸取50mg/LP标准液0，1，2.5，5，7.5，10，15ml分别放入50ml容量瓶中，按上述步骤显色，即得0，1.0，2.5，5.0，7.5，10，15mg/LP的标准系列溶液，与待测液一起测定，读取吸光度，然后绘制标准曲线或求直线回归方程。

结果计算

全P，%＝Ｃ(P)×(v１/m)×(v3/v2)×104

－式中C(P)—从校准曲线或回归方程求得的显色液中磷浓度，mg/L； v3—显色液体积，ml；

v2—吸取测定的消煮液体积，ml； v1—消煮液定容体积，ml； m—称样量，g；

104—将mg/L浓度单位换算为百分含量的换算因数。－

（四）全钾的测定

吸取定容后的消煮液5.00—10.00ml(v２)放入50ml容量瓶中，用水定容(v3)。直接在火焰光度计上测定，读取检流计读数。

标准曲线或直线回归方程 准确吸取100mg/LＫ标准溶液0，0.5，1.0，2.5，5.0，10，20ml，分别放入50ml容量瓶中，加入定容后的空白消煮液5或10ml(使标准溶液中的离子成分和待测液相近)，加水定容。即得0，1，2，5，10，20，40mg/LK的标准系列溶液。以浓度最高的标准溶液定火焰光度计检流计的满度(一般只定到90)，然后从稀到浓依次进行测定，记录检流计读数，以检流计读数为纵坐标绘制标准曲线或求直线回归方程。

结果计算

全K，%＝Ｃ(Ｋ)×(v3/m)×(v1/v2)×10-4 式中

C(K)—从标准曲线或回归方程求得的测读液中K的浓度，mg/L； v1——消煮液定容体积，ml； v2——消煮液的吸取体积，ml； v3——测读数定容体积，ml； m——称样量，g；

10-4——将mg/L浓度单位换算为百分含量的换算因数。

第三篇：植物缺素培养实验报告

实验一：玉米的溶液培养及缺素培养实验 一、实验目的 1、掌握种子发芽和无土栽培的实验技术以及配制贮备液的方法，了解氮、磷、钾等元素对植物生长发育的影响和学习判断缺素症状。

2、了解分光光度计的使用方法；掌握计算叶绿体各色素成分含量的方法。

3、学会 AM-300 手持式叶面积仪测定叶面积的方法

二、实验原理 1、植物在必需的矿物元素供应下正常生长，如缺少某一元素，便会产生相应的缺乏症。用适当的无机盐制成营养液，即能使植物正常生长，称为溶液培养，如果用缺乏某种元素的缺素液培养，植物就会呈现缺素症状而不能正常生长发育。将所缺元素加入培养液中，该缺素症状又可逐渐消失。

2、叶片中叶绿素含量的高低是反映植物叶片光合能力的一个重要指标。另外，叶绿素的含量是植物生长状态的一个反映，一些环境因素如干旱、盐渍、低温、大气污染、元素缺乏都可以影响叶绿素的含量与组成，并因之影响植物的光合速率。根据朗伯—比尔定律，某有色溶液的吸光度 A 与其中溶质浓度 C 和液层厚度 L 成正比，即 A＝KCL式中：K 比例常数。当溶液浓度以百分浓度为单位，液层厚度为 1cm

时，K 为该物质的吸光系数。如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相应波长下吸光度的总和。这就是吸光度的加和性。

3、叶片性状特征直接影响到植物的基本行为和功能。叶面积是植物研究中的一个常用指标,叶面积的大小决定着植物接收光合有效辐射(photosynthetically active radiation,PAR)的量,与干物质产量和地上净初级生产力有密切关系,反映了植物对其地理分布和养分条件等外界因素的适应策略。同时,叶面积也是影响植物生长、果实发育和品质的重要生理和形态指标。

三、用品与材料 1、材料：玉米种子； 2、用品：培养缸、试剂瓶、容量瓶、烧杯、移液管、量筒、精密天平、棉花(或海绵)刻度尺、分光光度计、AM-300 手持式叶面积仪； 3、试剂：硝酸钙、硝酸钾、磷酸二氢钾、磷酸二氢铵、硫酸镁、氯化钾、氯化钙、硫酸锰、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、硼酸、硫酸锌、氯化锰、钼酸、硫酸铜。

四、实验步骤 1、育苗。选大小一致饱满成熟的植物种子，放在培养皿中萌发，长成 5~7cm 小苗时，选择生长势一致的植株进行溶液培养。

2、配制培养液(贮备液)。取分析纯的试剂，按实验表 2-1 用量配制成贮备液。

3、按表 2-2 配制完全液和缺 K 液 4、水培装置准备。取 1L 的培养缸，若缸透明，则在其外壁涂以黑漆或用黑纸套好，使根系处在黑暗环境中，缸盖上应打有数孔，用海绵或棉花固定植物幼苗。

5、移植与培养。将以上配制的培养液中各加蒸馏水至 1000ml，将幼苗根系洗干净，小心穿人孔中，用棉花或海绵固定，使根系全浸入培养液中，放在阳光充沛、温度适宜(20～25℃)的地方。

6、管理、观察。每三天加蒸馏水一次以补充瓶内蒸腾损失的水分。培养液一星期更换一次，最好每天通气 2～3 次或进行连续微量通气，以保证根系有充足的氧气。

7、三周后，进行高度、净重及叶面积的测量，并进行记录。

8、把缺素和完全溶液培养的玉米叶各称量 0.2g，加入少量 95%酒精研磨成匀浆，最后定容至 10ml。

8、加入比色杯中，使用分光光度计进行吸光值测量。

9、整理并统计所有数据，获得结论。

五、实验结果 表 表 1 ：缺素培养、完全培养的玉米苗的外部形态特征

照片

第4天 第8天 第12天

第15天 第19天 第21天

表 表 2 ：缺素培养前后玉米苗生长状况

完全培养A组 缺素培养 A 组 完全培养 B 组 缺素培养 B 组 培 养前 高(cm)9.80 10.30 10.20 9.50 10.00 10.40 8.00 8.31 8.21 7.80 8.27 8.43 第 3天 高度(cm)21.20 22.10 19.60 19.5 15,5 19.4 17.0 18.8 16.7 17.4 9.0 16.4 第 15天 高度(cm)52.4 37.9 42.4 24．9 34.1 21.1 28.1 50.1 45.9 29.5 33.5 22.8 3 周后 高度(cm)62.1 54.8 54.4 28.0 38.1 23.2 53,7 60.1 58.0 34.0 37.4 24.0 表 表 3 ：第 21 天（第三周）玉米苗各项指标

完全培养 A 组 缺素培养 A 组 完全培养 B 组 缺素培养 B 组 编号 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 地 上 株高(cm)62.1 54.8 54.4 28.0 38.1 23.2 53,7 60.1 58.0 34.0 37.4 24.0 根 冠 长度(cm)21.2 17.9 18.2 10.4 13.8 9.9 16.4 20.0 16.7 11.3 11.4 8.6 地 上 ：根冠

地 上 质量(cm)11.85 9.05 6.41 1.86 2,26 2.58 10.03 11.35 10.29 1.65 2,10 0.62 地 下 质量(cm)2.89 3.31 0.91 0.66 0.74 1.20 2.44 2.91 2.78 0.57 0.67 0.29 叶 面 积(cm2)53.9 50.1 47.8 30.3 38.5 29.0

表 表 4 ：叶绿素 a、叶绿素 b 的含量测定：

649nmOD平均值 665nmOD平均值 Ca（mg/L）

Cb（mg/L）

C 总（mg/L）

完全培 1.014 2.12 22.60 9.79 32.29

养 缺钾培养 0.76 1.72 18.77 6.38 25.15 注：计算公式如下：

Ca= 13.95*A 665 – 6.88*A 649 Cb= 24.96*A 649 – 7.32*A665 CT

= Ca+ Cb 表 5：

六、分析与讨论 1、从表 1 的图片和表 3 的叶面积比较中可看出，缺钾培养液培养的的玉米苗的叶面积明显比对照组的要小，而且可以看到老叶叶尖和叶缘有明显变黄。根据观察，玉米幼苗处理后第 6 天株高出现明显差异，第 8 天老叶叶片出现块状失绿，叶脉颜色浅于完全培养组，随后叶片出现黄斑，叶边缘不平整，叶肉部分上凸，茎秆短细，叶尖干枯至枯萎，生长情况明显比缺素组差。在第三周实验结束时，部分缺钾培养植株的新叶的叶尖也开始有变黄，而部分老叶已经枯萎或叶上有多条黄色条纹。在李富恒【 1 】

等对缺钾玉米培养的研究中，证明了钾元素影响植株生长，特别是叶面积的增大及酶的合成，这会使得植物的光合作用效率大大降低，使植株的粗细、高度等降低。

2、从表 2 可以看到，在未进行缺素培养时，完全培养组和缺素培养组的玉米苗高度、生长状况基本相同，但在培养过程中，完全培养的植株无论是粗细比缺素培养的植株要粗，高度比缺素培养都要高。

3、从表 3 可以看到，完全培养的植株除了地上株高等均比缺素培养的高，其根冠发达程度也比缺素培养的植株要大。根据观察，完全培养植株的根部分支多，洁净呈白色，根冠的长、宽都比缺素培养的大，且缺素植株的根部大部分发黄，有少许腐烂现象。根据李秧秧、范德纯 [3]的实验，缺钾严重影响地上部的生长，是因为钾离子是叶绿素合成途径相关酶的激活剂，可以激活叶绿素合成的相关酶，促进叶绿素的合成，以保证光合作用的进行。在缺钾营养液下，玉米叶片中叶绿素含量要低；在完全营养液中，提供充足的钾离子，叶片叶绿素含量要高。缺素组的玉米苗叶绿素含量远远不及完全组的玉米苗，因此对地上的影响是最大的。

4、从表 4 可以看出，缺素组的分光光度计的 Ca 值、Cb 值及 C总比完全组的低，证明缺素组的叶绿素 a、b 均比完全组的要低，且叶绿素总量要比完全组的要低。在李富恒 [1] 等对缺钾玉米培养的研究中，两个品种的完全液培养的叶绿素含量均比缺钾的高。钾离子是叶绿素合成途径相关酶的激活剂，可以激活叶绿素合成的相关酶，促进叶绿素的合成，以保证光合作用的进行。在缺钾营养液下，玉米叶片中叶绿素含量要低；在完全营养液中，提供充足的钾离子，叶片叶绿素含量要高。钾不仅能促进氮的吸收，而且能促进含氮化合物向蛋白质合成场所运输，促进氨基酸合成蛋白质和稳定蛋白质的结构，因而可以促进氮代谢，进而加速光和色素的形成。缺钾培养玉米叶片叶绿素的降低与缺钾使氮循环受阻，导致光合能力弱，合成的光合产物少有关。

第四篇：《科学植物向光性的实验》实验报告

《科学植物向光性的实验》实验报告

（一）1、所需材料用具主要有：

豌豆种子、玉米种子、若干锡纸、不透光的纸盒二个，培养皿、剪刀、胶带等。

2、实验原理简述 ：在单侧光刺激下，植物表现出向光性

3、实验设计及观察

（二）植物的向光性实验：准备好八个装满泥土的花盆，把预先泡好的豌豆和玉米种子均匀地播种在土壤中，浇水。放在温暖、光线充足之处，等待发芽。五天后，小苗从土壤中钻出来。再三天后长到近5厘米时分别装入两个纸盒中，用锡纸封存好，在向光处挖一个直径3厘米的小洞。再后三天每天打开两盒子观察，玉米和豌豆都向小洞方向弯曲生长，现象显著地表现出来，而玉米更加明显，如图（一.二.三）。

上述现象是单侧光能引起生长素分布不均造成的，向光一侧生长素分布得少，背光一侧生长素分布得多，生长得快，所以弯向光源生长。

本实验应注意及存在的问题。选择透水好的花盆，便于排水透气，有利于植物萌发、生长。豌豆入土深度为豌豆本身和两倍，太浅小苗不稳，太深萌发过晚。纸盒不能太大，否则离小洞远的那两盒向光性就不明显。低温植物生长较缓慢，高度不够也影响向光性现象。

（三）结论：植物在光线影响下，会保持向一定方向生长的特性。

初二（11）班

熊天46号

第五篇：观察植物细胞有丝分裂实验报告

观察植物细胞有丝分裂实验报告

一、实验原理

1.观察部位：植物体的根尖、茎尖等分生区的细胞。

2.分裂过程：高等植物细胞有丝分裂分为间期和分裂期的前期、中期、后期和末期，不同时期细胞染色体的行为变化有各自的特点.。

3.观察过程：先用低倍镜找到根尖生长点的细胞（正方形、排列紧密、有的正在分裂），再用高倍镜辨别各时期的染色体(染色质)变化，并判断该细胞处于有丝分裂的哪个时期。

4.染色过程：细胞核内的染色体容易被碱性染料（龙胆紫或醋酸洋红等）着色。

二、实验器材

大蒜、显微镜、载玻片、盖玻片、培养皿、刀片、镊子、烧杯等 15%的盐酸、95%的酒精、龙胆紫溶液等

三、实验步骤

1.前期培养：取大蒜若干放在装满清水的 100ML 烧杯上，让它的底部接触瓶内水面，把烧杯放在温 暖地方培养。

2．解离：实验前一天，取大蒜根尖，使用卡诺氏固定液（乙醇：冰醋酸=3:1）进行 24H 固定，之后用蒸馏水冲洗，放入 70%酒精中，在 4℃冰箱中保存。待到实验时即可进行解离处理。取经过和未经过固定液处理的根尖各 1-3 个，剪根尖 2CM，放入盛有 15%盐酸和95%酒精 1:1 混合液的培养皿中并盖好（以防盐酸挥发），解离3~5min,此时根尖变得酥软透明。

3.漂洗：用镊子夹住伸长区一端，从培养皿中取出根尖，放到盛有清水的培养皿中漂洗 2~3min，可用镊子或玻棒轻轻搅动。

4．染色：用镊子夹住伸长区一端，从培养皿中取出根尖，放到干净的载玻片中央，用刀片切去根尖大概 0.5mm，紧贴刚刚切的位置切下针尖大小的根尖，此处即为根尖分生区。利用准备好的染液进行染色，时间为 3~5min。

5.压片：将被染上色的根尖盖上盖玻片（防止气泡产生），然后在盖玻片上放一层吸水纸，水平放在实验台上，用拇指稍用力对其按压，使根尖细胞呈云雾状散开，此时再把盖玻片周围染液吸拭干净即可。

6.观察：先用低倍镜观察，找到分生区细胞（体积小、排列紧密、整齐、近似正方形，有的细胞正在分裂）。找到视野后用高倍镜观察。

四、实验结果 及讨论

从所做实验观察结果看来，处于间期的细胞最多，处于分裂时期的细胞较少。原因是细胞间期在细胞有丝分裂周期中占的比重大。此次实验观察到了有丝分裂各时期形态。比较成功