酚氯仿抽提解析大全

第一篇：酚氯仿抽提解析大全

DNA是遗传信息的载体，是最重要的生物信息分子，是分子生物学研究的主要对象。DNA的提取是分子生物学实验技术中的最重要、最基本的操作。本实验通过植物样品在液氮下研磨以粉碎组织，通过裂解液裂解细胞，有机溶剂反复抽提，使DNA进入水相与蛋白质成分分开，在RNase作用下，降解RNA以纯化DNA。

二、材料以方法

1、材料：培养菌体

2、仪器设备：超净工作台，培养箱，摇床，恒温水浴锅，高速冷冻离心机，台式离心机，移液枪一套，低温冰箱，冷冻真空干燥机，电泳仪，水平电泳槽，紫外观测仪

3、试剂：

细胞裂解液 100 mM Tris-HCl 5 mM EDTA 500 mM NaCl 1.25% SDS PH 7.5 饱和酚，氯仿/异戊醇，酚/氯仿/异戊醇 无水乙醇，70％乙醇，异丙醇 M NaAc pH5.2, RNase，50×TE缓冲液，电泳载样缓冲液

三、操作步骤（1）培养菌体

（2）加入10 ml裂解液，1/10体积酚，于65℃下20－30 min，然后加入等体积的氯仿，轻摇（3）12000－15000rpm离心15 min（4）取上淸液，加入等体积氯仿，轻摇，12000－15000rpm离心15 min（5）取上淸液，加入0.6倍体积冷异丙醇（-20℃）或2倍体积冷无水乙醇（-20℃）（6）加入1/10体积的3 M NaAc(pH5.2)，置于室温下10 min（7）12000－15000rpm离心10 min（8）倒弃液体留下沉淀，用70％乙醇洗涤沉淀（9）加入2倍体积无水乙醇（10）12000－15000rpm离心10 min（11）倒弃液体留下沉淀，真空干燥（12）复溶于2 ml TE（13）加入RNase，65℃或37℃处理10－30 min（14）加等体积酚，酚/氯仿，氯仿各一次，12000－15000rpm离心10 min（15）取上淸液，加入0.6倍体积冷异丙醇（-20℃）或2倍体积冷无水乙醇（-20℃）（16）加入1/10体积的3 M NaAc(PH5.2)，置于室温下10 min（17）12000－15000rpm离心10 min（18）倒弃液体留下沉淀，用70％乙醇洗涤沉淀（19）真空干燥沉淀

（20）复溶于0.5－1.0 ml的TE或水中，分装成小体积，4℃或-20℃保存。（21）电泳检测提取DNA的质量

四、结果与分析

点样空，若发亮则说明有污染 超螺旋结构DNA，若条带有拖尾则 说明有破碎的DNA 少量未清除的RNA

五、注意事项

1、重点防止DNA的损伤，包括各种物理、化学和机械损伤。

2、干燥好的染色体DNA最好溶于去离子水，以备后面直接利用。如果用TE 缓冲液溶解，后面还需去离子。

3、取上清时，如果上清液过少，可再加入少量水，重新离心，取上清，避免DNA损失过多。

第二篇：苯酚-氯仿法从小鼠尾巴中抽提基因组DNA

从小鼠尾巴中抽提基因组DNA

一、试剂与材料

⑴ 裂解液：50mM Tris(pH8.0)100mM EDTA 0.5% SDS ⑵ 蛋白酶K(Proteinase K)10mg/ml(溶解在pH8.0,50mM Tris和1mM CaCl2中，-20℃保存)。使用时，终浓度达到100ug/ml

⑶ RNaseA RNaseA溶液配制

将RNaseA溶解在0.001mol／l醋酸钠（pH5.2）中，使终浓度为10mg／ml，加热到 100℃，15min。室温下缓慢冷却，用0.1体积的1M的Tris-Cl调整pH至7.4后，小管分装保存在-20℃。使用时，终浓度为100ug/ml.⑷ Tris平衡苯酚；

氯仿（三氯甲烷）；

Tris平衡苯酚:氯仿=1:1(体积比)3M 醋酸钠（pH5.2）；

无水乙醇； 70%乙醇；

无菌ddH2O.⑸ 手术剪，1.5mlEP管.二、方法

⑴ 剪取0.5cm小鼠尾巴(约20-30mg)，立即放入细胞冻存管并投入液氮中（防止基因组DNA降解）。

⑵ 从液氮中取出鼠尾，剪碎，放入1.5mlEP管中，加入350ul裂解液、20ul蛋白酶K和0.9ul RNaseA，混匀。

⑶ 在热孵育器中，55℃过夜。（刚开始可每隔30min摇晃一次）

后续操作可在冰上进行---⑷ 取出EP管，加入等体积Tris平衡苯酚，用力摇晃3min；12000g，离心10分钟。

⑸ 轻轻吸取上清至一新的1.5mlEP管中（宁可少吸，也不要吸到下层的苯酚或沉淀物）。

⑹ 向上清中加入等体积苯酚/氯仿，用力摇晃2分钟；12000g，离心2分钟。⑺ 吸取上清至另一新的1.5mlEP管中，加入1/10体积的醋酸钠溶液和2.5倍体积的无水乙醇，摇匀。

⑻ 12000g，离心1分钟，尽可能吸除上层乙醇。

⑼ 加入1ml，70%乙醇漂洗DNA，用力摇匀。（此步为了去除残留的SDS和苯酚）

⑽ 12000g，离心1分钟，去除乙醇，再重复⑼、⑽一次（为了尽可能把DNA清洗干净）。

⑾ 将EP管倒置在吸水纸上，以吸干乙醇。

⑿ 用65℃预热的无菌ddH2O,35ul溶解DNA，-20℃保存。⒀ 分光光度计检测纯度、浓度。

DNA提取的注意事项

1、裂解液要预热,以抑制DNase,加速蛋白变性,促进DNA溶解。

2、酚一定要碱平衡。苯酚具有高度腐蚀性，飞溅到皮肤、粘膜和眼睛会造成损伤，因此应注意防护。氯仿易燃、易爆、易挥发，具有神经毒作用，操作时应注意防护。

3、各操作步骤要轻柔,尽量减少DNA的人为降解。

4、取各上清时,不应贪多,以防非核酸类成分干扰。

5、异丙醇,乙醇.NaAc,KAc等要预冷,以减少DNA的降解,促进DNA与蛋白等的分相及DNA沉淀。

6、提取DNA过程中所用到的试剂和器材要通过高压烤干等办法进行无核酸酶化处理。

7、所有试剂均用高压灭菌双蒸水配制。

8、用大口滴管或吸头操作，以尽量减少打断DNA的可能性。

9、要用新鲜样品或液氮冷冻-70度保存的样品。这样通过降低内切酶的活性DNA的降解。

10、避免剧烈吸打DNA，不能搅动基因组DNA。

11、吸取基因组DNA时，要用专用的粗口吸头，普通吸头可能会切断DNA或造成DNA缺口。

12、基因组应4度保存，如-20度保存可能导致DNA断裂。

13、在准备实验的过程中，应将DNA样品放在碎冰上。

14、用Tris缓冲液溶解DNA。

15、加缓冲液后，为了加速DNA溶解，可以轻轻晃动或轻弹试管。

16、加入缓冲液后，置于4度过夜，也可以溶解DNA

17、将DNA溶液65度温育10分钟，可以灭活DNase。

18、在抽提过程中如果水相和有机层的界面不太清楚，说明其中蛋白质含量较高，可增加酚/氯仿抽提的次数或适当延长离心的时间。

19、酚抽提时如果上清液太粘稠，无法进行水相转移时，可加入适量TES稀释后再抽提。

基因组DNA提取方法

制备基因组DNA是进行基因结构和功能研究的重要步骤，通常要求得到的片段的长度不小于100-200kb。在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素，以保证DNA的完整性，为后续的实验打下基础。主要是CTAB方法，其他的方法还有1物理方式:玻璃珠法,超声波法,研磨法,冻融法。2化学方式：异硫氰酸胍法,碱裂解法3生物方式:酶法。根据核酸分离纯化方式的不同有:硅质材料、阴离子交换树脂等

试验步骤：

1、贴壁细胞用胰酶消化，离心收集。

2、细胞重悬于冰冷的PBS漂洗一次，离心收集。试验步骤2再重新作一边。

3、加入5mlDNA提取缓冲液，(10mmol/LTris-cl,0.1mol/LEDTA,o.5%SDS),混匀。

4、加入25ul蛋白酶K,使终浓度达到100ug/ml,混匀，50℃水浴3h，5、用等体积的酚抽提一次，2500rpm离心收集水相，用等体积的（酚，氯仿，异戊醇）混合物抽提一次，2500r/min离心收集水相

6、用等体积的氯仿，异戊醇抽提一次。加入等体积的5mol/L的LiCL,混匀，冰浴，10min.。7、2500rpm离心10min.转上清于一离心管中。加入等体积的异丙醇。室温10min。2500rpm,离心10min。弃上清。

8、加入0.1倍体积3mol/L乙酸钠(PH5.2)与2倍体积-20℃预冷无水乙醇。-20℃20min。9、12000r/min,室温离心5min。弃上清。将DNA溶于适量TE中。

外周血DNA提取技术

分离外周血白细胞提取方法： 试验步骤：

1、取人肘静脉血5ml，EDTA抗凝，2500rpm离心10min。

2、小心吸取上层血浆，分装到3个0.5ml离心管中。

3、在血细胞中加入3倍体积的溶血液，摇匀，冰浴15min。4、2500rpm离心10min，弃上清。

5、加入10ml溶血液，摇匀，冰浴15min。6、3000rpm离心10min，弃上清。

7、倒置离心管，去掉残液。

8、得白细胞，－80?C冻存。试验要求： 血至分离白细胞之间隔时间在室温下放置不超过2h，4℃放置不超过5h，以防白细胞自溶。

氯仿法抽提外周血白细胞基因组DNA： 试验试剂： Ligsisbuffer：

133mMNH4ClNHCl7.12g0.9mMNH4HCO3NH4HCO30.071g0.1mMEDTA0.5mMEDTA0.2ml；最后加灭菌去离子水至1000ml，高压灭菌。

ACD抗凝剂：柠檬酸1.68g柠檬酸钠4.62g葡萄糖5.15g；最后加灭菌去离子水至350ml，高压灭菌。

提取缓冲液（Extractionbuffer）：

10mMTrisCl(PH=8.0)1MTris.Cl(PH=8.0)1ml0.1mMEDTA(PH=8.0)0.5mMEDTA(PH=8.0)20ml0.5%SDS10%SDS0.5ml；最后加灭菌去离子水至100ml，高压灭菌

试验步骤：

1、在500μl抗凝血中加入ligsisbuffer1000μl，充分颠混至清亮。以4000rpm，离心5min。弃上清液。

2、沉淀中加入ligsisbuffer1500μl，充分匀浆。以6000rpm，离心5min。

3、彻底弃去上清，加入extractionbuffer500μl（裂解细胞），混匀置于37℃，水溶1h。

4、加入8μl的蛋白酶K，颠混，37℃过夜（或55℃，3h，但是37℃效果要好些）。

5、每管加入450μl饱和酚（取溶液下层）缓慢摇晃10min，以5500rpm，离心15min。

6、取上清，每管加入250μl饱和酚和250μl氯仿－异戊醇，摇匀10min，以5500rpm，离心15min。

7、取上清，每管加入500μl氯仿－异戊醇，摇匀10min，以5500rpm，离心15min。

8、取上清，每管加50μl的3M的NaAC＋，适量无水乙醇（预冷）至满，摇匀放入-20℃保存2h以上。

9、以12000rpm，离心20min。去上清，加入70％乙醇500μl，以12000rpm，离心5min，去上清，50－60℃干燥。

10、加入50μl灭菌去离子水，转弹，混匀。NaI提取法提取外周血白细胞基因组： 实验步骤：

1、取外周抗凝血（全血）100ul于eppendorf管中，12000rpm离心12min。

2、弃上清，加双蒸水200ul溶解，摇匀20s。

3、混匀后加6MNaI溶液200ul，摇匀20s。

4、加入氯仿/异戊醇（24：1）400ul，边加边摇，摇匀20s，12000rpm离心12min。

5、取上层液350ul，加入另一新eppendorf管中，加0.6倍体积异丙醇，摇匀20s，室温放置15min，静置后的反应体系15000rpm离心12min，使沉淀紧贴eppendorf管壁。

6、弃异丙醇，加70％乙醇1ml（不振动），以15000rpm离心12min。

7、弃乙醇，敞开eppendorf管盖，烘干（37℃恒温箱）后，加1xTE溶液30ul，溶解DNA＞12h以上，制成的DNA液-20℃冰箱保存备用。

常用的外周血白细胞基因提取方法： 试验原理：

苯酚/氯仿提取DNA是利用酚是蛋白质的变性剂，反复抽提，使蛋白质变性，SDS(十二烷基磺酸钠)将细胞膜裂解，在蛋白酶K、EDTA的存在下消化蛋白质或多肽或小肽分子，核蛋白变性降解，使DNA从核蛋白中游离出来。DNA易溶于水，不溶于有机溶剂。蛋白质分子表面带有亲水基团，也容易进行水合作用，并在表面形成一层水化层，使蛋白质分子能顺利地进入到水溶液中形成稳定的胶体溶液。当有机溶液存在时，蛋白质的这种胶体稳定性遭到破坏，变性沉淀。离心后有机溶剂在试管底层(有机相)，DNA存在于上层水相中，蛋白质则沉淀于两相之间。酚-氯仿抽提的作用是除去未消化的蛋白质。氯仿的作用是有助于水相与有机相分离和除去DNA溶液中的酚。抽提后的DNA溶液用2倍体积的无水乙醇在1/103mol/LNaCl存在下沉淀DNA，回收DNA用70%乙醇洗去DNA沉淀中的盐，真空干燥，用TE缓冲液溶解DNA备用。

试验步骤：

1、将1mlEDTA抗凝贮冻血液于室温解冻后移入5ml离心管中，加入1ml磷酸缓冲盐溶液（PBS），混匀，3500rpm离心15min,倾去含裂解红细胞的上清。重复一次。用0.7mlDNA提取液混悬白细胞沉淀，37℃水浴温育1h。

2、将上述DNA提取液混悬白细胞，37℃水浴温育1h后，加入1mg/ml蛋白酶K0.2ml,至终浓度为100-200ug/ml,上下转动混匀，液体变粘稠。50℃水浴保温3h，裂解细胞，消化蛋白。保温过程中，应不时上下转动几次，混匀反应液。

3、反应液冷却至室温后，加入等体积的饱和酚溶液，温和地上下转动离心管5-10min，直至水相与酚相混匀成乳状液。5000rpm离心15min，用大口吸管小心吸取上层粘稠水相，移至另一离心管中。重复酚抽提一次。加等体积的氯仿﹕异戊醇（24﹕1），上下转动混匀，5000rpm离心15min，用大口吸管小心吸取上层粘稠水相，移至另一离心管中。重复一次。

4、加入1/5体积的3mol/LNaAc及2倍体积的预冷的无水乙醇，室温下慢慢摇动离心管，即有乳白色云絮状DNA出现。用玻璃棒小心挑取云絮状的DNA，转入另一1.5ml离心管中，加70%乙醇0.2ml，以5000rpm离心5min。洗涤DNA，弃上清，去除残留的盐。重复一次。室温挥发残留的乙醇，但不要让DNA完全干燥。加TE液20ul溶解DNA,置于摇床平台缓慢摇动，DNA完全溶解通常需12-24h。制成的DNA液-20℃冰箱保存备用。

真核细胞DNA的制备

一般真核细胞基因组DNA有107-9bp，可以从新鲜组织、培养细胞或低温保存的组织细胞中提取，常是采用在EDTA以及SDS等试剂存在下用蛋白酶K消化细胞，随后用酚抽提而实现的。这一方法获得的DNA不仅经酶切后可用于Southern分析，还可用于PCR的模板、文库构建等实验。

根据材料来源不同，采取不同的材料处理方法，而后的DNA提取方法大体类似，但都应考虑以下两个原则：

1、防止和抑制DNase对DNA的降解。

2、尽量减少对溶液中DNA的机械剪切破坏。试剂准备：

1、TE:10mMTris-HCl(pH7.8);1mMEDTA(pH8.0)。

2、TBS:25mMTris-HCl(pH7.4);200mMNaCl;5mMKCl。

3、裂解缓冲液：250mMSDS;使用前加入蛋白酶K至100mg/ml。4、20%SDS 5、2mg/ml蛋白酶K

6、Tris饱和酚（pH8.0）、酚/氯仿（酚∶氯仿=1∶1）、氯仿

7、无水乙醇、75%乙醇 试验步骤： 材料处理：

1、新鲜或冰冻组织处理：

1)取组织块0.3-0.5cm3,剪碎，加TE0.5ml，转移到匀浆器中匀浆。2)将匀浆液转移到1.5ml离心管中。

3)加20%SDS25ml，蛋白酶K(2mg/ml)25ml，混匀。4)60°C水浴1-3hr。

2、培养细胞处理：

1)将培养细胞悬浮后，用TBS洗涤一次。2)离心4000g×5min，去除上清液。3)加10倍体积的裂解缓冲液。4)50-55°C水浴1-2hr。DNA提取：

1、加等体积饱和酚至上述样品处理液中，温和、充分混匀3min。

2、离心5000g×10min，取上层水相到另一1.5ml离心管中。

3、加等体积饱和酚，混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。

4、加等体积酚/氯仿，轻轻混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。如水相仍不澄清，可重复此步骤数次。

5、加等体积氯仿，轻轻混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。

6、加1/10体积的3M醋酸钠（pH5.2）和2.5倍体积的无水乙醇，轻轻倒置混匀。

7、待絮状物出现后，离心5000g×5min，弃上清液。

8、沉淀用75%乙醇洗涤，离心5000g×3min，弃上清液。

9、室温下挥发乙醇，待沉淀将近透明后加50-100mlTE溶解过夜。

植物组织中DNA的提取

试验原理：

脱氧核糖核酸（deoxribonucleicacid，DNA）是一切生物细胞的重要组成成分，主要存在于细胞核中，盐溶法是提取DNA的常规技术之一。从细胞中分离得到的DNA是与蛋白质结合的DNA，其中还含有大量RNA，即核糖核蛋白。如何有效地将这两种核蛋白分开是技术的关键。DNA不溶于0.14mol/L的NaCl溶液中，而RNA则能溶于0.14mol/L的NaCl溶液之中，利用这一性质就可以将二者从破碎细胞浆液中分开。制备过程中，细胞破碎的同时就有Dnase释放到提取液中，使DNA因被降解而影响得率，在提取缓冲液中加入适量的柠檬酸盐和EDTA，既可抑制酶的活性又可使蛋白质变性而与核酸分离，再加入阴离子去垢剂0.15％的SDS，经过2h搅拌，或用氯仿－异醇除去蛋白，通过离心使蛋白质沉淀而除去，得到的是含有核酸的上清液。然后用95％的预冷乙醇即可把DNA从除去蛋白质的提取液中沉淀出来。

植物DNA的SDS提取法： 试验试剂：

1、研磨缓冲液：称取59.63gNaCl，13.25g柠檬酸三钠，37.2gEDTA－Na分别溶解后合并为一，用0.2mol/L的NaOH调至pH7.0，并定容至1000ml。2、10×SSC溶液：称取87.66gNaCl和44.12g柠檬酸三钠，分别溶解，一起定容至1000ml。3、1×SSC溶液：用10×SSC溶液稀释10倍。4、0.1×SSC溶液：用1×SSC溶液稀释10倍。

5、Rnase溶液：用0.14mol/LNaCl溶液配制成25mg/ml的酶液，用1mol/LHCl，pH至5.0，使用前经80℃水浴处理5min（以破坏可能存在的Dnase）。

6、氯仿－异戊醇：按24ml氯仿和1ml异戊醇混合。7、5mol/L高氯酸钠溶液：称取NaClO4．H2O70.23g，先加入少量蒸馏水溶解再容至100ml。

8、SDS（十二烷基硫酸钠）化学试剂的重结晶：将SDS放入无水酒精中达到饱和为止，然后在70～80℃的水浴中溶解，趁热过滤，冷却之后即将滤液放入冰箱，待结晶出现再置室温下凉干待用。9、1mol／LHCl。10、0.2mol/LNaOH。

11、二苯胺乙醛试剂：1.5g二苯胺溶于100ml冰醋酸中，添加1.5ml浓硫酸，装入棕色瓶，贮存暗处，使用时加0.1ml乙醛液［浓乙醛：H2O＝1：50（V／V）］。12、1.0mol/L高酸溶液（HClO4）。13、0.05mol/LNaOH。

14、DNA标准液：取标准DNA25mg溶于少量0.05mol.L-1NaOH中，再用0.05mol/LNaOH定容至25ml，后用移溶管吸取此液5ml至50ml容量瓶中，加5.0ml1mol/LHClO4，混合冷却后用0.5mol/LHClO4定容至刻度，则得100μg/ml的标准溶液。

实验步骤：

1、称取植物幼嫩组织10g剪碎置研钵中，加10ml预冷研磨缓冲液并加入0.1g左右的SDS，置冰浴上研磨成糊状。

2、将匀浆无损转入25ml刻度试管中加入等体积的氯仿－异戊醇混合液，加上塞子，剧烈振荡30s，转入离心管，静置片刻以脱除组织蛋白质。以4000rpm离心5min。

3、离心形成三层，小心地吸取上层清液至刻度试管中，弃去中间层的细胞碎片、变性蛋白质及下层的氯仿。

4、将试管置72℃水浴中保温3min（不超过4min），以灭活组织的DNA酶，然后迅速取出试管置冰水浴中冷却到室温，加5mol/L高氯酸钠溶液［提取液：高氯酸钠溶液＝4：1（V／V）］，使溶液中高氯酸钠的最终浓度为1mol/L。

5、再次加入等体积氯仿－异戊醇混合液至大试管中，振荡1min，静置后在室温下离心（4000rpm）5min，取上清液置小烧杯中。

6、用滴管吸95％的预冷乙醇，慢慢地加入烧杯中上清液的表面上，直至乙醇的体积为上清液的两倍，用玻璃棒轻轻搅动。此时核酸迅速以纤维状沉淀缠绕在玻璃棒上。

7、然后加入0.5ml左右的10×SSC，使最终浓度为1×SSC。

8、重复第6步骤和第7步骤即得到DNA的粗制品。

9、加入已处理的Rnase溶液，使其最后的作用浓度为50～70μg/ml，并在37℃水浴中保温30min，以除去RNA。

10、加入等体积的氯仿－异戊醇混合液，在三角瓶中振荡1min，再除去残留蛋白质及所加Rnase蛋白，室温下以4000rpm离心5min，收集上层水溶液。

11、再按6、7步骤处理即可得到纯化的DNA液。植物DNA的CTAB提取法： 试验步骤：

1、称取新鲜叶片2-3g，剪碎放入研钵中，在液氮中研磨成粉末。

2、将粉末转移到加有7ml经预热的15×CTAB提取缓冲液15ml离心管中，迅速混匀后置于65℃水浴中，温育30min。

3、取出离心管,冷却至室温，加入氯仿/异戊醇(24:1)，充分混匀，室温下2300转离心20min。

4、将上清转移至另一新的15ml离心管中，加入1/10体积10%的CTAB和等体积的氯仿/异戊醇。充分混匀，2300rpm离心20min。

5、转移上清至另一新的15ml离心管中，加入等体积1%的CTAB沉淀缓冲液，轻轻摇晃至形成DNA絮状沉淀。1000rpm离心10min，使DNA沉淀于管底。

6、加入1.5-2ml的1mol/LNaCl及5μlRNase置于56℃水浴中过夜。

7、待DNA完全溶解后，加2-3ml4℃预冷的95%的冰乙醇使DNA沉淀，挑出DNA，置于15ml离心管中，用70%乙醇清洗30min。

8、离心机甩5s，倒出70%乙醇，再用95%乙醇浸泡5min，倒出95%乙醇，在超净工作台上吹干。

9、将风干的DNA直接在4℃保存备用或溶于100μlTE溶液中于-20℃保存。

细菌DNA的提取方法

针对一些不易于提取的细菌的方法: 试验试剂：

抽提缓冲液：2%CTAB(W/V)2%PVPK25(w/v)（去色素）100mMTris-HCl(pH8.0)25mMEDTA(pH8.0)2.0MNaCl 10MLiCl 2MLiCl DEPC-water（抑制RNA酶活性）3MNaAc(pH5.2)96%乙醇 70%乙醇 试验步骤：

1、抽提缓冲液65℃预热。

2、加菌体到已经预热的缓冲液（700ul）中混匀，65℃，10min。

3、加酚/氯仿/异戊醇（25：24：1），振荡，以12,000rpm，离心10min。

4、取上清，加氯仿/异戊醇（24：1）振荡，以12,000rpm，离心10min。

5、重复再作一次步骤4。

6、加入1/10体积的3M醋酸钠和1.5倍体积的乙醇（或加入等体积的异丙醇），－20C下沉淀。

7、以2,000rpm，离心10min。

8、弃上清，以70％乙醇条洗沉淀，也可以再用100％乙醇洗，然后溶解于100ml水中。较为常用的细菌DNA提取方法： 实验步骤：

1、将菌株接种于液体LB培养基，37℃震荡培养过夜。

2、取1.5ml培养物12000rpm离心2min。

3、沉淀中加入567ul的TE缓冲液，反复吹打使之重新悬浮，加入30ul10%SDS和15ul的蛋白酶K，混匀，于37℃温育1h.4、加入100ul5mol/LNaCl,充分混匀，再加入80ulCTAB/NaCl溶液，混匀后再65℃温育10min。

5、加入等体积的酚/氯仿/异戊醇混匀，离心4-5min,将上清转入一只新管中，加入0.6-0.8倍体积的异丙醇，轻轻混合直到DNA沉淀下来，沉淀可稍加离心。

6、沉淀用1ml的70%乙醇洗涤后，离心弃乙醇． 真菌DNA提取总结的两种方法： 第一种方法： 试验步骤：

1、取真菌菌丝0.5g,在液氮中迅速研磨成粉。

2、加入4mL提取液，快速振荡混匀。

3、加入等体积的4mL的氯仿:异戊醇(24:1)，涡旋3～5min（此处是粗提没有加酚）。

4、以4℃，1000rpm，离心5min。

5、上清再用等体积的氯仿:异戊醇(24:1)抽提一次。以4℃，10,000rpm，离心5min。

6、取上清，加入2/3倍体积的-20℃预冷的异丙醇或2.5倍体积的无水乙醇沉淀,混匀,静置约30min。

7、用毛细玻棒挑出絮状沉淀,用75%乙醇反复漂洗数次,再用无水乙醇漂洗1次,吹干，重悬于500ulTE中。

8、加入1ulRNaseA（10mg/mL），37℃下处理1h。

9、用酚（pH8.0）:氯仿:异戊醇(25:24:1)和氯仿:异戊醇(24:1)各抽提1次。以4℃，10,000rpm，离心5min。

10、取上清，加入1/10倍体积的3MNaAc,2.5倍体积的无水乙醇,-70℃沉淀30min以上。

11、沉淀用75%乙醇漂洗，风干,溶于200ulTE中，-20℃保存备用。

DNA提取液：0.2MTris-HCl（pH7.5），0.5MNaCl，0.01MEDTA，1％SDS，3MNaAc。第二种方法： 试验步骤：

1、真菌菌丝0.5-1g,在液氮中迅速研磨成粉。

2、加入3mL65℃预热的DNA提取缓冲液，快速振荡混匀65℃水浴30min,期间混匀2-3次。

3、加入1mL5MKAc，冰浴20min。

4、等体积的氯仿:异戊醇(24:1)抽提1次（10,000rpm，4℃离心5min）。

5、取上清，加入2/3倍体积的-20℃预冷异丙醇,混匀,静置约30min。

6、用毛细玻棒挑出絮状沉淀,用75%乙醇反复漂洗数次,再用无水乙醇漂洗1次,吹干，重悬于500ulTE中。

7、加入1ulRNaseA（10mg/mL），37℃处理1h。

8、用酚（pH8.0）:氯仿:异戊醇(25:24:1)和氯仿:异戊醇(24:1)各抽提1次。以4℃，10,000rpm，离心5min。

9、取上清，1/10V3MNaAc,2.5V体积的无水乙醇,-70℃沉淀30min以上。

10、沉淀用75%乙醇漂洗，风干,溶于200ulTE中，-20℃保存备用。

石蜡包埋DNA提取试验方法

试验原理：

从石蜡包埋组织中提取DNA的基本步骤，是在常规DNA提取方法的基础上改良和演变而业。Goelz等（1985）最先提出的石蜡包埋组织DNA提取技术，是用机械的方法破碎组织，切除多余的石蜡，进入含SDS和高浓度蛋白酶K（１mg/ml）的提取缓冲液加温孵育，然后进行苯酚和氯仿抽提。所得DNA虽不完整，但可被限制性内切酶切割，因而适于点杂交，印迹杂交等多种分了生物学实验。Dubeau等（1986）在上述方法上作了改进。首先通过组织切片和二甲苯和脱蜡，保证了组织的完全破碎，使细胞与消化液充分接触，使DNA释放和蛋白去除更加完全；其次通过两步消化的方法，将不适于做分子杂交的降解的DNA小段去除，仅保留那些可螺旋化的完整的DNA分子，从而提DNA质量，适于做Sorthern印迹杂交分析。

试验试剂：

配方：3mol/lNacl，0.3M柠檬酸三钠·2H2O，用HCL调PH值至7。0 石蜡消化液：150nmol/lNacL：15mmol/l柠檬酸钠，1%SDS，PH7.0。试验步骤：

1、取蜡块切片15-20张（8μm），置于eppendorf管中，加入1ml的二甲苯，37℃作用3h，以10000rpm，离心3min，倾去二甲苯。重复3-4次，观察管壁是否光滑。如果仍有蜡质残存，需继续脱蜡。

2、剃度酒精水化：加入100%乙醇1ml，室温下放置30min，以10000rpm离心3min，去上清；再依次分别加入95%；75%；50%的乙醇重复上面的步骤。

3、消化：以1×SSC500μL加入SSC洗涤沉淀，以12000rpm离心3min。弃去上清夜，干燥沉淀。加入石蜡消化液400μL，PK（20mg/ml）20μl；55℃消化120h，第四天，补加PK10μl。

4、消化后的液体很清亮，肉眼可见的组织较少。将其转入98℃的水浴箱中，煮沸10min，以灭活PK，取出后置于冰上，使其迅速冷却。以10000rpm，离心5min。

5、取上清加等量的酚-氯仿，轻颠倒混匀呈乳白色。低温下以14000rpm，离心10min。小心取上清，再加入等量的酚-氯仿重复上面的步骤。

6、取上清加入预冷的两倍体积的无水乙醇及1/10的乙酸钠（PH5.2），颠倒混匀。置于-20℃，30min。低温下以14000rpm，离心10min，去上清。

7、沉淀用1ml的70%乙醇洗涤2次，（颠倒eppendorf管数次）以14000rpm，离心5min，自然干燥沉淀。

8、加TE20μl，（含RNA酶），4℃下过夜。注意事项：

1、取材时应避免出血坏死的组织，尽可能选用新鲜的标本。

2、消化时应不时震摇离心管，使酶与组织充分接触。

3、福尔马林固定和石蜡包埋使组织变得坚韧，匀浆的效果往往不理想，可将组织切成10um的薄片进行消化。

4、消化不完全，可采用高浓度蛋白酶K及延长消化时间。附：elz氏DNA提取方法的主要步骤：

提取液的制备：500mmol/LTris20mmol/LEDTA10mmol/LNaCl1％SDS 500μg/ml蛋白酶ＫpH8.0

1、切除多余石错，暴露组织。将组织切碎（最大径<0.5mm），称重。

2、溶于TE9提取液(组织<50mg/5ml.50－500mg/10ml),高速混悬2－3min，于48℃放置24h。

3、再次混悬组织，加入蛋白酶Ｋ至终浓度１mg/ml，SDS至２％，孵育40h。

4、用等体积酚－氯仿溶液抽提３次。2.5倍体积乙醇沉淀DNA。-70℃放置２－４h。9000rpm离心１h。

5、沉淀物用70％乙醇洗１次，干燥，TE（pＨ7.2）溶解。

DNA提取其他方法

适用于PCR研究的快速提取法： 试验步骤：

1、田间剪取植株新鲜叶片5－10mg（约2cm长）左右，新鲜叶片放于15ml离心管中，存于冰盒中，根据样品号贴上相应的标签。

2、用剪刀将叶片组织剪细（约0.5cm长）放在点穴式研板中。加入400μlDNA提取缓冲液，用玻棒将叶组织研细，直到液体变成深绿色即可。

3、加400μlDNA提取缓冲液，混合均匀，转入一新的15ml离心管（贴上相应的编号）。

4、加400μl氯仿，混合均匀后，2400转离心30s，将上清液转入一支新的15ml离心管（贴上相应的编号）。

5、加800μl无水乙醇，混匀，2400转离心3min。弃上清。70%乙醇冲洗，风干。用50μlTE缓冲液溶解，存于－20℃。取1μl用于PCR分析。

Chelex-100法提取DNA： 试验原理：

Chelex-100是一种化学螯合树脂，由苯乙烯、二乙烯共聚体组成。含有成对的亚氨基二乙酸盐离子，对高价金属离子有很高的亲合力和螯合作用。在低离子强度、碱性及煮沸条件下，可以使细胞膜破裂，并使蛋白质变性，DNA游离。Chelex-100特别适用于微量生物样本的处理，方法简便快速，提取过程始终在同一管中进行，不用转移，可减少DNA的损失，操作步骤简化，减少了污染的机会。

以血液为例实验步骤：

1、取血液1-3?l，置1.5ml离心管中，加灭菌双蒸水1ml，振荡混匀，室温30min，或置冰箱-20℃5min。2、10000r/min离心5min，弃上清，反复2-3次。

3、于沉淀中加入200?l悬浮好的5%的Chelex-100溶液，56℃水浴2h或37℃水浴过夜。

4、振荡5-10秒，置100℃5-10min，取出振荡溶液5-10s。5、10000r/min5min，上清液即可作为PCR反应的DNA模板。注意事项：

1、Chelex-100处理模板仅适用于PCR反应，处理液不宜长期保存，如果保存的时间稍长，可将上清液转移至另一管中保存备用。一般在一周内使用，如果保存时间过长则会影响PCR扩增结果。

2、在处理模板的各个步骤中，振荡要充分。

3、煮沸的温度、时间要充分，否则将影响扩增。

4、使用前要混匀离心，取上清液作为模板，如果PCR反应体系中含有Chelex-100，Mg2+会被螯合，降低酶活性，使PCR扩增失败。

硅珠法提取DNA： 试验原理： 在高浓度的硫氰酸胍存在的条件下，DNA能够被二氧化硅特异性吸附，当没有硫氰酸胍存在时，DNA又可从二氧化硅中释放出来。硫氰酸胍是一种高性能的蛋白变性剂，可以使蛋白质与DNA充分分离，在硅珠吸附前高速离心可以将变性的蛋白质及一些不溶的物质除去。吸附后的漂洗过程则可将溶液中的PCR抑制物洗去。

试验试剂：

1、吸附剂：12gGuSCN溶于10ml0.1mol/LTris-HCl(pH6.4)，0.8ml0.5mol/LEDTA，0.5mlTritonX-100。

2、漂洗剂：12gGuSCN溶于10ml0.1mol/LTris-HCl(pH6.4)。

3、硅珠悬浮液：0.06gSilica溶于1ml灭菌超纯水。

4、TES：1ml1mol/LTris-HClpH8.0，2ml5mol/LNaCl，2ml0.5mol/LpH8.0EDTA，95ml灭菌超纯水。

试验步骤：

1、取1.5ml离心管1支，加入TES200ul，10%SDS40?l再加入血液2-4?l，混匀，煮沸5min。

2、振荡混匀，加入300-600?l吸附液，混匀。

3、加入20-40?l硅珠悬浮液，振荡混匀，置室温15min，振荡5s，10000r/min离心2min。

4、除去上清，于沉淀中加入200-400?l漂洗液，充分悬浮沉淀物，10000r/min离心1min。

5、去上清液，重复漂洗一次，去上清后沉淀物用70%乙醇漂洗1－2次。10000r/min5min。

6、去乙醇，置56℃ 10min，于沉淀中加入50-100?lTES，旋涡混合30s，56℃保温10min。7、10000r/min离心10min，上清液可直接用于PCR反应。固相吸附法提取DNA： 试验原理：

硫氰酸胍具有溶解细胞和灭活核酸酶的性质，利用当硫氰酸胍存在时硅藻颗粒能特异性吸附DNA，而当去除硫氰酸胍时，DNA又能从硅藻上释放出来的特性，来提取样本中的DNA。该方法尤其适用于临床标本的DNA提取。

试验试剂：

1、裂解液：12gGuSCN，10ml0.1mol/LTris-HClpH6.4，2.2ml0.2mmol/LEDTApH8.0，0.3mlTritonX-100。

2、洗涤液：12gGuSCN，10ml0.1mol/LTris-HClpH6.4。试验步骤：

1、取100?l样品加900ul裂解液，20?l硅藻液，振荡混合，10000r/min离心1min，去上清。

2、加1ml洗涤液，悬浮沉淀洗涤，10000r/min离心1min，再重复一次。加1ml70%乙醇洗一次，1ml丙酮洗一次，去上清，56℃ 10min。

3、加60?lTE缓冲液混匀，56℃ 10min，10000r/min离心5min，上清液备用.DNA含量的检测和纯化

DNA含量的检测：

一种方法是通过凝胶电泳的方法检测DNA的含量：取2-5?lDNA溶解液与0.4?l6×载样缓冲液混合，用0.75%琼脂糖凝胶(含EB0.5?g/ml)检测。溴化乙锭可迅速嵌于DNA双螺旋结构中，嵌入DNA中的溴化乙锭受紫外光激发而发出荧光，这种荧光强度与DNA总质量数成正比，通过比较样品与标准品的荧光强度，对样品中的DNA进行定量。（详见凝胶电泳）另一方法是分光光度法，组成DNA的碱基，具有一定的吸收紫外线的特性，其最大吸收值在波长250-270之间。这些碱基与戊糖、磷酸形成核苷酸后，其吸收紫外线的特性没有改变，核酸的最大吸收波长为260nm，利用DNA的这个物理特性来测定DNA的浓度。

分光光度法的具体方法是：

1、取两只清洁的比色杯，各加入2ml0.1mol/LNaOH校正零点。

2、以其中的一只比色杯作为空白对照，在另一只比色杯中加入4?lDNA溶液，再加入0.1mol/LNaOH至2ml混匀。

3、测定波长为260nm时的OD值，再将波长调至280nm测其OD值。

4、根据OD260=1时，双链的DNA浓度为50?g/ml，单链DNA或RNA浓度为40?g/ml，按计算公式：样品DNA浓度(?g/ml)=OD260×40?g/ml×稀释倍数，计算样品的DNA浓度。

DNA纯化：

首先利用琼胶电泳将不同分子量的DNA片段分开,将某一特定分子量区域的琼胶切下,利用DNAextractionkit将DNA从琼胶中溶出并浓缩。（可参考质粒DNA的纯化）实验材料： 1、6Xgel-loadingde:15%Ficoll400,0.25%bromophenolblue,0.25%xlenecanol紫外光箱

2、DFBuffer

3、WashBuffer

4、ElutionBuffer:10mMTris-HCl(pH8.5)

5、DFColumn 6、2mlCollectionTube 实验步骤：

1、将欲分离之DNA混合物以0.7%琼胶电泳分离。

2、电泳后,将琼胶置於紫外光箱上观察,把含有欲纯化之DNA片段的琼胶部位切下。

3、将步骤B的琼胶以蓝色微量吸管尽可能戳碎。

4、加入500mlDFbuffer,55oC作用10分钟,每2-3分钟摇晃数次,直至琼胶完全溶解。

5、将步骤D琼胶溶液全部吸入DFColumn,并套上CollectionTube(收集过滤液)。6、8000rpm离心1分钟,将过滤液倒掉。加入500mlWashBuffer,8000rpm离心1分钟,过滤液倒掉。14000rpm离心2分钟。

7、将DFColumn转移至上另一乾净的微量离心管.加入15mlElutionBuffer,室温静置2分钟。8、14000rpm离心2分钟,微量离心管内之液体即为纯化的DNA片段。

9、取0.5ml纯化的DNA加入4.5mlDDW及1ml6xDNAloadingde,跑0.7%琼胶电泳,与marker比较,估计DNA的浓度。

第三篇：以Chelex100为介质抽提DNA解析

以Chelex 100为介质抽提DNA

近年来，DNA的分析技术已广泛地应用于肿瘤学的研究中。获取DNA的传统方法是以新鲜、-70℃或液氮保存的标本为材料，通过蛋白酶K消化，酚、氯仿抽提而获取DNA。1987年，Fey等［1］首先用NP40成功地从骨髓涂片中提取到较高分子量的DNA，用于Southern印迹分析。国内的一些学者［2,3］也用相似的方法，从骨髓涂片中提取到DNA。但这两种方法均需蛋白酶K消化，酚、氯仿抽提，乙醇沉淀等步骤，操作复杂，费时。同时，需要在多个离心管之间转移，增加了标本间的交叉污染。由于PCR技术对DNA样品的纯度和分子量的要求相对较低：对微量的DNA即可扩增，且只需待扩增的靶序列完整即可，不要求高分子量。因此，部分降解的DNA均可作PCR检测。由于PCR有极高的敏感度，需严格控制标本间的交叉污染，同时为了适应血液系统恶性肿瘤标本来源的特点，我们通过与常规酚、氯仿提取DNA进行比较，以了解以Chelex 100为介质提取DNA对PCR的影响。

一、材料和方法

1.细胞：(1)细胞株：B-NHL细胞株-村林细胞。(2)外周血有核细胞：由健康志愿者提供。

2.DNA获取率比较：(1)将不同培养瓶中已培养的村林细胞混合；A组取10份，5 ml/份；B组取10份，0.5ml/份。(2)A组用酚、氯仿抽提DNA ：按Sambrook等［4］介绍的方法提取DNA。(3)B组用Chelex 100为介质提取DNA：将已培养定量的村林细胞加入Eppendorf管中，加去离子水1ml，间歇振荡30 分钟。15 000r/min离心5分钟，弃去上清液470 μl，加10% Chelex 100 170 μl，56℃温育30分钟。超速振荡15秒，沸水浴8分钟，15 000 r/min离心5分钟，上清液即为DNA模板［5］。(4)DNA定量：在微量紫外分光光度计上分别测两种不同方法提取DNA的吸光度(A，曾称光密度OD)值，换算出DNA的浓度和获得量：

DNA浓度(μg/ml)=OD260 ×50×稀释倍数

DNA获得量(μg)=DNA浓度×DNA溶液体积(5)统计学处理：采用两样本均数检验法进行检验。

［4］

3.PCR敏感性比较：(1)外周血有核细胞DNA的提取：按Sambrook等方法用酚、氯仿提取。(2)实验分组：以Chelex 100为介质抽提的村林细胞DNA与外周血有核细胞DNA混合为A组；以酚、氯仿抽提的村林细胞DNA与外周血有核细胞DNA混合为B组，使村林细胞DNA含量分别为5%、1%、0.5%、0.3%、0.2%和0.1%。(3)PCR扩增：取1μgDNA，选用IgH基因重排引物，按Trainor等［6］方法进行Semi-nest扩增。(4)取PCR产物15 μl于8%聚丙烯酰胺凝胶200V电泳2小时，EB染色，紫外灯下观测，拍照。本实验重复3次。

4.PCR准确性的比较：(1)PCR扩增：分别以Chelex 100法和酚、氯仿法抽提的50ng DNA为模板，进行扩增，方法同前。(2)SSCP检测：按Yap等方法进行［7］。(3)银染：1%硝酸浸泡5分钟，去离子水冲洗2次；0.2%硝酸银浸泡3～5分钟，去离子水冲洗2次；3%无水碳酸钠显影至条带清晰而背景不至过深，10%乙酸浸泡5分钟，停止反应。风干后拍照。重复3次。

5.血红蛋白对PCR敏感性的影响：(1)以Chelex 100 为介质提取村林细胞DNA：方法同前。(2)用健康志愿者外周血10 μl，按以Chelex 100 为介质抽提DNA的方法和过程，对其进行处理。(3)用酚、氯仿抽提外周血有核细胞DNA：方法同前。(4)用微量紫外分光光度计测DNA的含量：方法同前。A组：以Chelex 100为介质抽提的村林细胞DNA按5%、1％、0.5%和0.3%的比例用外周血有核细胞DNA稀释。PCR扩增时模板加量分别为1 μg。B组：以Chelex 100为介质抽提的村林细胞DNA按5%、1％、0.5%和0.3%的比例用外周血有核细胞DNA稀释。PCR扩增时的模板加量也为1 μg，但同时加5 μl的本节实验步骤2处理后的上清液。(5)PCR扩增、电泳、染色及拍照：同前。本实验重复3次。

二、结果

1.两种不同方法提取DNA时的获取率：酚、氯仿抽提组:5ml村林细胞的DNA的平均获取量为82.4 μg±1.04 μg。Chelex 100组，0.5ml村林细胞的DNA的平均获取量9.10 μg±2.84 μg。经统计学检验，t值为0.899 5，P=0.380 25，两组间的差异无显著性。

2.两种不同DNA提取方法PCR敏感性的比较：用以Chelex 100为介质抽提的DNA进行PCR扩增时，其可检测的最低含量为0.3%，即3ng/1 μg。用酚、氯仿抽提的DNA进行PCR扩增，其可检测的最低含量为0.2%，即2ng/1 μg(1)。

1～6:稀释度分别为0.1％、0.2%、0.3%、0.5%、1%、5%，M：Marker Marker左侧为以Chelex 100为介质抽提组，右侧为酚、氯仿抽提组 1 两种不同方法抽提DNA后梯度稀释、PCR扩增结果

3.两者不同DNA提取方法的PCR准确性的比较：结果显示单链位置无差异，表明以Chelex 100为介质抽提的DNA进行PCR扩增的产物经SSCP及银染后与经酚、氯仿抽提的无差异。

4.血红蛋白的存在对PCR敏感性的影响：实验结果显示，两组PCR扩增产物条带在紫外灯下亮度无差异，表明，用Chelex 100 为介质抽提DNA时，红细胞的存在与否，不影响PCR的敏感性（2）。

1～4:稀释度分别为0.3%、0.5%、1%、5%；M:Marker;Marker左侧为不含血组,右侧为含血组 含血与不含血标本PCR扩增结果

三、讨论

在有关分子生物学的研究中，DNA提取的方法很多，但由于操作步骤多易污染，所用的有机溶剂对人体有害，且标本量要求多，保存要求高；或者由于DNA的获取量少，且有PCR扩增的抑制因素的存在，使PCR扩增的结果不稳定［5］，严重影响了该方法在某些方面的应用。

Chelex 100 做为一种离子螯合剂，由苯乙烯和苯二乙烯组成。其悬液在碱性环境(pH 10-11)和100℃的条件下，可导致细胞膜的破裂和DNA的变性并释放出来［5］。本实验通过对两种不同抽提DNA进行PCR扩增的方法的比较，发现以Chelex 100为介质抽提DNA时，DNA的获取率与经典的酚、氯仿抽提法的无差异。这是由于前一方法虽然存在DNA释放得是否完全以及仍有一部分由于高温而降解的问题［8］，但酚、氯仿抽提时由于抽提过程中含有DNA的水相在转移过程中不可避免地要损失一部分，使得DNA的获取率也降低，导致二者在DNA的获取率方面差异无显著性。

此外，本实验结果还表明，用此方法抽提DNA进行PCR扩增的阈值高于经典的酚、氯仿抽提法的：阈值分别为0.3%和0.2%，而忠实性无影响。DNA在［8］100℃的条件下，可发生大量的降解，Sepp等研究证明，沸水浴处理后，所得的DNA的片段在200 bp以下，且量少。这主要是由于标本中的金属离子在高温和低离子强度的条件下对DNA降解的催化作用所致［5］。而在有Chelex 100存在的条件下，金属离子被结合，阻止了其对DNA降解的催化作用，同时，由于Chelex 100 的颗粒在离心后沉淀下来，不会干扰PCR反应体系中的Mg2+浓度，且借助于PCR反应体系中缓冲液，其碱性的上清液也不会影响到PCR的扩增反应。但是，由于高温本身也有一定程度降解DNA的作用，使得该方法提取的DNA片段在1 000 bp以下［8］，其中可含有低于80bp的小片段，也可出现DNA片段断裂在PCR扩增的靶序列区域内。这使得有效的靶序列的拷贝数减少，导致了用以Chelex 100为介质抽提DNA进行扩增的方法的阈值稍高于酚、氯仿抽提法的阈值，而PCR的忠实性无影响。

再者，本实验中，两种不同DNA抽提方法在用梯度稀释进行敏感度检测时的敏感度分别为0.3%(3ng/1 μg)和2%(2ng/1 μg)。由于0.1 μg外周血单个核细胞DNA约含有104个不同的重链基因，上述敏感度分别相当于1 000个外周血有核细胞中可检出3个和2个肿瘤细胞。

另外，在含血的标本中，血红蛋白去除不彻底，其中的卟啉化合物可抑制PCR扩增。在酚、氯仿抽提时，由于蛋白质被去除，也可通过预先去除红细胞，使得卟啉化合物得到去除或明显减少。而在以Chelex 100为介质抽提DNA时，由于未用蛋白酶K消化，卟啉化合物很少从血红蛋白中释放出来，且可能还可以通过与Chelex 100结合，使得PCR扩增不受影响［5］，本实验的结果证实了这一点。

由于此方法获取的DNA的片段小于1 000 bp，故不能用于扩增靶片段大于1 000 bp的PCR实验中，也不适用于Southern杂交中，应引起注意。

作者单位：200092 上海第二医科大学附属新华医院儿内血液／肿瘤科（步嵘、王耀平）；上海铁道大学医学院附属甘泉医院检验科（叶元康）

参考文献

Fey MF, Pilkington SP, Summers C, et al.Molecular diagnosis of hoematological disorders using DNA from stored bone marrow slides.Br J of Hoematol, 1987,67:489-492.2 陈勖奇.从骨髓涂片提取DNA用于PCR扩增.中华内科杂志,1993,32:655-655.3 刘艳平, 张鹏，朱平.PCR方法分析骨髓涂片微量DNA－检测微量残留病.中华血液杂志,1993,14:648-649.4 金冬雁，黎孟枫译.见：Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T.主编.分子克隆.第2版.北京：科学出版社.1993.456-494.5 Walsh PS, Metzger DA, Higuchi R.Chelex 100 as a Medium for simple extraction of DNA for PCR-Based typing from forensic material.Biotechniques 1991,10:506-513.6 Trainor KJ, Brisco MJ, Wan JH, et al.gene rearrangement in B-and T-lymphoproliferative disease detected by the polymerase chain reaction.Blood, 1991,78:192-196.7 Yap EPH, Mcgee JOD.Non-isotopic Single-Strang Conformation Polymorphism.In: Griffin H.G, Griffin AM, eds.PCR Technology.Boca Raton: CRC Press, 1994.165-177.8 Sepp R, Szabo I, Uda H, et al.Rapid techniques for DNA extraction from routinely processed archival tissue for use in PCR.J Clin Pathol, 1994,47:318-323.(本文编辑：蔡振国)

(收稿：1998-08-15 修回：1999-07-23)

第四篇：RNA抽提知识

RNA抽提

1：RNA抽提原理

简单地讲，RNA抽提包含样品的裂解和纯化两大步骤。裂解是使样品中的RNA游离在裂解体系中的过程，纯化则是使RNA与裂解体系中的其它成分，如DNA、蛋白质、盐及其它杂质彻底分离的过程。Trizol试剂的出现基本能解决绝大部分样品RNA抽提，该方法已经成为了 RNA 抽提的主流。

2：了解你的实验样品

如果你研究某个实验样品，并且要抽提它的RNA，以下的信息一定要先行收集：该样品的RNA含量、酶含量、特殊杂质含量。如果你对样品的特点一无所知，当样品稍微有一点复杂时，抽提RNA的实验就会碰到许多问题。以血液为例，如果你不知道鸟的血液中有核细胞的含量是人血的千倍左右，而使用人血一样的起始量去抽提鸟血的基因组 DNA，怎么可能成功？失败了又怎么知道原因所在？同时，只有对实验样品有所了解，才能正确选择抽提方法。但同时提醒的是：没有信息是可怕的，更可怕的是将错误的信息当真的了。

3：实验样品量的取用

样品与Trizol的比例。这个问题非常重要，应该获得足够的重视。Trizol的Protocol，提供了一个简单的比例，1ml 裂解液可以用于 50-100mg 组织或5-10X106个细胞；我的建议是，样品量绝对要小于资料所提供的。起始样品用多大，并没有具体的说法。如果不是样品量有限，则以能抽提出满足数次成功实验所需的RNA，作为决定样品起始量的基础，会比较合理的。不要因为 1ml 裂解液可以抽提 100mg 样品，就一定使用 100mg 样品。裂解液的用量，表面上与抽提的结果(纯度及得率)没有关系，然而，在实际操作中，对结果是有比较大的影响的。裂解液的用量原则是：确保能彻底裂解样品，同时使裂解体系中核酸的浓度适中。浓度过低，将导致沉淀效率低，影响得率；浓度过高，去除杂质的过程复杂且不彻底，导致纯度下降。不同得样品其RNA含量差别很大。高丰度(2-4ug/mg)的如肝脏，胰腺，心脏，中丰度(0.05-2ug/mg)的如脑，胚胎，肾脏，肺，胸腺，卵巢，低丰度(<0.05ug/mg)的如膀胱，骨，脂肪。考虑后续实验，一般情况下，高丰度的样品取用量大概是10-20mg/ml Trizol,中丰度样品50mg/ml Trizol,低丰度样品我们可以根据客户提供的实验样品量酌情取用。重申一下，不是越多越好，在考虑样品在1ml Trizol里能充分裂解的同时，还得考虑大量的样品可能也会带来大量的杂质！利用Trizol试剂抽提血清样品时，Trizol /血清比值不要小于7/3。石蜡样品由于RNA降解严重，含量大打折扣，所以取样时应该按低丰度样品原则取用。

3：裂解方法

裂解的目的就是破坏细胞的结构，释放出里面的RNA，使其溶解于裂解液中。绝大部分样品的裂解，比如冻存的细胞，心、肝、脾、肺、肾等，利用Trizol试剂，普通的匀浆方法就可以达到满意的效果！但是如果碰到比较特殊的样品，我们可能要附加一些其他的辅助手段。1）骨骼。骨骼组织质地坚硬，普通的匀浆器根本无法使其破碎，以致RNA不能完全释放溶解在TRIZOL试剂中，碰到这种类型的样品，我们必须先利用液氮把样品破碎成粉末状，Trizol悬浮混匀再利用Minibeadbeater匀浆5分钟。取上清, 2000g 4℃离心5min再取上清 去沉淀。2）细菌 Trizol虽然对细胞的裂解效果出众，但是对细菌坚韧的细胞壁还是无可奈何，这时我们可以利用超声来辅助破壁。将细菌重悬于300ul的Trizol中，置于Bioruptor冰水浴中，M 档 30s “on”、30“off”超声处理1—2 min.取出用Trizol将体积补至1ml。3)酵母 酵母细胞跟细菌一样，还是因为细胞壁的原因，不能充分裂解。Zymolyase在37℃ 40分钟可以很好的消化掉酵母细胞壁，这里需要提醒的是消化缓冲液不能有外源性RNA酶污染，最好附加使用RNA酶抑制剂，做好了这点就不用担心这步有RNA降解的问题。4）石蜡包埋样品 石蜡包埋的组织样品在加Trizol裂解前必须先脱蜡，脱蜡的效果直接影响后续实验，所以我们为使脱蜡充分，选用高温脱蜡与二甲苯脱蜡相结合的两步脱蜡法。脱蜡后加入Trizol匀浆。5）脂肪 脂肪组织可以直接用Trizol 匀浆，这里需要提醒的是脂肪组织匀浆后，需室温静置5min，再室温7500g 离心5分钟，去除上面的脂肪层再继续后续实验！

4：分相

Trizol里含有的物质之一“酚”去除蛋白质是有一定的饱和度的。超过了该饱和度，裂解体系中的蛋白质不会被一次去除，裂解匀浆后的样品，按1ml Trizol 加200ul 的氯仿，震荡离心，绝大部分样品在这一步是不需要用特殊方法对待的，但对于蛋白含量比较高的组织样品必须要二次抽提，甚至多次抽提方可彻底去除。这里要着重提到的是血清样品！离心分相后，取上清这一步是分相实验的操作难点，一定要谨慎，万不可混入有机相污染，原则是宁缺勿滥！

5:异丙醇的沉淀

异丙醇的沉淀，目的是使RNA从裂解体系中沉淀下来，从而实现RNA与其它杂质 – 主要是盐 – 的分离。实际操作中，有的杂质也会与RNA一起被醇沉淀下来，尤其是当其它杂质的浓度也比较高的时候。异丙醇的沉淀并不是非常特异性的，有机大分子及一些盐，当浓度达到一定水平后，都可能同步被沉淀下来。在不影响后续实验的情况下，我们是可以忽略这些盐污染。有些实验样品，由于前期用药物或某种方法处理过，导致会残留有一些特殊的杂质，之所以残留，往往是因为这些杂质与RNA有一些相似性：你沉淀我沉淀，你吸附我吸附。这些特点决定了它们往往是非常强的酶抑制剂，对后续实验影响非常大。这里介绍有几种方法除去这些杂质：1）TRIzol 提供的一个沉淀方案：一半异丙醇加一半高盐溶液替代纯粹的异丙醇，可以大大降低多糖残留。2）介质纯化：遇到一些与RNA共同沉淀下来且影响后续实验的一些杂质，可以利用BioMag公司提供的连有 Oligo dT的磁珠纯化出总RNA中的mRNA，这个方法优点是基本能解决绝大多数有杂质污染的总RNA（目前没有遇到这种方法处理不了的），缺点是成本比较高。对与RNA含量少的样品，直接异丙醇沉淀得率会很低，而且基本看不见沉淀物，这也会给后续的操作带来很大的麻烦，进一步损失RNA。遇到这种情况我们可以使用一种媒介(Golycogen)跟RNA共同沉淀下来，这种媒介物质既能很好的跟RNA共同沉淀下来，又不会影响后续实验。不要迷信试剂说明书里的标准方法；有时，使用标准方法碰到问题在标准方法中是找不到答案的，要具体问题具体分析。

6：洗涤

洗涤注意四点：首先一定要将沉淀悬浮起来；第二就是要有一定的时间，尤其是当RNA沉淀比较大时 ；第三是少量多次；第四则是去上清要彻底。在异丙醇沉淀后，绝大多数时是能看见管底的白色沉淀，但还是有时候是看不见的，即使是加过Golycogen的。遇到这种情况不要慌，没看见不等于没有，遇到这种情况可以先用移液器小心的吸去上清，注意枪头不要碰到管壁。加入75%乙醇，上下颠倒几次，短暂离心后用移液器吸去上清，同时仔细观察管壁是否有挂液。如果有，那没问题，可以确定沉淀都附在管壁上了。

7：RNA的溶解和保存

纯化后的RNA溶解以水为主，用无Rnase酶的水溶解的RNA基本上还算稳定，其稳定与温度成反比，与浓度成正比。所以抽提好的RNA应尽快保存在-70℃，避免反复冻融，同时注意不要把浓度稀释的太低，大概保持在1000ng/ul。如果温度合适，保存中RNA发生降解或者消失，其原因应该是酶残留导致的酶解。

8：RNA质量的检测问题

将抽提好的RNA直接用于后续的实验，是唯一可靠的检测方法；除此之外的检测方法，都是相对的，不可全信。目前实验室用于正式实验前检测RNA质量的方法，一是电泳，二是NANO-Drop。电泳检测的主要是RNA的完整性和大小，该方法还是比较可信的；同时电泳还可以用于估计核酸的浓度，其准确度与经验有关；另外，电泳也可能提供某些杂质污染的信息，但是同样与经验有关。NANO-Drop检测的是纯度和核酸含量。然而，由于NANO-Drop不能确保非常准确，所以，提供的结果并不十分可信。一般讲，同时进行NANO-Drop检测和电泳检测，综合二者的结果，可以做出一个更合理的判断。但由于这两个方法都有缺陷，所以，即使出现坏的结果能用于后续实验而好的结果却不能用于后续实验，也不用大惊小怪。（A260/A280 比值低 – 蛋白质残留但更可能是苯酚残留。A260 值提示的含量与电泳检测时提示的含量有可见的误差可初步判断是苯酚残留。）

第五篇：DNA抽提试剂盒简介

一．上海生工的试剂盒：

1.基因组小量抽提试剂盒

BS47350Extractions350元BBI

BS474100Extractions420元BBI

SK125150次280元Sangon

SK1252100次380元Sangon

基本说明：通过将组织细胞裂解后，以RnaseA和Proteinase K消化降解RNA和蛋白质。然后经过简单抽提、沉淀获得基因组DNA。本试剂盒适用于从人或动物的血液、培养细胞、各种组织、Gram+/Gram-细菌中快速抽提基因组DNA。

主要特点：1.整个抽提过程30分钟，氯仿抽提仅一次，无需酚抽提。

2.本试剂盒抽提DNA能用于几乎所有生物学实验。

3.按样品准备方法得到的200微升样品中可获得2~10微克DNA。

2.UNIQ-10柱式血液基因组抽提试剂盒

BS48350Extractions390元BBI

BS484100Extractions760元BBI

SK126150次380元Sangon

SK1262100次690元Sangon

基本说明：UNIQ-10柱含有特异性吸附DNA的膜。利用最新研发的血液处理试剂，能特异有效地将血液中白细胞的DNA释放到溶液上清中，有利于膜对血液基因组DNA的吸附。经洗涤除去非特异性结合的杂质，然后用Elution Buffer洗脱。试用于从人和动物外周血货其他途径收集的血液中抽提基因组DNA。

主要特点：1.抓们针对血液基因组DNA的抽提。

2.DNA纯度好，产率高。

3.快速、简便。