第一篇：临床微生物检验标本的采集
临床微生物检验标本的采集及微生物检验报告的解读 一 临床微生物检验标本的采集
1.临床微生物检验的思路和原则
确保标本可靠（（分析前质量）保证检验质量
全面了解机体的正常菌群 快速准确提供信息
微生物学的定性、定量和定位分析 结合病情，与临床联系
2.微生物结果的影响因素
2.1针对性的检验申请、病人准备、标本的采集、标本的运输 标本的保存和处理（46~68.2%）； 标本检验（415%）； 结果审核和批准、危急值报告（18.547%）2.2正确采集、转运与保存微生物标本直接关系到致病微生物培养的正确性与阳性率，是从临床微生物检验获得正确结果的最关键一步。
2.3Garbage-In-Garbage-Out 不合格的标本-不正确的检验结果-错误的诊断-错误的治疗-卫生资源的浪费、病人费用增加、耐药菌株增加
2.4成功治疗感染症的重要前提: 正确的微生物学检验始自标本采取。否则工作人员水平再高也不可能得到正确的结果，临床医师、护士及检验人员都必须通晓其要领
3.标本采集前临床医师及护士要考虑的问题
3.1是否感染？细菌感染？真菌感染还是病毒、寄生虫感染？ 3.2何时采集样本？
3.3采集什么样的标本？怎样采集？样本是否足量？ 3.4采用哪种无菌容器或运送培养基采集标本？
3.5如何完善的填写标本申请单？针对某些特殊致病菌的排查要求应怎样写？（申请单信息越详尽，越有助于实验室出具符合临床情况的结果报告，如疑似诊断、准确的取材部位、甚至取样时用抗菌药物。）3.6关键需要特别重视的问题：标本采集是否规范 ；标本保存、运送是否规范 ？；无菌体液培养重视与否？
4.微生物检查的样本收集原则：
4.1收集样本时应使用严格的无菌技术，将污染情形降至最低。
4.2收集真正感染的病灶处之样本，且不受到邻近区域微生物的污染。
4.3采用无菌卫材收集样本，并置于已贴有病患标签之坚固且密和性佳的容器中，将容器置于适当的储存环境待送。
4.4在病患感染的急性期、使用抗生素或伤口局部治疗前收集标本，成人应需氧瓶、厌氧瓶同时培养，以提高阳性检出率和避免漏检。
4.5样本不可添加防腐剂，以免干扰病原菌分离。
4.6于送检申请单上提供足够的有关临床资料(如姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室能够合理选择培养环境和培养基。4.7即刻将样本送检，不可拖延，标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。不能使用冷藏的样本检验。
4.8实验室只能接受和处理合格标本；对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。4.9厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
5.血液培养标本采集和处理：
5.１采血指征：
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。一般患者出现以下一种体征时可作为行血培养的重要指征：
①发热（≥38℃）或低温（≥36℃）；②寒战；③白细胞增多（计数＞10.0×109/L，特别有“核左移”时）；④皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低；⑤C反应蛋白升高及呼吸加快；⑥血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应同时做尿液和脑脊液培养。5．2皮肤消毒程序：严格执行以下三步法。5.2.1 70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
5.2.2 1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外划拳消毒，至消毒区域直径达3cm以上。5.2.3 70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。5.3培养瓶消毒程序：①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s；②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。5.4静脉穿刺和培养瓶接种程序：
5.4.1在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，不可接触穿刺点； 5.4.2用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头（如果行第二次穿刺，应换针头）直接注入血培养瓶，轻轻颠倒混匀防止血液凝固。立即送检，切勿冷藏。
5.5采血量：
成人采血量是8~10ml，儿童1~5ml。血液和肉汤之比为1:5~1:10。5.6血培养次数和采血时间：
◆根据研究，仅抽血培养1次分离率约占80%，培养2次的分离率约占90%，而培养3次的分离率约占99%。仅抽血培养1次，除了分离率低（其原因是菌血症常会暂时消失）外，且将很难评估病原菌是污染还是与感染有关。如果抽血培养2次或3次，则能够得到肯定。
◆采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，24h内应采集2~3次做血培养（一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养）。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采集2份。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5~1h采集血液，或于寒战或发热后1h进行。
5.7特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议：
◆可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2~3份血标本。
◆不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2~3份标本，24~36h后估计体温升高之前（通常在下午）再采集2份以上。
◆可疑细菌性心内膜炎，在1~2h内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标本。5.8标本运送：
采血后应该立即送检，如不能立即送检，需室温保存或置35℃~37℃孵箱中，切勿冷藏。
6尿液标本采集和处理：
6．1采样原则：标本需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药物5天之后留取尿液标本；尿液在膀胱内应停留6～8 小时以上，使细菌有足够的时间繁殖。一般以清晨第一次的中段尿为宜。6.2采集方法：
6.2.1中段尿采集法：：成年男性和女性分别用肥皂水或1：1000 高锰酸钾水溶液清洗尿道口和外阴部，再用无菌生理盐水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5～10ml 盛于带盖的无菌容器内送检。
6.2.2导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检(不可采集尿液收集袋中的尿液送检)；
6.3送检：尿液收集后，盖上容器盖子立即送检，若无法及时送检，置于4℃冰箱中保存不可超过2小时。6.4注意事项：
◆收集尿液过程中，请勿将手伸入容器内，且尿液勿满出容器外，以免污染。而以无菌导管技术
收集尿液（特别是女性患者）的方法，已被认为不适合，因易引发尿道感染。◆如果同份标本中检出3种以上不同种微生物，可能由于采样本时受到污染所致。
7.痰及下呼吸道标本采集和处理：
7.1采集要点：所采集的痰标本，必须真正能代表肺部之分泌物者，通常清晨时痰液最多，且可能含较多病原菌。7.2采集步骤如下：
7.2.1以清水或牙刷清洁口腔及牙齿，不可用牙膏。
7.2.2指导病患从呼吸道深部咳出痰（不可含有唾液），装于无菌容器内。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻扣胸骨柄上方以诱发咳痰。7.2.3气管下采集法：通常用于在给患者行纤维支气管镜时顺便抽取。7.2.4气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行。
7.2.5痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量应为3~5ml。7.2.6无法及时送检的痰标本应置于4℃冰箱中保存待送。
7.2.7呼吸道标本采集方法：鼻咽拭子法，先用清水漱口，对光坐，头向上仰，口张大，用压舌板轻压舌根，用棉拭子在病人咽后壁，悬雍垂后侧涂抹数次．立即放入无菌试管中。
7.3痰TB菌涂片采集：痰涂片检查TB菌的初诊病人应送3份痰标本（夜间痰、清晨痰和即时痰）；如无夜间痰在留清晨痰后2~3小时再留一份痰标本，或送两份即时痰；治疗中或复诊随访病人按期每次送检两份痰（清晨痰和夜间痰）。
7.4痰标本采集说明：即时痰为病人就诊时咳出的痰液；清晨痰为清晨深咳出的痰液；夜间痰为就诊前一天晚睡前咳出的痰液。痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量为3~5毫升。
8.泌尿生殖道样本：
8.1阴道、子宫及前列腺等分泌物：由医生采集，收集于无菌试管内送检。淋病奈瑟菌检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免阴道分泌物污染拭子。
8.2未成年人：若怀疑年幼女童有淋病性阴道炎时，则标本由阴道外围部位取得。
8.3男性：男性怀疑有急性淋病时，则由尿道取分泌物样本作抹片及培养，若怀疑有慢性淋病，样本可由医生采自前列腺或精囊。
8.4注意：从冰箱取出之携送培养基，须先放至室温约半小时，使其恢复室温，因淋病双球菌对温度相当敏感。
9.脑脊液样本：
9.1采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好是在应用抗生素之前采集脑脊液。9.2采集方法：腰穿法收取脑脊液3~5ml，盛于无菌试管中，应立即送检，同时注意保温，不可置于冰箱保存。
10.粪便与直肠拭子样本采集和处理：
10．1采集时间：
10.1.1腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便； 10．1.2伤寒患者于发病2w以后采集粪便； 10．1.3怀疑霍乱时立即采集粪便送检。10．2采集方法：
10．2.1自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检；若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(pH8.6)。10．2.2直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。
11眼、耳、鼻、咽拭子培养标本：
11.1采集眼分泌物：先用无菌生理盐水冲洗眼部,然后用棉拭于拭干，再用无菌棉拭于采集分泌物。
11．2采集咽分泌物：先用清水撤口．用压舌板将舌向下向外压，将咽拭子在咽后壁或悬雍垂后侧涂抹数次，切勿接触口腔和舌粘膜。
11．3采集耳、鼻或鼻咽分泌物：直接用拭子涂抹病灶部位,切勿接触周围粘膜或皮肤。11．4送检：标本采集过程中应注意避免粘膜上的正常菌群污染,标本采集后标明左、右眼（耳）或鼻咽部，连同拭子一起置无菌管内送检。
12.穿刺液样本：
12．1穿刺液培养标本：包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。
12．2采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2～3d采集标本。
12．3采集方法：
12.3１无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；
12．3.2标本采集量应>1ml(结核分支杆菌培养时应为l～5m1)； 12.3.3标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中立即送检；
12.3.4可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固(0.5ml 肝素可抗凝5ml标本)。穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液。
13.脓汁及创伤感染分泌物标本的采集：
13．1采集要点：对采集标本部位应首先清除污垢，再以碘酒或酒精消毒，防止皮肤表面污染菌混入影响检验结果，盛放标本器皿应无菌。
13．2封闭性脓肿患者病灶局部的皮肤或粘膜表面：先用碘酒消毒，再用75%酒精脱碘，以无菌干燥注射器穿刺抽取，将采集的脓汁注入无菌试管中。
13．3开放性脓肿和脓汁分泌物：在患部附近的皮肤或粘膜用无菌纱布或棉布擦拭，供培养用的标本尽可能从深部流出，如为瘘管可在无菌操作下取组织碎片。
13．4大面积烧伤的创面分泌物：由于创面的部位不同，细菌种类也不同，故应用无菌棉拭子采取多创面的脓汁或分泌物，置于无菌试管送检。注意事项：烧伤12 小时内的创面及分泌物中细菌检出率较低。
14真菌感染培养标本采集：
14．1浅部真菌感染标本采集：
14.1.1皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检，皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；
14.1.2指(趾)甲：消毒指(趾)指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6 片置无菌容器内送检；
14.1.3毛发：采集根部断折处，至少5～6 根送检。14.2深部真菌感染标本采集：
14.2.1血液：无菌采血8～10 m1，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检，如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8~9h；
14.2.2脑脊液：采样量不少于3～5m1,分别注入两支无菌试管中送检(一管做真菌培养和墨汁染色一管测隐球菌抗原和其他培养)；
14．2.4呼吸道及泌尿生殖道：其深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
15厌氧菌感染培养标本的采集：
15.1标本采集：
15.1.1标本不能被正常菌群污染,采集时尽量避免接触空气,立即送检,严格遵守无菌操作;15.1.2血液及其他体液(胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液等)注入厌氧血培养,立即送检;15.1.3深部脓肿,在病灶部位开放前取材,可用针管抽取,针头用无菌胶塞密封,也可用血气采集针抽取,立即送检;
15.1.4抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。15.2标本运送：
152.1注意事项：标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送实验室;15.2.2运送方法:a 注射器运送(标本抽取后尽快排除空气)或接种道专门的运送培养基中直接运送;b 含运送培养基的无氧小瓶运送;c 厌氧罐运送(组织块);d 大量液体标本运送时要装满标本瓶兵立即驱氧,加盖运送;e 一般不采用棉拭子法
二 微生物检验报告的解读
1细菌室药敏试验中常选用的抗生素种类
氨基糖甙类：阿米卡星、庆大霉素 1代头孢：头孢唑啉 2代头孢：头孢呋辛钠
3代头孢：头孢他啶、头孢噻肟、头孢吡肟（马斯平）单环 β-内酰胺类：氨曲南
广谱青霉素类：氨苄西林、青霉素G、苯唑西林 抗假单胞菌广谱青霉素：哌拉西林
复方β-内酰胺类：阿莫西林-克拉维酸（奥格门丁）氨苄西林-舒巴坦（优力新）哌拉西林-他唑巴坦（特治星）头孢哌酮-舒巴坦（舒普深）碳青霉烯类：亚胺培南、美罗培南 多肽类：多粘菌素E、替考拉宁 万古霉素 磺胺类：复方新诺明（甲氧苄唑-磺胺甲唑）林可霉素类：克林霉素 大环内脂类：红霉素 氯霉素：氯霉素
三代喹诺酮：环丙沙星、氧氟沙星 左旋氧氟沙星、莫西沙星 四环素类：四环素 利福平
2.耐甲氧西林葡萄球菌（MRS），CLS I规定，葡萄球菌如对苯唑西林（或甲氧西林）耐药：对青霉素类、头孢菌素类、碳青霉烯类和含酶抑制剂的复方制剂均应报告耐药，而不考虑体外药敏结果。
3.耐高浓度庆大霉素肠球菌
CLS I规定，肠球菌引起的全身性严重感染 常联合应用 β-内酰胺类和氨基糖肽类抗生素，如果肠球菌对高浓度庆大霉素耐药，则联合用药无效
三 与临床沟通中常见的问题
• 为什么微生物的报告时间这么慢？ • 为什么培养回报有细菌而病人情况良 ？ • 为什么送检的是脓痰却没有阳性结果 ？ • 培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗？ • 选择药敏报告敏感的药物，为什么临床治病无效？
1.为什么微生物的报告时间这么慢
微生物的工作流程
细菌培养：接种标本，培养24~48小时
分离标本： 24~48 小时（需要时）
药敏： 18~24 小时 发结果： 阴性48小时
阳性？
真菌培养:因为生长缓慢，时间更长
2.涂片镜检结果与培养结果不吻合？
涂片镜检是报告所有检见的细菌，而培养的目的是检出致病菌。一些苛氧菌需在特殊的环境或培养基上才能生长。
3.尿培养结果报告“三种以上细菌混合生长”代表什么？
泌尿系统感染一般为一种细菌，有时可能有二种，但培养出三种或以上细菌说明标本污染，需要重新留取标本再做培养。
4.为什么培养回报有细菌而病人情况良好？
抗菌药物使用 或定植菌或污染菌
5.为什么送检的是脓痰却没有阳性结果？
5.1 是否送检前使用抗生素
5.2送检是否及时，痰涂片可能帮助判断 5.3 并不是感染性疾病，比如慢怚肺、老慢支 等 5.4实验室操作不规范
6.为什么化脓性感染病灶中取脓汁培养阳性低
脓液是由坏死的组织和吞噬了细菌而死亡的白细胞组成，都是无任何营养的物质，而细菌一般都需要在高营养的环境中才能生长，另白细胞释放的溶菌酶对细菌有杀灭作用，因此，在脓液活细菌较少。将脓液挤干净后在肉芽生长处取标本送检，如果化脓性病灶尚未破溃，要用注射器穿刺到一定深度（肉芽附近处）取标本送检。
7.明显稀便，培养结果为何正常 ？
大便普通培养，通常只能鉴定志贺菌、沙门菌感染，致病性大肠杆菌。怀疑霍乱时，需开霍乱弧菌培养。可能病毒感染(轮状病毒 轮状病毒)8培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗？
8.1.培养阳性感染：可能为污染菌（血培养），可能为定植菌（痰），），任何结果必须结合临床情况进行评价－很重要
8.2.感染部位的清创，引流，换药比使用抗菌药物更重要
8.3.改善患者全身情况，器官功能支持，纠正酸碱电解质紊乱，低蛋白血症，高血糖等
9选择药敏报告敏感的药物为什么治疗无效？
9.1体外药敏试验只能预测体内治疗效果，并不完全等同 9.2.可能不是真正的致病菌（污染或定植）9.3.细菌本身因素（如诱导耐药，生物被膜）
CLSI中提示：部分细菌3天内即可发展为耐药，临床治病34天后，应重新分离细菌做药敏试验
9.5感染部位与药代动力学因素 给药剂量与用药方式 ：时间依赖性、浓度依赖性、抗生素后效应、特殊人群等因素。
9.6.感染原发灶 药敏试验仅报告细菌对药物的敏感性，但不同部位的感染，因根据药物浓度分布选择抗菌药物，药物剂型和生物利用度（纯品，商品）
10.是否能将所有的药都做药敏试验
10.1没有必要：通过耐药机制和标志性药物可以预测其他抗菌药物的敏感性，抗生素的等效性：是指用一种相关抗生素的试验结果预测同类抗生素体内抗菌活性。此特性允许检测少数几种抗生素而不影响临床对其他抗生素的广泛选择，试验的药物代表一类 药，而不是一种药。
如对肠杆菌头孢噻吩与其他一代头孢具有等效性，可用头孢噻吩结果预测其他一代头孢。10.2.没有可能：不是所用药物都可以做药敏试验（需要药物在体外稳定，需要有操作标 准和解释标准）有些细菌对某类抗生素天然耐药，则不需要做药敏试验 比如：嗜麦芽窄食单胞菌对碳青霉烯类天然耐药，治疗首选复方新诺明。
11.鉴定结果明明写着四联球菌、革兰氏阳性杆菌，为何没有药敏结果？
四联球菌为微球菌，一般不引起人体致病，为非致病菌，故考虑污染可能。药敏结果参照CLSI标准，目前革兰氏阳性菌没有参照标准，故暂不能做药敏试验，若需治疗可参照阳性球菌用药。
12.药敏试验报告中MIC越小的抗菌药物效果越好？
感染菌对同一种药物的MIC越小，效果越好，不同种抗菌药物之间 MIC无可比性，目前很多仪器报告的是检测折点，而不是真正的MIC 四 对临床的要求
临床医生应为实验室提供有用的临床信息，以便实验室有针对性地对可能的病原体进行鉴定。临床医生对药敏测定方法和微生物学知识有一定的了解，以更好地理解药敏试验报告中验报告中 S、I、R临床意义，以及体内、体外药敏不一致的现象。增强特殊标本的微生物送检的意识，提高诊断的阳性率。
五 呼 吁
1.请尽量在早上送检标本 2.请正确留取痰标本
3.请正确填写标本部位及名称
4.血培养－感染性疾病的病原学诊断有效手段 5.个别特殊病历多沟通，6.反馈抗生素疗效（药敏结果与临床疗效不符时）7.科研合作
第二篇：临床检验标本采集规范
临床检验标本采集规范
一
血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。
.2 注意事项：
A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。
B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。
二
红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：
A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。
三
凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：
A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。
C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。
四
血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。
.2 注意事项：
A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。
五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：
A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。
B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。
六
尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。
七
尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。
A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。
C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。
八
粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。
3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。
九
浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。
十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。
十一
临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。
十二
微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集
A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。
D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。
② 标本运送
A 标本采集后尽快送微生物室。
B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收
A 实验室只能接受和处理合格标本。
B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理
① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：
A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水
冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。
C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。
② 粪便标本采集和处理
A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。
B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理
A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。
B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。
C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本
A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。
C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。
D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本
A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本
A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。
D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养
A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养
A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。
B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本
A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。
B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。
C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。
D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。
E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾
烧伤感染培养标本
烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。
⑿
真菌感染培养标本
A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：
血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。
脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。
呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀
厌氧菌感染培养标本
A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。
B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送检；标本运送可采用注射器（已驱氧）或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。
第三篇：临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
目录
第一章 体液标本的采集、运输、保存操作规程
一、尿液标本采集、运输、保存
二、脑脊液标本采集、运输、保存
三、浆膜腔积液标本采集、运输、保存
四、阴道分泌物标本采集、运输
五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本采集、运输
六、精液标本采集、运输、保存
七、前列腺液标本采集、运输、保存
八、粪便采集、运输、保存
第二章
血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程
一、未梢血标本采集
二、静脉血采集、运输、保存
第三章
生化检验标本采集、运输、保存操作规程 第四章
免疫学检验标本采集、运输、保存操作规程
第五章
化学发光免疫分析项目标本采集、运输、保存操作规程 第六章
血气分析标本采集、运输、保存操作规程
第七章
凝血功能四项检测标本采集、运输、保存操作规程 第八章
微量元素检测标本采集、运输、保存操作规程 第九章
临床微生物学检验标本采集、运输、保存操作规程
第一节 尿液标本的采集、运输和保存
第二节 粪便标本的采集、运输和保存
第三节 上呼吸道标本的采集、运输和保存
第四节 痰标本的采集、运输和保存
第五节 化脓和创伤标本的采集、运输和保存
第六节 脑脊液标本的采集、运输和保存
第七节 胆汁标本的采集、运输和保存
第八节 胸水标本的采集、运输和保存
第九节 腹水标本的采集、运输和保存
第十节 生殖道标本的采集、运输和保存
第十一节 血液及骨髓标本的采集、运输和保存 第十章
液基薄层细胞学检查标本采集、运输、保存操作规程
前
言
在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。
第一章 体液标本的采集、运输、保存操作规程
一、尿液标本采集、运输、保存
（一）检查项目
1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。
2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。3．24小时尿总蛋白、尿肌酐、尿尿酸等。
4．其它：尿HCG、微量白蛋白、转铁蛋白、免疫球蛋白IgG、α1-微球蛋白、尿淀粉酶、尿蛋白酶原-
2、尿液红细胞显微镜形态分析。
（二）标本采集 【容器及采样量】
门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。
住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。
24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。【标本种类及适用人群或项目】（1）晨尿
即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。
门诊患者可采集清晨第二次尿标本。
适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。（2）随机尿（随意一次尿）
即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。
适用：门诊和急诊病人。（3）24h尿
于第当天8∶00 排空膀胱弃去此次尿液，然后收集至次日8∶00 全部尿液。在第一次尿液排到收集容器后，将10ml二甲苯防腐剂倒入容器中并摇匀。每升尿中加入10ml二甲苯。以后每次排尿到收集容器后均要摇匀尿液，并盖好盖，以防尿液蒸发。
尿液收集完毕，混匀，用量筒准确测量尿液毫升数，并记录在检验申请单上。用注射器针穿过防腐剂层抽取尿液10毫升，注入干净试管送检。
适用：24小时尿总蛋白、尿肌酐、尿尿酸及其它尿液化学成份定量检测。（4）其他
包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。【注意事项】
（1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查；
（2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入；
（3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
（4）尿标本采集后应避免强光照射，以免尿胆原等物质因光照分解或氧化而减少。
（三）标本运输及保存
标本采集后应尽快送检，1时内须送达检验科，2小时内完成检测。采集24小时尿液可不用防腐剂防腐，放4℃冰箱保存即可。
（四）拒收标准
细菌污染、样本量不足的标本拒收。
二、脑脊液标本采集、运输、保存
（一）检查项目
脑脊液常规、细菌培养、生化检查等。
（二）标本采集
脑脊液标本由医生采集。脑脊液采集一般用腰椎穿刺术（腰穿）获得，必要时用小脑延髓池穿刺术（池穿）或侧脑室穿刺术。
脑脊液应采集三管。第一管用于细菌培养（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。每管1-2毫升。蛋白浓度高时可用EDTA盐抗凝。样品管上应标明病人姓名，在检验申请单上注明采样时间。
（三）标本的运输及保存
脑脊液标本采集后应立即送检。用于微生物检验的标本应室温保存，不可置冰箱保存。
三、浆膜腔积液标本采集、运输、保存
（一）检查项目
浆膜腔积液常规、细胞学、细菌培养等检查。
（二）标本采集
由医生采集。经行胸腔穿刺术、腹腔穿刺术，心包腔及关节穿刺术采集标本。应采集三管，第一管用于细菌培养（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。每管2-20毫升。样品管上应标明病人姓名，在检验申请单上注明采样时间。
（三）标本的运送及保存
标本采集后立即送检。不能及时检测的标本放置4℃冰箱保存。用于微生物检验的标本应室温保存，不可置冰箱保存。
四、阴道分泌物标本采集、运输
（一）检查项目
阴道分泌物清洁度、真菌、滴虫、细菌性阴道炎检查等。
（二）标本采集
由临床医生采样。用无菌拭子从阴道后穹隆处取分泌物。所用窥阴器不可用润滑剂，只能用少量无菌等渗盐水润湿。采样后马上将样本放入洁净试管送检。
（三）标本的运输及保存
取样后应立刻送检。避免因放置时间太久影响滴虫活动力或虫体破坏，使检查结果受到影响。
五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本采集、运输
（一）检查项目
分泌物找革兰阴性双球菌
（二）标本采集
1、尿道分泌物
①男性：清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，采取从尿道口溢出的脓性分泌物，如无脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按摩，促使分泌物溢出，或用无菌男性拭子插入尿道内2～4厘米旋转取出分泌物。拭子置于干净试管内送检。
②女性：清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，然后从阴道内诊压迫尿道，或从尿道的后面向前按摩，使分泌物溢出，用无菌女性拭子采集分泌物。无肉眼
可见脓液时，可用灭菌拭子轻轻深入前尿道内，旋转拭子采集标本。拭子置于干净试管内送检。
2、阴道分泌物：用窥器扩张阴道，用无菌女性拭子采取阴道口内4厘米内侧壁或后穹隆处分泌物送检。拭子置于干净试管内送检。
3、宫颈分泌物：用窥器扩张阴道，先用无菌棉球擦去宫颈口分泌物，再用女性拭子插入宫颈管2厘米采取分泌物，转动并停留10～20秒钟，让拭子充分吸附分泌物，拭子置于干净试管内送检。
4、前列腺按摩液：用前列腺按摩法采集前列腺液。前列腺液滴于玻片上或试管内，立即送检。
5、精液：受检者应5天以上未排精。清洗尿道口，采用手淫法体外排精，射精于干净容器内送检。
6、溃疡分泌物：先用生理盐水清洗患处，用无菌棉拭子取其边缘或其基底部的分泌物，置干净试管内送检。
（三）标本的运输
采样后应及时送检，避免标本干结。
六、精液标本采集、运输、保存
（一）检查项目
精液常规检查，包括精液量、液化时间、酸碱度、精子总数、精子活动力、精子存活率、精子畸形率。
（二）标本采集 【采集前注意事项】
采集精液标本前必须禁欲。一般情况下，25 岁以下禁欲 3 天，25～35 岁禁欲 5 天，35～45 岁禁欲 7 天（禁欲亦包括无遗精手淫）。【容器及采样量】
收集精液标本的容器要求是清洁、干燥。可用一次性带盖塑料杯留取精液。收集排出的全部精液。【标本采集及注意事项】
精液标本一般由患者通过手淫法留取。将一次射出的全部精液直接排入清洁塑料杯内。不能用乳胶避孕套采集，因避孕套内含有的滑石粉会影响精子活力。
准确记录采集时间，并写在申请单的空白处。
（三）标本的运输及保存
精液标本留取后应立即送检。在运送过程中，标本温度应保持在 25～35℃。冬天运送标本时，最好将标本放在内衣口袋内保温，注意防止瓶子倒置。
（四）拒收标准
精液收集不全、被尿液污染、有溢漏、超过 2 小时送达的标本。
七、前列腺液标本采集、运输、保存
（一）检查项目
前列腺液常规检查。
（二）标本采集
由临床医生采用前列腺按摩术采集前列腺液于清洁玻片上或容器内。
（三）标本的运输及保存
要求立即送检，室温运输，不宜久置。
（四）拒收标准
久置干结的标本。
八、粪便采集、运输、保存
（一）检查项目
大便常规、大便潜血试验、大便找寄生虫、人类轮状病毒抗原检查。
（二）标本采集 【采集前注意事项】
医生应向患者讲清楚收集粪便标本前应禁止服用的食物和药物，化学法检测潜血禁止服铁剂，素食三天后留取标本。【标本容器及取样量】
容器：一次性带盖塑料便盒，标明患者姓名。采样量：取少量标本（指头大小）。【采集方法】
自然排便。选取有粘液、脓血等病变成分的粪便；外观无异常及粪便潜血检测标本须从表面、深处、粪端多处取材。
检查阿米巴滋养体时，应于排便后立即从脓血性或稀软部分取样，立即送检。检查蛲虫卵需用拭子于晚上12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处取样，并立即送检。
注意避免尿液污染。住院病人标本盒上标明患者姓名，门诊病人标本与申请单一起放于标本收集盘内。
（三）标本的运输及保存
标本采集后要盖紧，室温下及时送检，1小时内完成检测。
（四）拒收标准
标本量不足、含有尿液的或送检时间超过1小时的标本拒收。
第二章
血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程
一、未梢血标本采集
（一）检查项目及适用人群：适用于门诊病人做血常规、C-反应蛋白、ABO和Rh血型、疟原虫检测等项目。
（二）操作步骤：
1.血常规：一般选择无名指，先用酒精棉球消毒，然后用一次性采血针穿刺，让血液自然流出，用消毒棉球轻拭去第一滴血后，将血液收集在0.5毫升离心管(EDTA-K2抗凝管)内，约0.2-0.4毫升，混匀，马上上机检测。
婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。烧伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。采血部位应无炎症或水肿。末梢采血不可用力挤压。
2.C-反应蛋白：采集20微升指血放入专用的含定量稀释液的反应杯中。
3.ABO或Rh血型：采用玻片法检测。用未梢血涂片做血型鉴定。4.疟原虫检查：最好在寒战初期采血。用未梢血制成厚、薄涂片。
二、静脉血采集、运输、保存
（一）检验项目
血常规：标本用于上血细胞分析仪检测，项目包括白细胞计数及五分类、红细胞计数、血红蛋白、红细胞压积、红细胞体积分布宽度、平均红细胞血红蛋白含量、平均红细胞血红蛋白浓度、平均红细胞体积、血小板计数、血小板体积分布宽度、血小板压积、网织红细胞计数与分类等。
交叉配血试验；ABO或Rh血型；红细胞沉降率（ESR）；血液粘度检查；NT-proBNP。
（二）标本采集
1．血常规、ABO或Rh血型、交叉配血试验、NT-proBNP：用含 EDTA-K2 抗凝剂的真空采血管采集2毫升静脉血，颠倒5-6次混匀；
2．红细胞沉降率（ESR）：用含枸橼酸盐抗凝剂的专用ESR真空采血管采集静脉血至两条采血量标识线之间，颠倒5-6次混匀.3.血液粘度检查: 一般宜清晨空腹安静状态下采血。血液粘度测定需同时抽取静脉血常规管、血沉管和肝素抗凝血（5ml）三份样本，颠倒5-6次混匀.4.静脉血标本唯一标识：住院病人为“采血管上标明病人姓名+检验申请单右上方贴上采血管条码” ；门诊病人为“采血管上标明序号+在检验申请单右上方写上相同序号和贴上采血管条码”。
5.在检验申请单上写上采血时间.(三)标本运输及保存
静脉血液标本采集后应在2小时内送达检验科，4h内完成检测。室温下保存，不能及时检测的标本置4℃冰箱保存.(四)标本拒收标准
凡不按血量：抗凝剂比例抽血、从输液管抽血、明显脂血标本、明显溶血标本、有凝块、标识不清、抗凝剂不对及血量不足的标本一律拒收。
第三章
生化检验标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
肝功能检查：总蛋白（TP）、白蛋白（ALB）、丙氨酸氨基转氨酶（ALT）、天门冬氨酸氨基转移酶（AST）、碱性磷酸酶（ALP）、γ-谷氨酰转肽酶（GGT）、总胆红素（TBIL）、直接胆红素（DBIL）、总胆汁酸(TBA)；
肾功能检查：尿素(UREA)、肌酐(CREA)、尿酸（UA）、β2-微球蛋白（β2-MG）、胱抑素C（Cys-C）；
心肌酶谱：乳酸脱氢酶（LDH）、肌酸激酶(CK)、肌酸激酶同工酶MB(CK-MB)、a-羟丁酸脱氢酶(HBDH)；
血脂检查：总胆固醇（TC）、甘油三脂（TG）、高密度脂蛋白胆固醇（HDL-C）、低密度脂蛋白胆固醇（LDL-C）、载脂蛋白A1（APO-A1）、载脂蛋白B（APO-B）
糖尿病相关检测项目：葡萄糖（GLU）、糖化血红蛋白（HbA1c）、糖耐量试验；
电解质检测：钾（K）、钠（Na）、氯（Cl）、钙（Ca）、无机磷（Pi）、铁（Fe）；
心肌早期损伤三项：cTnI/Myo/CK-MB定性或定量（化学发光法）检测； 其它：淀粉酶、总铁结合力。
二、标本采集及注意事项
1．要求空腹 8-12小时后采静脉血，以早晨空腹为佳。应避免跑步、骑自行车、爬楼等剧烈运动。过度精神刺激和剧烈运动可使肌酸激酶(CK)、乳酸脱氢酶(LDH)、天门冬氨酸氨基转移酶(AST)等不同程度升高。2．急诊病人查急诊项目可随机采血。
3．血脂检查要求抽血前3天保持正常饮食。采血前一天的晚餐应避免饮酒、高脂肪和高蛋白饮食。餐后采血容易出现“ 饮食性脂血”。饮酒可使TG、TC和HDL-C增高。
4．患者应取坐位或卧位静脉采血，止血带结扎时间应少于 1 分钟。禁止在输液管处或输液肢体同侧采血。
5．采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
6．用含促凝剂的干燥管（生化管）或分离胶-促凝剂采血管采集静脉血标本（血糖和糖化血红蛋白标本除外），采血量4-5ml。
7.糖化血红蛋白（HbA1c）测定：不要求空腹，随机采血。用EDTA-K2抗凝管采集静脉血标本，采血量2毫升。采血后立即轻轻颠倒5-6次，使血液与抗凝剂充分混匀。
8．血糖测定：用含氟化物抗凝剂真空采血管采血2ml，颠倒5-6次混匀。9.糖耐量试验（OGTT）
（1）试验前每天碳水化合物摄入量不少于150g，有正常的体力活动至少3天。
（2）过夜空腹10－14小时。
（3）试验前禁用酒、咖啡、茶，保持情绪稳定。
（4）用含氟化物抗凝剂真空采血管采血2ml，颠倒5-6次混匀。
（5）上午8：30以前抽空腹血，然后饮用含75克葡萄糖的水250-300毫升,5分钟内饮完.（若空腹血糖＞15.0mmol/L或1型糖尿病，有酮症倾向者以100克面粉馒头替代，10-15分钟内吃完）。
（6）分别于饮糖水或吃完馒头后0.5小时、1小时、2小时、3小时各抽血一次，测定血糖值。
10．静脉血标本唯一标识：住院病人为“采血管上标明病人姓名+检验申请单右上方贴上采血管条码”，门诊病人为“采血管上标明阿拉伯数字序号+在检验申请单右上方写上相同序号和贴上采血管条码”。
11．在检验申请单上写上采血时间。
三、标本的运输及保存
要求标本采集后及时送检。如标本不能及时检测，应放置 4℃冰箱保存。血糖管2-8℃冰箱保存可稳定48小时，其余项目可稳定3-7天。检测胆红素的标本应避光保存。
血清钾（K）/钠（Na）/氯（Cl）检测应在标本采集后1小时内送达检验科，2小时内完成检测。如不能及时检测，应离心分离血清后放置 4℃冰箱保存，可稳定24小时。
四、标本拒收
拒收明显溶血、乳糜血、血量不足、标识不清的标本。溶血标本不能用于检测钾、钠、氯。
第四章
免疫学检验标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
免疫蛋白检查：补体（C3）、补体（C4）、免疫球蛋白 A（IgA）、免疫球蛋白G（IgG）、免疫球蛋白M（IgM）。
风湿三项：抗“0”溶血素（ASO）、类风湿因子（RF）、C-反应蛋白（CRP）；
肝炎系列：甲型肝炎病毒IgM（HAV-IgM）、乙肝5项（HBsAg、HBsAb、HBeAg、HBeAb、HBcAb），丙型肝炎抗体（Anti-HCV），戊型肝炎抗体（Anti-HEV）；
优生优育五项（ToRCH）：弓形虫IgM、疯疹病毒IgM、巨细胞病毒IgM、单纯疱疹病毒1型IgM、单纯疱疹病毒2型IgM。
其它：梅毒螺旋体抗体检查（TRUST、TRUST滴度、TPPA）；人类免疫缺陷病毒抗体（Anti-HIV）；肺炎支原体抗体IgM；肥达氏试验和外斐氏试验。
二、标本采集及注意事项
1.患者不需特殊准备。用含促凝剂的干燥真空采血管采集静脉血，采血量 4-5ml。
2.静脉血标本唯一标识：住院病人为“采血管上标明病人姓名+检验申请单右上方贴上采血管条码”，门诊病人为“采血管上标明阿拉伯数字序号+在检验申请单右上方写上相同序号和贴上采血管条码”。
3.在检验申请单上写上采血时间
三、标本的运输及保存
要求标本采集后及时送检，如标本不能及时检测，可放置 4℃冰箱保存，稳定 7天。
四、标本拒收
明显溶血、标本量不足、标识不清的标本。
第五章 化学发光免疫分析项目标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
肿瘤筛查项目：甲胎蛋白（AFP）、癌胚抗原（CEA）、糖类蛋白抗原125（CA125）、人绒毛膜促性腺激素β亚单位（β-HCG）；
性激素六项：雌二醇（E2）、促黄体生成激素（LH）、促卵泡生成激素（FSH）、孕酮（P）、泌乳素（PRL）、睾酮（Testo）；
甲功五项：T3、T4、TSH、FT3、FT4；
贫血三项检验：维生素B12（VitB12）、铁蛋白（sFe）、叶酸（FA）； 糖尿病相关项目检验：胰岛素、C-肽； 骨疾病相关项目检验：甲状旁腺素（PTH）； 心梗三项：cTnI、Myo、CK-MB。
二、标本采集
1.静脉血标本采集前应避免运动。要求患者静坐休息15min 后再采血。用含促凝剂的干燥真空采血管采血，采血量4-5ml。
2.激素标本采集时机由开单医生根据临床需要决定，并由开单医生告知患者。
3．静脉血标本唯一标识：住院病人为“采血管上标明病人姓名+检验申请单右上方贴上采血管条码”，门诊病人为“采血管上标明阿拉伯数字序号+在检验申请单右上方写上相同序号和贴上采血管条码”。4．在检验申请单上写上采血时间
三、标本的运输及保存
要求标本采集后及时送检，如标本当天不能检测，可放置 4℃冰箱保存，留待第二天检测。如果24小时内无法进行检测，可离心后分离血清置－20℃冰箱保存，可稳定7天。
四、标本拒收
明显溶血、标识不清、标本量不足的标本。
第六章
血气分析标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
血气分析。
二、标本采集
【采集前注意事项】
1.受试者应保持情绪稳定。
2.如正在输氧，应在检验申请单上记录当时的氧流量。3.在检验申请单上记录病人当时的体温。【标本采集器材】
使用专用的干式肝素化血气分析采样器。【采集方法】
1．采集动脉血，量约1.0毫升。桡动脉最理想，其次为股动脉。采集时动脉血应随着动脉搏动顺利地流入针筒，否则可能将气泡带入采样器中，导致结果不准。
2．注意隔绝空气。采血后应即封闭针头。如针筒内有气泡，应将气泡排出后再封闭针头。
3．采样后应水平和垂直旋转混匀约1分钟，以免血液凝固。
三、标本的运输及保存
1、血气标本采集后必须密封隔离空气，10分钟内送达检验科。
2、如出现仪器故障等情况，导致标本不能在15min 内完成检测时，必须将标本置于0～4℃冰箱中保存，但保存时间不得超过60 分钟，因为标本放置30 分钟后PO2下降2%，60 分钟后约下降8%，pH 值也同时下降，PCO2 上升，白细胞高的标本（白血病）改变更明显。
四、标本拒收
标本没有隔离空气、有凝块、溶血、有气泡、标本量不足等拒收。
第七章 凝血功能四项检测标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
凝血酶原时间（PT）、活化部分凝血活酶时间(APTT)、纤维蛋白原含量（FIB）、凝血酶时间（TT）。
二、标本采集及注意事项
1.用专用的含枸橼酸钠的真空采血管（内含0.2 ml抗凝剂）采集静脉血，枸橼酸钠是通过与血中钙离子螯合而起抗凝作用。
2.标本量=1.8ml静脉血+0.2 ml抗凝剂，要求标本量尽量控制在1.8－2.2 ml范围内。
3.采血后立即颠倒混匀5－6 次，避免用力振摇.4.止血带的压力要小；结扎时间要<1分钟；采血要尽量一针见血；不能在淤血部位采血；不要从输液管处采血；不要拍打采血部位；避免产生凝血、溶血、气泡和组织液污染；不要让患者反复做握拳动作。
5.在检验申请单上记录采样时间。
三、标本运送及保存
标本采集后应尽快送检验科。要求1小时内送达检验科，2小时内完成检测。如不能及时送检，标本存贮的条件和稳定时间为 ：2－8℃，＜4小时。标本放置时间过长，检测结果会受影响。
四、标本拒收标准
凡不按血量与抗凝剂比例采血、从输液管抽血、脂血标本、溶血标本、有凝块、抗凝剂不对、血量不足、标识不清、采样后至标本送达检验科时间超过2小时的一律拒收。
第八章
微量元素检测标本采集、运输、保存操作规程
一、检查项目
血铅、镉、铜、锌、镁、钙、铁、钠、钾。
二、标本采集前注意事项
1.病人准备：原则上要求早上空腹采血。
2.采血人员应经专门培训，知晓微量元素标本极易受到污染及技术操作要求。为保证检测结果准确，采血人员在采血过程中应按以下要求操作。
2.1采血时不要戴乳胶手套(对锌有污染)，可使用塑料手套，或不戴手套把手清洗干净。
2.2采血时彻底清洁穿刺部位的皮肤，用酒精清洁取血区皮肤。
2.3 保证采血场所的清洁，不要在采血室使用风扇降温。
2.4 用肝素抗凝管采集2－3ml静脉血，轻轻颠倒5-6次混匀，采血后不要开盖。
2.5 送检时将采血管口封严，以防渗漏。如不能及时送检，置于2-8℃冰箱保存。
三、标本采集
1．严格按照操作规程要求用碘酒、酒精清洁取血部位后采集静脉血，或用酒精清洁手指取血部位后采集未梢血；
2．成人用含肝素抗凝剂的采血管采集静脉血2-3毫升，立即颠倒5-6次混匀；婴幼儿采集未梢血40微升，立即加入到专用的标本稀释液，混匀。
3．标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上贴上采血管条码，注明标本采集时间等。
四、标本运输及保存
采集标本后应及时送达检验科。不能及时送检的标本应置4℃冰箱保存，可保存7天。
第九章
临床微生物学检验标本采集、运输和保存操作规程
第一节 尿液标本的采集、运输和保存
一、检查项目
尿液细菌培养、真菌培养、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集
【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集标本。【采集容器】
无菌试管或无菌尿液标本留取容器。【标本采集】
1、一般采集晨起第一次尿液送检。
2、留取清洁中段尿标本：嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围，开始排尿，将前段尿排去，接取中段尿约 10-20ml 于无菌容器中，立即送检.收到标本后1小时内接种。该方法简单、易行，是最常用的尿培养标
本收集方法，但很容易受到会阴部细菌污染，应由医护人员采集或在医护人员指导下由患者正确留取。
3、耻骨上膀胱穿刺：使用无菌注射器直接从耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但有一定的痛苦，病人难以接受。主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。
4、直接导尿：按常规方法对会阴部进行清洗消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱，获取膀胱尿液。可减少尿液标本的污染，准确地反映膀胱感染情况。但有可能将下尿道的细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。
5、留置导尿管收集尿液：利用留置导尿管采集标本时，应先消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液，操作时应防止混入消毒剂，不能从收集袋中采集尿液。长期留置导尿管患者，应在更换新尿管时留取尿标本。6．标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本的运输及保存
标本采集后应立即送检。标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、拒收标准
1没有用指定容器保存的标本。标本量不够或者违反标本采集、运输及保存注意事项的标本。
第二节 粪便标本的采集、运输和保存
一、检验项目
霍乱弧菌培养、沙门氏菌和志贺氏菌培养和鉴定、真菌培养及鉴定。
二、标本采集 【采集前注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。做好并保持肛门部位清洁。【采集容器】
一次性无菌便盒，或无菌试管。【标本采集】 采集时间：应在急性期采样，以提高检出率。自然排便采集法：自然排便后，挑取有粘液脓血部位的粪便，标本量约花生米粒大小，液状粪便取絮状物盛于无菌的容器内（约1-2ml）,或置于保存液或增菌液中送检。直肠拭子法：如不易获得粪便时或排便困难的患者及幼儿，可采用直肠拭子方法采集，取出后置于灭菌容器内送检。
4．标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本的运输及保存
应立即送检。标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、拒收标准 没有用指定容器保存的标本。违反标本采集、运输及保存注意事项的标本。
第三节 上呼吸道标本的采集、运输和保存
一、检验项目
上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【采样材料】
咽拭子或鼻咽拭子。【标本采集及注意事项】
1.采集时间：时间上无严格限制，但咽部是呼吸和食物的通路，晨起后采集为佳。.标本采集：嘱患者用清水反复漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，拭子要避免接触口腔和舌粘膜。.标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本的运输及保存
应立即送检。标本运送过程中必须保证其安全，避免细菌污染。
四、拒收标准 没有用指定容器保存的标本。违反标本采集、运输及保存注意事项的标本。
第四节 痰标本的采集、运输和保存
一、检查项目
痰液的细菌培养、真菌培养、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【采集容器】
一次性无菌留痰盒。【采集方法及注意事项】
1、以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易于采集。且清晨痰含有的病理成分较多，可增加培养的阳性率。
2、采集方法：
(1)自然咳痰法：咳痰前，先用清水或漱口液反复漱口（为减少口腔正常菌群污染标本），然后用力自气管中咳出第一口痰于无菌容器内（来自于下呼吸道分泌物）。对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃ 10％NaCL水溶液，使
痰液易于排出。对咳痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽。合格的痰标本要求是镜下WBC>10个/LP，上皮细胞<25个/LP。
(2)气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
(3)小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
3、标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
采集后应立即送检。真菌培养的标本如不能及时送检，可放 4℃保存，以免杂菌生长。
标本运送过程中必须保证其安全，避免细菌污染。
四、拒收标准
1没有用指定容器保存的标本。违反标本采集、运输及保存注意事项的标本。
第五节 化脓和创伤标本的采集、运输和保存
一、检验项目
脓汁和创伤部位分泌物的细菌培养、真菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【采集容器材】
无菌拭子和无菌试管。【采集方法及注意事项】 开放性感染和已溃破的化脓灶：先用灭菌生理盐水冲洗表面的污染菌，用灭菌拭子采取脓液及病灶深部的分泌物。注意尽量取化脓组织与正常组织交界处 的脓汁，因为脓汁中心的细菌大部分已死亡，交接处的活菌较多，会提高阳性率。对于慢性感染，因污染严重，很难分离到致病菌，可取感染部位下的组织，研磨成组织匀浆接种于培养基。闭合性脓肿：一般采用穿刺或手术引流的方法采取.采集前先用2.5-3%的碘酊和75%的酒精消毒周围皮肤。标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
应立即送检，如不能送检，应放 4℃保存，淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养的标本除外，后者应室温保存。
标本运送过程中必须保证其安全，避免细菌污染。
四、拒收标准
1没有用指定容器保存的标本。违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第六节 脑脊液标本的采集、运输和保存
一、检验项目
脑脊液的细菌培养、真菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、墨汁染色查新型隐球菌、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【收集样本容器及采样量】
无菌试管或小瓶。如果用于检测细菌或病毒，脑脊液量应大于或等于1ml，如果用于检测真菌或抗酸杆菌，脑脊液量应大于或等于2ml。【采集方法】
用腰穿的方法采集脑脊液。
标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
收集标本后，室温下15分钟内送到检验科。脑脊液标本不可放冰箱保存，这样做会导致某些细菌死亡（如脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌和嗜血杆菌）。常温下可存放24小时。
标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、拒收标准 没有用指定容器保存的标本。标本量不足或者违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第七节 胆汁标本的采集、运输和保存
一、检验项目
胆汁标本的细菌培养、真菌培养、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药1－2天后采集标本。如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【标本收集容器及采样量】
无菌试管或无菌容器。尽可能多采集标本，且不少于1ml。【采集方法】
1、采集时间：怀疑感染存在时,尽早采集。
2、用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，标本放入无菌试管或无菌容器内。
3、标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
应在室温下15分钟内送到检验科。在常温下标本可保存24小时。做真菌培养的标本如不能及时检验，应放4℃保存。
标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、拒收标准 没有用指定容器保存的标本。标本量不足或者违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第八节 胸水标本的采集、运输和保存
一、检验项目
胸水的细菌培养、真菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药后1-2日采集。如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【标本收集容器及采样量】
无菌试管或无菌容器。尽可能多采集标本，且不少于1ml。【采集方法】
1、采集时间：怀疑感染存在时,尽早采集。
2、用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，并放入无菌试管或小瓶内。为防止凝固，可在试管中先加入灭菌肝素。
3、标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
应在室温下15分钟内送到检验科。标本在常温下可保存24小时。如果做真菌培养，只能放4℃保存。
标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、标本拒收标准 没有用指定容器保存的标本。标本量不够或者违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第九节 腹水标本的采集、运输和保存
一、检验项目
腹水的细菌培养、真菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、抗酸杆菌涂片、革兰染色菌涂片检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药1－2天后采集标本。如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【收集容器及采样量】
无菌试管或无菌容器。尽可能收集多的标本，且不能少于1ml。【采集方法】
1、采集时间：怀疑感染存在时，尽早采集。
2、用针穿刺法或外科手术引流法采集标本，放入无菌试管或无菌容器内。为防止凝固，可在试管中先加入灭菌肝素。
3、标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等情况。
三、标本运输及保存
应在室温下15分钟内送到实验室。在室温下可保存24小时。如做真菌培养的标本不能及时检查，应放4℃保存。
标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。
四、拒收标准
1没有用指定容器保存的标本。
2标本量不够或者违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第十节 生殖道标本的采集、运输和保存
一、检验项目
生殖道标本的细菌、真菌、淋球菌，解脲脲原体和人型支原体培养；沙眼衣原体抗原检查；淋球菌涂片；细菌性阴道病相关检测、真菌涂片。
二、标本采集 【采集前注意事项】
病原体培养应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。【标本采集器材】
无菌试管、无菌男性拭子、无菌女性拭子。【采集方法】
1.尿道分泌物
(1)男性：取样前至少1小时内不要小便。清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，用男性拭子采取从尿道口溢出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2～4 厘米取出分泌物。如无脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按摩，促使分泌物溢出。当无肉眼可见的分泌物时，可将灭菌男性拭子轻轻深入尿道内2～4 厘米，转动并停留 10～20 秒钟采集标本。采样拭子置入灭菌试管内送检。
(2)女性：取样前至少1小时内不要小便。清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，然后经阴道内诊压迫尿道，或从尿道的后面向前按摩，使分泌物溢出，用无菌女性拭子采样。无肉眼可见的分泌物时，可用灭菌拭子轻轻深入前尿道内，转动并停留 10～20 秒钟采集标本.采样拭子置入灭菌试管内送检。
2.巴氏腺、尿道旁腺：清洗或局部消毒，然后压迫腺体，使分泌物溢出，用无菌拭子采样。
3.阴道分泌物：用窥器扩张阴道，用灭菌女性拭子采取阴道口内 4 厘米内侧壁或后穹隆处分泌物。
4.宫颈分泌物：用窥器扩张阴道，先用无菌棉球擦除宫颈口分泌物，再用女性拭子插入宫颈管 2 厘米，转动并停留 10～20 秒钟，让拭子充分吸附分泌物，采样拭子置入灭菌试管内送检。
5.前列腺液：用前列腺按摩法采集前列腺液，标本置于灭菌容器内送检。6.精液：受检者应在 5 天内未排精。清洗尿道口，采用手淫法体外排精，精液置于灭菌容器内送检。
7.溃疡分泌物：先用生理盐水清洗患处，再用灭菌棉拭子取其边缘或其基底部的分泌物，标本置于灭菌试管内送检。.标本采集完成后应在标本容器上注明患者姓名，在申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等信息。
三、标本运输及保存
标本应在室温下 15 分钟内送到检验科。
标本运送过程中必须保证其安全，避免细菌污染。
四、拒收标准
1.没有用指定容器保存的标本。.违反标本采集、运输及保存操作要求的标本。
第十一节 血液及骨髓标本的采集、运输和保存
一、检查项目
血液、骨髓液的细菌培养。
二、标本采集
（一）血液标本采集
【采集前注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本,如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。抽血过程中应严格遵循无菌操作规程。
【采集方法及注意事项】
1、采用BACT/ALERT 3D血培养仪配套血培养瓶收集标本。
2、防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒程序是十分重要的。
2.1 培养瓶消毒程序
2.1.1 用 70％酒精消毒培养瓶橡皮塞子。2.1.2 酒精作用 60s,待干燥后使用。
2.1.3 在血液注入血培养瓶之前，先确认培养瓶盖酒精已经风干，否则应用无菌纱布或棉签清除橡皮塞子表面剩余的酒精，再将血液注入培养瓶中。
在采血前，先消毒培养瓶盖，紧接着进行皮肤消毒。2.2 皮肤消毒程序： 严格按以下三步法进行
2.2.1 用70%酒精擦拭静脉穿刺部位,作用时间30s。
2.2.2 用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤，从穿刺点向外画圈消毒,消毒区域直径应达3cm 以上，碘酊作用 30s，碘伏作用 90s。
2.2.3 用70％酒精脱碘。对碘过敏的病人只能用 70%酒精消毒，作用60s。穿刺部位酒精挥发干燥后再行穿刺采血。
3、培养瓶接种程序
用无菌注射器抽取血液后，不要换针头，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，防止血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，然后再注入需氧瓶，严防将空气注入厌氧瓶中。如采血量少于推荐血量时，应首先接种需氧瓶，剩余血量再接种厌氧瓶。
4、采血量及采血部位： 4.1 成人
4.1.1 现我院做法---“单臂1套”：单臂(单一静脉穿刺点)采集1份血样，分注到两个血培养瓶(需氧+厌氧，即1套)中，每个血培养瓶的血量为5～10ml（在此范围内，随着血量增加检出率相应提高）,总量为10～20ml。4.1.2 推荐做法-----“双臂2套”: 同时或短时间间隔（10分钟内）从双臂（两个不同穿刺点）采集2份血样，注入两套血培养瓶中，即从一个部位采集1份血样接种到1套培养瓶中，再从另一部位采血接种到另1套培养瓶中.4.2 儿童---“双臂2瓶”：一般只做需氧培养,特殊患者才考虑厌氧培养.同时采集2次(不同部位，如双上肢)血样，注入需氧瓶中（2个需氧瓶），每个培养瓶的血量为 2～5ml。
4.3 婴幼儿：一般只需做一瓶需氧瓶培养。
5、将血培养瓶上的条码撕下，粘贴在检验申请单上，将患者姓名写在血培养瓶标签的空白处。在申请单上注明采集时间和部位、每瓶注入血量、病人用药等信息。
【标本采集的时机】
1、采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，如已经使用抗菌药物者，应在下次用药之前采血培养,并选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
2、对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前 0.5～1h 采集血液，或于寒战或发热后 1h 采集。因为发热时血液中可能没有细菌。
3、特殊情况的血培养，如导管相关性血流感染、感染性心内膜炎（间隔30分钟，连续采3套血培养）等可咨询微生物室工作人员。
（二）骨髓液标本采集
1、严格按照无菌操作规程进行；
2、采集部位：（1）髂后上棘最常用；（2）髂前上棘较安全。
3、采集量：以注射器抽吸骨髓液1.0ml送微生物培养。骨髓液抽取后应立即涂片，否则会很快凝固，使涂片失败。标本量不宜过多,以免被外周血稀释而影响结果.4、标本采集完成后应即密封。在标本容器上注明患者姓名，在检验申请单上注明标本来源、采集时间、病人用药等信息。
三、标本的运输及保存
血培养标本应尽快送往检验科。从标本采集到送达检验科不得超过2小时。如不能及时送检，应将其放在室温，切忌冰箱存放,因为某些苛氧菌可在冰箱温度中死亡，从而使培养阳性率下降。
骨髓标本采集后应尽快送至检验科。
四、拒收标准
血培养瓶标识与检验申请单不符、血培养瓶渗漏、破裂或明显污染、血液凝固。
第十章
液基薄层细胞学检查标本采集、运输和保存操作规程
一、检查项目
宫颈液基细胞学（TCT）检查。
二、标本采集 【采集前注意事项】
1、检查的最佳时间：绝经前的妇女，月经中后期是最理想，应避开经期。
2、检查前24小时勿用阴道药膏和冲洗阴道。
3、检查前48小时内禁止性交、盆浴和阴道检查。【采集方法】 步骤一：采样
取样应在直接观察下进行，先用阴道窥器保证宫颈完全暴露，擦净白带，使视野清晰。再将扫帚状取样器的中央刷毛伸入宫颈管内，周边刷毛到达子宫颈，同向旋转5-10圈。注意：手法宜轻柔，避免来回旋转，采样过程中，宫颈出血明显时，应立即停止采样。步骤二：漂洗
在装有TCT保存液的小瓶内漂洗扫帚状取样器。上下反复地将扫帚状取样器推入瓶底，迫使刷毛全部分散开来，共10次；最后，在溶液中快速地转动扫帚状取样器以进一步的将细胞标本保存下来，然后将取样器的宫颈刷头留在保存液中，将取样器柄扔掉。步骤三：保存
紧瓶盖，直到瓶盖与瓶体突出圆环密合。记录：将标识患者样本的条码以垂直于瓶口方向贴在瓶体上（方便扫描），并把患者姓名写在瓶子标签上；将患者的个人资料和病程简历填写在液基薄层细胞学检验申请单上，字迹工整，尽可能提供相关临床信息，后将另一张相同条码贴在申请单上。将标本保存瓶和申请单统一管理，以便送往实验室。
三、标本的运输及保存
采样后应即置细胞保存液中保存，放置室温，及时送检。
四、拒收标准
涂片收集到的细胞过少者拒收。
第四篇：检验 标本 采集 手册
检验 标本 采集 手册
吉林大学第一医院检验科 2005 年 11 月
重要警示语
将每一份标本都看作是无法重新获得、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标 1 本，必须小心地：采集、保存、转运。必须小心地：采集、保存、转运。医学实验室都接受 ISO 15189:2003 的认可 CAP 文件分析前程序，ISO/IEC15189 文件定义为：按照时 间顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验程序 时终止检测结果报告发回的步骤，包括：检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前 程序的主体: 大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人 员共同协调，在实验室检测以外的空间完成的。分析前质量管理最易出现问题： 临床反馈不满意的检验结果，60%报告最终可溯源 到标本质量不合要求。可靠的检验结果，第一个环节必须依赖于标本 的高质量。要获得高质量的标本： 临床医生：应主动明确地告之患者如何配合好 护理人员和检验人员：采集好、检测好标本 运输人员：及时快速规范转运好标本 在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回。
一、采集标本前质量保证、对策 2
（一）加强沟通，合理选项 医生应认真、完整地填写检验申请单，讲清每项填写的意。特别是： 患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。
（二）患者准备，至关重要 医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素（药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间）正确指导患者，采取切实措 施，规范采集标本前患者的一切行为，保证采集的标本符合疾病的实际情况，留 取合格的标本。应告之患者：试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报 告时间、如何获得结果。
（三）采集前准备： 条码生成与粘贴 足够合格的采血人员 标准化的采血程序手册 合格的采血器材 1 二.标本基本类别血液.全血、血浆、血清 尿液 便 脑脊液 心包、胸腔和腹腔积液 关节积液 羊水 胃及十二指肠液 前列腺液和精液 痰 其他（包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等）各种穿刺物 3 [血液标本的采集] 一.血液标本基本要求 保持标本完整性：控制各种干扰因素 保持标本新鲜：最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本：高脂肪、溶血、凝固、二.标本采集的时间
（一）随机和急诊标本 随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时而必须采集的血和尿标本，一 般无法让患者进行准备。此类标本主要是门诊、急诊和抢救病人必须做的一些检 查标本，或在体内代谢相对较稳定的检查物质，或受体内外干扰较小的检查物质。凡此类标本在送检时应加以注明，评价检验结果时应注意昼夜节律影响。便于分 析检查结果时参考。
（二）空腹标本 空腹标本一般指进食 8h 后（但不能超过 12h,禁食时间过长可引起部分指标 异常；如补体 C3、转铁蛋白等。）采集的血和尿标本，住院病人多在清晨，此类 标本常用于临床生化定量检查。因为标本是在空腹和安静时采集的，所以受饮食 质、量以及日间生活、生理活动的影响较小。对病人来讲，若多次检查同一项目，也便于比较、对照。测定血肌酑时还应禁肉食 3 天，且不能饮咖啡、茶等。乳糜 血患者检测血脂应素食 3 天后。
（三）指定时间标本 指定时间标本多属功能试验采集的各种标本，因试验目的不同，采集标本的 时间各有不同，必须按试验要求采集，如葡萄糖耐量试验等。三.血液标本检验结果的干扰因素
（一）脂血 血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状，通常称之为脂 血。血清或血浆浑浊本身具有一定的临床意义，实验室报告这一结果，同时血清 浑浊可导致许多指标出现假性升高（如总蛋白）。另处，由于指质可以置换水，经常导致血 K、Na 的的浓度在电极法测定时比火焰光度计法高。脂蛋白可以结 合亲脂成分，降低与抗体的结合，从而干扰免疫检测结果。4
（二）溶血 溶血的标本可以给测定值带来很大的影响，标本溶血后血细胞内含量高的物 质进入到血清可造成结果假性升高，同时溶血可干扰测定中的反应过程及比色，常会导致许多被测指标的浓度假性升高。
（三）黄疸 由于血清总胆红素含量太高干扰许多指标的测定结果。
（四）某些药物的影响 某些药物对测定结果的影响
是不容忽视的。药物的影响主要有（1）药物的 代谢产物对某些试验方法的物理或化学干扰；药物增加一些蛋白质的结合水平，从而影响这些物质的存在方式；药物自身与蛋白质结合。总之，正确全面了解药 物对测定结果的影响对检验医师和临床医师都是十分必要的，这对正确解释检验 结果有帮助的。
（五）巨酶 免疫球蛋白与酶的复合物被称之为巨酶，几存在于所有的诊断酶中，这些结 合可以提高酶的半寿期，从而导致酶的活性升高。最明显的例子就是 CK1 及 CK2，CK1 是 CK-BB 与免疫球蛋白的复合物，CK2 是线粒体 CK 的多聚物，巨 巨 这两种类型的巨 CK 均可使 CK-MB 活性上升。另一个例子是巨淀粉酶，它的显 著特征是使血中淀粉酶活性升高，而尿中淀粉酶则正常。
四、静脉采集基本要求
（一）患者体位 住院患者卧位。从卧位到直立位：则血浆量减少 12%。大多数细胞成分及大 分子物质有 5%-15%升高。不应在输液侧采血：如不可避免，必须注明。否则一 切后果采血者负责。试管准备：按检验条码要求准确备齐各种试管而不能混用
（二）血管选择 应选用较大的血管。血管小：采血时易发生塌陷，引起凝血。不能采到足 够的血量。
（三）注射器 针头外径 1mm。5 针头外径＞1mm 可引起创伤，导致血管碎片入血，促发凝血。针头外径 ＜0.7mm 血液采集时间延长，针头内压力剃度可导致溶血和血小板激活。消毒部位：穿刺处所用消毒液已干
（四）止血带 压脉带控制在 1 min 内。一旦血液入针筒，就应去除。病人握拳：不能一握 一放。抽血过程：应缓慢，不宜过快，将血液沿管壁徐徐注入标本容器，以免产生 大量泡沫或溶血。保证血量：按条码要求选择采血容器颜色。避免抽血不当或血量不足。采血容器的颜色、用途和采血量 头盖颜色 紫色 蓝色 黑色 绿色 红色 黄色 添加剂 EDTA-K2 枸橼酸钠 枸橼酸钠 肝素 分离胶促凝 分离胶促凝 用途 采血量（ml）2.0 2.7 1.8 2.0 4.0 4.0 血常规、HLA-B27、心肌损伤标志物 凝血常规、等凝血试验 血沉 血流变学、D-D、FDP 生化检验 免疫检验
（五）采集多种血液标本的次序： NCCLS 推荐 1.多种血液标本时，采血次序为：血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管/普通血清试管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA 管、葡萄糖 检测管。2.同一患者采集多种试管，采血次序：EDTA 管、其他试管、凝血标本。3.试管混匀：抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂，至少 5 次以上。避免采血损伤和用力转入容器。
（六）抗凝血量
1、血液比例过高——由于抗凝剂相对不足，血浆中出现微血凝块。
2、血液比例过低——抗凝剂相对过剩，对很多检验会造成严重影响。
（七）记录标本信息：标本管上（条码）注明姓名、科别、床号等相关信息。6
（八）标明采血时间 从采血和离心之间的延误可导致试验结果的质量，因此，标明采血时间很重 要。
（九）生物安全 所有采集标本的器皿均应加塞密闭
（十）标本运输和储存 采血完成后，时间耽搁越少，检验结果的可靠性就越高。1.标本运输 温度：在运输到检验科前，标本必须置于室温下，标本转运必须符合储存 条件。ICSH建议：在室温（18～25℃）下，4h完成检测分离血浆和血清：血 细胞与血清或血浆接触＞2h： 血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。同一病人同时有数管血标本送检，应标明采血先后顺序，以便结果不一致 时可进行溯源运输必须平稳。泡沫可使蛋白质变性，血小板激活。试管置于专用试管架和有合适温度的容器转运。2.储存条件： 如不能及时检查，应放在室温、－4℃、－20℃、－80℃冰箱中保存。
（十一）避免标本溶血： 是保证标本质量的重要环节。应将溶血标本弃置并记录，重新采血。标本溶血常见原因：采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入 试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用 消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。肉眼未见溶血，但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时，应 警惕是否发生了非显性溶血。（十
二）血液浓缩原因： 使用压脉带时间过长 进针处按摩、挤压或摸索寻找 长期静脉治疗 7 硬化或阻塞的静脉
（十三）拒收标本标准
1、患者信息不全
2、标签不清，不具备识别系统的唯一性
3、抗凝不当、标本凝固
4、时间延误
5、溶血标本
6、储存温度不当
7、采自输
液管
8、样本外漏、容器破损
9、明显受污染的样本
10、标本量过少
11、标本项目与申请项目不符
12、医嘱作废的标本
13、容器不合格，影响检验结果
（十四）接受标本：必须认真核对标本
1、姓名
2、申请项目
3、标本类型
4、试管和抗凝剂合适性
5、标本是否泄漏或容器损坏
6、标本量是否足够
（十五）治疗药物浓度监测采样时间〕 1 氨基糖苷类抗生素：一般在用药结束后稍晚一点的时间开始，若滴注为 1h，在滴注结束后 10min 取血样，若滴注小于 1h,一般在给药 30 min 取样。
2、卡马西平：达稳态血药浓度时，给下一剂量前立即采样（谷值）。
3、苯巴比妥：由于半衰期长，采样时间不重要，可加固定在同一时间采样，以便比较。
4、丙戊酮：给下一剂量前立即采样（谷值）8
5、地高辛：给药后 8—24 小时。(不管是静脉给药还是口服给药，完成药物 的分布过程需要 8～12h.。
6、茶碱：口吸服后 2～4h。
7、奎尼丁：若每 6h 服药一次，则给药后 6h 左右取血；若每 8h 服药一次，则给药后 5～6h 左右取血。总之，应于下次给药前采血测谷浓度。
8、环孢霉素：服药后 12h。
9、必要时遵照医嘱。〔微生物标本的采集〕一.血液及骨髓(一)采集时间
1、一般原则(1)、病人发热初期或发热高峰.(2)、使用抗菌素前(3)、已经用药者,应在下次用药前 2.、布鲁杆菌感染(1)、最佳时间:发热期(2)、还可多次采血,24 小时抽 3～4 次 3.、沙门菌感染(1)、可在不同时间采集标本（2、)肠热症患者在病程 1～3 周内采集标本 4.、亚急性心内膜炎：除发热期外,应多次采集
5、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内分别在 3 个不同部位抽血样培养。
6、急性败血症：脑膜炎、骨髓炎、关节炎、急性未处理的细菌性肺炎和肾 盂肾炎除在发热期采血外，应在治疗前短时间内在身体不同部位采血，分别作需 氧、厌氧培养。
7、不明原因发热（1）、发热期内多次采血（2）、如果 24 小时培养为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次血样进行 培养。9
8、肺炎链球菌感染：最佳时期为高热、寒战或休克时。
9、分枝杆菌感染：感染初期采血
（二）采集部位及频率
1、急性败血症：24 小时内抽血 3 次或更多，在不同部位如左、右手臂或颈 部采集。
2、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内，在三个不同部位采集血标本
3、亚急性心内膜炎：第一天在身体不同部位取三次标本。如果 24 小时培养 为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次多部位采集血样进行培养。
4、无名热 ：不定期多次、多部位。24 小时内不超过 3 次，如果培养为阴 性结果，应继续采集送检。
（三）标本采集量 成人：10 毫升血液 儿童：3～5 毫升 婴幼儿：1～2 毫升
（四）标本采集注意事项
1、用 75%酒精消毒瓶盖，不用碘酒消毒
2、严格作好抽血部位的无菌操作
3、同时做需氧和厌氧培养时，先将标本注如厌氧瓶中，然后再注如需氧瓶 里。
4、注如标本的培养瓶立即送检，如不能立即送检时，放室温保存，切勿放 冰箱内
5、化验单上注明采血时间
二、尿液标本
（一）采集时间：抗菌素应用之前，晨起第一次尿液
（二）采集方法
1、段尿采集方法：清洗尿道口，排尿弃去前段尿，留取中段尿 10 毫升于无 菌容器中立即送检。
2、集尿法：结核分枝杆菌集菌检查。将 24 小时尿留在一清洁容器中，取沉 渣 10 毫升送检 10
3、尿法：通过导尿管留尿 10 毫升于无菌容器中立即送检
（三）注意事项
1、尿严格进行无菌操作
2、集后立即送检
3、用药之前进行培养
4、液中不得加防腐剂 三.、粪便标本
（一）采集时间
1、泻病人在急性期用药前采集
2、沙门菌感染
（二）集方法
1、自然排便法：自然排便后，挑取有脓血，黏液部位的粪便于无菌容器内 送检。
2、直肠拭子法：不易获得粪便可采用直肠拭子法采集。
（二）注意事项
1、标本新鲜
2、用药前采集
3、腹泻病人在急性期采集
四、痰及上呼吸道标本
（一）标本采集时间
1、用药前清晨痰
2、鼻咽拭子
（二）采集方法
1、自然咳痰法：清晨起床后，清水反复漱口后用力除第一口痰于无菌容器 中立即送检。
2、上呼吸道标本：采用无菌棉拭子
（三）注意事项 标本采集后立即送检，如不能立即送检，放冰箱保存
五、化脓和创伤标本 用药前，无严格时间要求 肠热症在 2 周以后；胃肠炎病人在急性期采集新鲜粪便 11
（一）标本采集
1、开放性感染：标本采集前清创创口，然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深 部分泌物于无菌管中立即送检。
2、闭锁性脓
肿：无菌操作，穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。
（二）注意事项
1、药前采集标本
2、能立即送检标本，放 4℃保存，但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本除 外。
六、穿刺液
（一）脑脊液
1、集时间 怀疑为脑膜炎的病人，在用药前应立即采集脑脊液进行培养
2、集方法 用腰穿方法采集脑脊液 3~5 毫升于无菌管中立即送检
（二）注意事项
1、于细菌检测：收集脑脊液后 15 分钟内送检，脑脊液不可放冰箱保存。
2、于病毒检测：脑脊液标本应放置冰块，在 4℃15 分钟内送检。
3、行腰穿过程中，严格无菌操作
（三）胆汁及穿刺液
1、检测时间：怀疑感染存在，应尽早在用药之前或停止用药后 1～2 天采集 标本
2、采集方法：无菌穿刺抽取标本于无菌管中立即送检，量不少于 1 毫升
七、烧伤标本
（一）、采集时间 早期、深 П 度烧伤溶痂和Ⅲ度焦痂分离期、后期每天采 集烧伤标本于无菌管中立即送检
（二）、采集方法
（三）、注意事项
1、严格无菌操作
2、床前采集标本进行厌氧培养
3、烧伤 12 小时以后进行采集创面标本，可获得阳性结果
八、生殖道标本 用无菌拭子，直接从烧伤创面的脓汁多部位采集 12
（一）标本采集 尿道分泌物、阴道分泌物、宫颈分泌物、宫呛内容物、前列腺按摩液、精液 等严格无菌操作留取于无菌管中立即送检。
（二）注意事项
1、严格无菌操作
2、采取宫颈标本避免触及阴道壁
3、床前采集标本进行厌氧培养 九.组织标本
（一）采集时间
1、浅表皮肤黏膜
2、深部组织
3、尸检标本
（二）采集方法
（三）注意事项
1、严格无菌操作
2、各种活检组织标本，常温下最长保存 24 小时
3、甲醛固定的组织块标本不用于病原微生物分离 附：样本拒收标准
1、样本上无患者条码或条码不符和要求
2、样本外漏、容器破损及明显受污染的样本
3、样本的检验项目申请不适合进行
4、当日重复送样本（血培养除外）使用抗生素之前采用 手术或内窥镜检查是采集 死后迅速采集 无菌操作留取标本于无菌管中立即送检 〔骨髓形态标本的采集〕
一、髓标本的采集是由临床医生采集，应适量不得超过 0.2ml，取材应避免混血。
二、脑脊液标本的采集是由临床医生采集，采集后应立即送检，接到标本后应及 时制作标本。
三、血液涂片的采集（包括血细胞形态检查和疟原虫检查）方法两种： 由临床护士用 BD 管采血，采血后标本应尽快送检，应在 2 小时内制成血涂 片，标本不可放置过久。13 在未制作血涂片前，标本严禁放入冰箱内保存，分院送检的标本应制成血涂 片送检。冬季室外送检的标本应保温，避免标本受冻溶血,如果标本放置时间超过 24 小时（夏季温度高）可拒收标本。〔细胞遗传（染色体）标本的采集〕
一、预约时要求患者采血化验前半个月内尽量避免应用各种药物。
二、到本室采血时要求患者精神尽量放松，因为患者过度紧张时机体释放的血管 紧张素会影响染色体的生长。〔脱落细胞标本的采集〕
一、痰标本： 留取痰标本的方法有自然咯痰、气管穿刺吸取、经支气管镜抽取等，以自然咯痰为主，本应新鲜。应嘱患者用力咳出气管深处真正的呼吸道分泌 物，于干净痰盒内，密封送到细胞室，而勿混入唾液及鼻咽部分泌物。
二、液体标本（胸、腹水、心包液、尿液、脑脊液等）要求新鲜，送实验室应立 即制片，否则细胞自溶退化而破坏，影响诊断。如不能立即制片，可在标本 中加入 40%甲醛溶液以防止细胞自溶。液体标本要求标本量 50-100ml（脑 脊液除外）。
三、乳腺溢液：询问病史，让病人自行或制片人员沿乳腺导管轻轻挤压，将第一 滴溢液去掉，再挤出制片，如有血选择血性乳液，粘片制成薄厚均匀的涂片，马上固定。
四、气管镜刷片、妇科刮片由临床医生涂制。但标本需马上固定。若做液基细胞 按液体标本方法制片。
五、穿刺细胞学：到时本室取标本。〔血尿定位标本的采集〕
一、患者清晨 3 点排尿一次，这次尿不要，然后留取 3 点 6 点全程尿一次。全部 收集在干燥、清洁、无污染的容器内来检验时带来。
二、早 8 点到检验科由血尿定位定提供清洁尿杯分三杯留取新鲜尿液。
三、本室可保存尿液中存在的有形成分形态冰箱温度为 2℃～8℃。〔粪便标本的采集〕 14 粪便标本的采集方法直接影响检验结果的准确性，通常采取自然排出的粪 便：
1、留取新鲜指头大小（5 克）的大便，放入干燥、清洁、无吸水性的容器 内送检。不要混入其它杂物，容器上应贴好标签、条码或注明患者姓名、科别、床号、收集时间及
检测项目。
2、本应选择具有病理意义的便（如浓血、血粘液、水样等选取）应在半小 时内送检，2 小时内检测完毕，否则应 PH 变化及消化酶的影响可使便的细胞成 分破坏分解。最多不应超过 4 小时。
3、无法排便而又必须检查时，可经肛门用肛试子采便。
4、试验应嘱咐患者在收集标本前三天禁食动物性食物，并禁服铁剂和维生 素 C.且连续检查三天，收集后须迅速送检。
5、寒冷时应保持温度，避免冻溶防止有形成分破坏。〔尿标本的采集〕
一、根据不同检验目的。留取晨尿和餐后 2h 尿、12h 尿、24h 尿及随机尿。.尿常规检验通常为：
（一）、新鲜晨尿（这时的尿标本较浓缩和酸化，不受运动及进餐等影响。适用于尿蛋白、尿沉渣、尿亚硝酸盐检验及细菌培养）和随机尿（尿液可 能被稀释或受进餐、药物以及新陈代谢等影响，尿中成分检出情况不尽相同。餐后尿检测易出现糖尿）。
（二）、尿胆原检测以 14：00～16：00 时间段内留取的尿液为好。
（三）、尿液定量检查需要留取 12h 或 24h 的混合尿液，留取时应按规定时 间内排出之尿液装入含有合适防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取 10ml 送检。1、12h 尿：适用于 Addis 计数。试验当日清晨起，除正常饮食外，不得 再饮水，以利尿液浓缩。于晚上留尿开始时，嘱患者排尿并弃去，收集此后 12h 内的全部尿液。2、24h 尿：适用于代谢产物 24h 定量测定或 24h 尿沉渣抗酸杆菌检查。留取要求同 12h 尿。15
二、尿液标本采集应清洁、干燥的一次性容器，应用时贴上条码。避免经血、白带、精液、粪便混入。标本留取后及时送检，以免因光线、细菌滋生造成 化学物质和有形成分的改变和破坏。作细菌检验的标本，在微生物标本采集 注意事项介绍。
三、尿标本的防腐与保存： 冷藏法：4℃冰箱，不得超过 6 小时。但应注意，有些成分如尿酸盐在低 温时会沉淀析出，影响其化学成分的测定；同时，碱性尿液中的 红细胞以及细胞管型即使在冰箱中也会破坏。因此，要根据检测 项目的需要，选择不同的防腐及保存方法。甲苯法：100ML 尿加 0.5ML 甲苯，适用于 24 小时尿液化学检查。〔前列腺标本留取注意事项〕 由临床医师进行，标本少时 1 滴，多时可达 1ml 左右。置洁净载物玻片上，立即送检。以防干涸。〔精液标本的采集〕
一、嘱患者禁止合房七天，留取精液。
二、直接用干燥、防漏、洁净的容器留取。容器不易过大，以免沾留太多。要求 在半小时内保温送检验科。冬天最好放在内衣口袋里。
三、标本采集次数：精子生成的日间变化较大，因此，对于少精症患者不能仅凭 1 次检查结果诊断。一般间隔 1～2 周再检查 1 次，连续检查 2～3 次后再作 判断。
四、避免用避孕套工具留取。影响活动力。
五、必要时在医生指导下留取。〔浆膜腔穿刺液的采集〕由临床医师进行；穿刺必须注意无菌操作，勿使细菌污染穿刺部位及标本。采取量由检验目的按条码要求而定。为防止细胞变性、凝块发生或细菌溶解，应 及时送检及检验。如不能送检，可加适量的枸橼酸钠抗凝剂（蓝色真空管）内，混均后立即送检。如要观察标本有无凝固现象，则不能加抗凝剂。[胃液标本采集] 16 先将晨间空腹残余胃液抽空弃去。然后在 1h 内连续抽出胃液放入同一瓶内。〔脑脊液标本的采集〕
一、本由医通过腰椎穿刺采集。穿刺应顺利，避免将因液混入标本。
二、标本一般收集 3 管，每管 2ml。第 1 管做细菌培养；第 2 管做化学或免疫检 查；第 3 管做常规及细胞计数。
三、标本就及时送检、及时检验。久置可致细胞破坏、变性、自容，糖分解及病 原菌破坏或溶解等影响检验结果。17 患者
1、状态
2、时间 避免剧烈活动、禁食 12h 后作为采血标准。一般生理成分在晨起时都处于较低水平，随着起床和活动增加而逐步 上升，下午较高，入夜休息和睡眠后渐低，晨起前最低。个体日变动差(最高与最低)项目 钠(mmol/L)钾(mmol/L)氯(mmol/L)磷(mmol/L)总蛋白(mmol/L)白蛋白/球蛋白(mmol/L)尿素氮(mmol/L)尿酸(mmol/L)
3、生活环境
4、药物
5、吸烟
6、性别 停服能干扰检查项目的药物，特别是进行脏器功能试验时更为重要 吸烟对检查的影响与吸烟量成正比.对许多检查项目有影响，女性受性期周期影响较大，男女发育阶段也 日变动差 4.8 0.4 3 0.22 0.6 0.3 1.2 0.49 项目 胆固醇(mmol/L)甘油三酯(mmol/L)碱性磷酸酶(King U)丙氨酸氨基转移酶(U/L)3.6 日变动差 0.52 0.33 门冬氨酸
氨基转移酶(U/L)3.9 乳酸脱氢酶(U/L)胆碱酯酶(⊿ph)淀粉酶(somogy U/L)2.7 0.1 17 有一定的差别。
7、年龄 一般是从婴乳儿、儿童、青少年、青壮年、更年期和老年，从生长发 育代谢旺盛至代谢减慢、衰老，各种生物活性物质从活跃到降低，免疫功能 从发育不全到发育完善直致衰老、萎缩，其相关的检查也有相应的变化。18
第五篇：检验标本采集处理
一﹑临床常用检验项目的标本采集和处理
（一）血常规检验标本
一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：
1.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；
2.应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3.采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后 应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。
（二）红细胞沉降率（血沉，ESR）测定标本
静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：
1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；
2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）； 3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。
（三）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG、DD）标本
静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8）。采血注意事项：
1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；
2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）； 3.应单独1管血；
4.必须准确采血至刻度线2.0ml；
5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块； 6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。
（四）血型 与 血交叉标本
为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：
1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）； 2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml； 3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。
（五）尿液常规检查标本
１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：
（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；
（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；
（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；
（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；
（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；
（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为:①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐（hydrochloric ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。
２.尿液常规检查标本采集方法：
（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；
（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；
（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；
（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。
（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。
（六）粪便常规检查标本
1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取； 2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；
3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；
4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；
5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。
6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。
7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。
（七）浆膜腔积液检查标本
（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；
（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用 无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。
（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；
（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。
（八）临床化学检验标本
临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：
1.多项化学检测一般可采1管血；
2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml； 3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；
4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。
5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。
（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。
（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。
（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。
（5）实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。
（6）关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）
①离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；
②温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。
③再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。
（7）离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前）(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；(2)分离出的血清或血浆的储存：
①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC 48h以上储藏于－20ºC；
② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；
③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；
④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；
⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。
（九）血气分析标本
血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为： 1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；
2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可； 3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；
4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；
5.标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。
（十）微生物学检验标本
微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项
（1）标本采集
1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率； 3）标本采集应严格执行无菌操作；
4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；
5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
（2）标本运送
1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；
2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
（3）标本验收
1）实验室只能接受和处理合格标本；
2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联
（4）处理
根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。2．微生物学检验标本采集和处理
（1）尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml 2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；
3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；
4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用； 5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。
（2）粪便标本采集和处理 1）采集时间：
①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；
②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；
③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：
① 自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；
②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。
（3）痰及下呼吸道标本采集和处理 1）自然咳痰法：
① 晨痰为佳；
② 先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；
③ 再用力咳出呼吸道深部的痰；
④ 痰量不得少于1ml；
⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。
3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。
（4）血液及骨髓培养标本
1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；
2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检； 3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；
4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；
5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；
6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检(5）脑脊液培养标本
1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。
（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。2)采集方法：
①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；
② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；
③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；
④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）
（7）胃液及胆汁培养标本
抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。
（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。
（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。
（10）泌尿生殖道培养标本
1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。
2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。
3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。
4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。
5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。
6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。(11）烧伤感染培养标本
烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。
（12）厌氧菌感染培养标本 1）标本采集
①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；
②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；
③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。2）标本运送
① 标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；
② 运送方法：
a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送； b含运送培养基的无氧小瓶运送； c厌氧罐运送（组织块）；
d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送； e一般不采用棉拭子法。(13）真菌感染培养标本 1）浅部真菌感染标本采集
① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；
② 指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；
③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。2）深部真菌感染标本采集
① 血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；
② 脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
（14）病毒感染标本
1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。2)标本采集方法：
① 呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；
②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；
③ 尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；
④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。
3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。
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