第二章儿科常用检验标本采集技术

第一篇：第二章儿科常用检验标本采集技术

第二章 儿科常用检验标本的采集技术

第一节 血标本采集技术

血标本检验是判断体内各种功能及异常变化的最重要指标之一，是临床最常用的检验项目。血标本采集技术是护理人员掌握的基本技术操作之一。本节主要介绍经外周静脉、颈外静脉、股静脉及桡动脉采集血标本的技术。

一、外周静脉采血技术

外周静脉采血技术是指通过外周静脉留取血液标本的方法。本节以蝶翼真空采血针静脉采血法为例。【目的】

1.检查血液中血球、血浆、血型、抗原、抗体及血液中各种化学成分等变化，作为协助疾病诊断、治疗的参考或依据。

2.判定患儿病情进展的程度。

3.检查血清中药物血浓度，作为调整药物剂量的参考。【评估】

1.患儿局部皮肤及血管情况。

2.是否按照要求进行了采血前的准备，如是否空腹等。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：手消毒液、锐器盒、注射盘、无菌棉球、胶贴、污物罐、蝶翼真空采血针（或标准双向针和持针器）、皮肤消毒液、无菌棉签、试管（依检验项目而定）、垫巾和止血带、试管架，见图2-1。

图2-1静脉采血用物

3.环境准备：卧床或座椅和适合台面，良好的采光，适宜的温度，保护隐私的围帘或屏风。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁或将患儿转移至操作台旁。见图2-2。

图2-2 核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释静脉采血的目的及过程，取得配合。

图2-3 辨识患儿

【实施】 1.协助患儿取舒适体位，在穿刺侧肢体下放垫巾、止血带。暴露采血部位：贵要静脉、肘正中静脉或头静脉，选择明显的静脉作为穿刺血管。见图2-4

图2-4 选定穿刺血管

2.使用皮肤消毒液以穿刺点为中心消毒穿刺部位，范围5cmx5cm（新生儿3cm～3cm）。在穿刺点上5cm（新生儿2cm～3cm）左右处扎止血带，嘱患儿握拳，使静脉充盈显露。见图2-5

图2-5 扎止血带

3.打开真空采血针包装袋，取出采血针，针头斜面朝上。见图2-6，绷紧皮肤，呈15度～30度进针穿刺。见图2-7

图2-6 取出采血针 图2-7 进针穿刺

2）静脉穿刺成功后，用胶贴固定蝶翼，采血针一端与真空采血管相连，松开止血带，待管内液面停止变化后，将管退出，换上新的采血管。见图2-8

图2-8连接采血管采血

4.采血完毕，嘱患儿松拳，用无菌棉签或棉球按压穿刺点，拔出针头，嘱患儿或患儿家长行三指按压片刻直至不出血为止。见图2-9

图2-9 按压穿刺点

5.将针头放进锐器盒。血标本置于试管架，待送检。见图2-10。

图2-10 血标本置于试管架 6.再次核对标本信息，确认采血时间。

7.协助患儿取舒适体位，整理床单位。清理用物，洗手。【评价】

1．操作正确，符合“一针、一管、一消毒”。2.患儿痛感小，无不适反应。3.穿刺点按压正确，无出血。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。2.提示患儿、家长注意保持穿刺部位清洁，以免引起局部感染。【注意事项】

1.严禁在静脉输液、输血的一侧手臂采血。

2.使用标准双向针穿刺，当真空采血管插入双向针时，要固定好持针器，防止针头移动而刺破血管壁。

3.同时抽取几个项目的血标本，一般应先注入血培养管，再注入抗凝管，最后注入干燥管。

4.用抗凝管收集血标本后，立即将管子轻轻倒置8次，使血液与抗凝剂充分混匀。

5.注意止血带结扎控制在1分钟内，时间过长可引起误差。

6.留取血培养标本最好在患儿发热期间及抗菌治疗前采血，以正在发冷发热前半个小时或停用抗生素24小时后。皮肤消毒应先用碘酊，再用75%酒精脱碘。

7.儿童血培养留取血量应不少于2ml。向血培养瓶中注入血标本时先用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，用无菌干棉签清除残余液体，之后更换无菌针头，将适量的血液注入培养瓶中，摇匀。采集完成后，送检时间不能超过2小时。如无法及时送检，需室温（20℃～25℃）保存，切忌冷藏。

二、颈外静脉采血技术

此采血技术是通过行颈外静脉穿刺抽取静脉血标本的方法。适用于婴幼儿或肥胖儿童。

【目的】

1.为婴儿诊断、手术前准备、争取抢救时机采集静脉血标本。2.用于经四肢静脉采血困难的婴幼儿。【评估】 1.评估患儿局部皮肤及血管情况。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：锐器盒、洗手液、治疗盘、无菌棉球、胶贴、污物罐、一次性注射器、皮肤消毒液、无菌棉签、一次性垫巾、真空采血管、检验医嘱单、检验单和标签。见图2-11。

图2-11 颈外静脉采血用物

3.环境准备：关闭病室门窗，必要时屏风遮挡，或将患儿携至穿刺室，请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁。见图2-12

图2-12 核对信息

5.辨识患儿，并向患儿家长解释经颈外静脉留取血标本的目的及过程，取得患儿及家长配合。

【实施】 1.协助患儿去枕平卧位，头偏向对侧，肩下垫薄枕，使头低肩高，充分暴露颈外静脉，下方放置垫巾。助手站在患儿头端，双手固定患儿头部，配合程度较差的患儿由另一助手站在患儿足端，用双手、前臂及肘部约束患儿躯干及上肢。见图2-13

图2-13 显露颈外静脉

2.操作者站在患儿头端，选择下颌角和锁骨上缘中点联线上1/3为穿刺点。以穿刺点为中心消毒穿刺部位皮肤，直径5～6cm，待干。

3.助手以手指按在颈静脉三角处，使静脉充盈。操作者取出一次性注射器，左手拇指绷紧穿刺点上方皮肤，右手持针，针头与皮肤呈45°进入皮下，沿血管方向插入静脉，见有暗红色回血后固定，抽取所需血量。

4.以干棉球按压穿刺点，拔出针头，指导助手或患儿家长三指法按压棉球5～10min，直至无出血为止。

5.将血标本注入真空采血管内，注射器按废弃物处理原则处理。血标本置于试管架，待送检。

6.协助患儿取舒适体位，整理床单位。清理用物，洗手。

7.及时送检标本并记录。记录血标本留取时间，如有需要并记录血量、采血部位等。

【评价】

1.患儿穿刺部位按压正确，无出血、血肿。2.患儿生命体征平稳，无不适。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。2.告知患儿、家长保持穿刺部位清洁，以免引起局部感染。【注意事项】

1.穿刺过程中应密切观察患儿面色、呼吸情况，发现异常立即停止穿刺并做相应的处理。

2.操作动作要迅速，以免患儿头部下垂时间太长，影响头部血液回流。3.抽血完毕应压迫穿刺部位，立即扶患儿坐起，减轻头部静脉压，以防出现血肿。

4.穿刺后观察局部有无活动性出血。

5.若抽出血液为鲜红色，回血压力高，则提示刺入动脉，应立即拔出针头，用无菌干棉球紧压穿刺处10～15min，直至无出血为止。

6.按压针眼时切忌一压一松，按压力度要适宜。

三、股静脉采血技术

此采血技术是通过行股静脉穿刺留取静脉血标本的方法，一般用于小婴儿及经外周静脉采血困难的婴幼儿。

【目的】

同颈外静脉采血技术。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿局部皮肤及血管情况。

3.评估患儿及家长的配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备:锐器盒、洗手液、治疗盘、无菌棉球、胶贴、污物罐

一次性注射器、皮肤消毒液、无菌棉签、一次性垫巾、真空采血管、检验医嘱单、检验单和标签。

3.环境准备：关闭病室门窗，必要时屏风遮挡，或将患儿携至穿刺室，请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁。见图2-14。，图2-14 核对信息

5.辨识患儿，向患儿家长解释经股静脉留取血标本的目的及过程，取得患儿家长配合。

【实施】

1.清洁穿刺部位皮肤。脱去患儿裤子，清洁双侧腹股沟区域的皮肤，用尿布包裹好会阴部。

2.协助患儿取仰卧位，垫高穿刺侧臀部，大腿稍外展、外旋，膝关节屈曲为直角（膝盖转向外侧，腘窝向内），呈蛙状，暴露穿刺部位，下方放置垫巾。3.助手站在患儿头端，用双肘及前臂约束患儿躯干及上肢，两手分别固定患儿两腿。

4.操作者站在患儿足端，用左手示指触摸穿刺部位动脉的搏动，确定感觉搏动最明显处为穿刺点。见图2-15

图2-15触摸股动脉搏动

5.以穿刺点为中心消毒穿刺部位皮肤，直径5～6cm，待干。取出一次性注射器，消毒操作者左手示指、中指（或戴无菌手套），在穿刺部位触摸股动脉搏动点后手指固定不动。见图2-16

图2-16 指示股静脉进针点

6.右手持注射器，腕部靠在患儿大腿上作为支点，使针头与皮肤呈直角，自股动脉搏动点内侧0.3～0.5cm处刺入；或在腹股沟下1～3cm处与腿轴平行方向呈45℃斜面刺入皮肤，向股动脉搏动点内侧进针。见图2-17

图2-17 股动脉搏动点内侧进针

7.逐渐向上提针或向后退针，边提针/退针边抽吸，见有暗红色回血后立即停止提针/退针，固定，抽取所需血量。见图2-18。

图2-18 见血固定针 8.以无菌棉球按压穿刺点，拔出针头，三指法按压棉球5min～10min，移开棉球判断无出血后再保持穿刺下肢曲髋位5min。

8.将血液注入真空采血管内，注射器按废弃物处理原则处理。血标本置于试管架，待送检。

9.协助患儿取舒适体位，整理床单位，洗手。

10.及时送检标本并记录。记录血标本留取时间，如有需要并记录血量、采血部位等。

【评价】

1.患儿穿刺部位无出血、血肿。2.患儿生命体征平稳，无不适。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。

2.告知患儿、家长不要给患儿使用不清洁的尿裤，以免引起穿刺部位的感染。【注意事项】

1.腹股沟有伤口，穿刺处皮肤糜烂或感染时禁止穿刺。有肾病综合征及出血倾向或凝血功能障碍的患儿禁用此穿刺。

2.直刺法要根据脂肪薄厚注意进针的深浅度；斜刺法针头不要刺入太深，以免伤及髋关节或腹腔内组织。穿刺时密切观察患儿的意识、面色、生命体征等变化，如有异常立即停止操作。

3.穿刺后观察局部有无活动性出血，针眼处用无菌棉球覆盖24小时，以防被大小便污染。

4.若抽出血液为鲜红色，回血压力高，则提示刺入股动脉，应立即拔出针头，用无菌干棉球紧压穿刺处10～15min，直至无出血为止。

5.拔针后按压时切忌一压一松，按压力度要适宜，勿造成下肢青紫。

四、桡动脉采血技术

桡动脉采血是通过穿刺桡动脉留取动脉血标本的一种方法。【目的】

1.了解体内酸碱平衡及缺氧程度，以指导治疗。2.用于各种疾病、创伤、手术、呼吸衰竭、心肺复苏后等患儿的监测。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。

2.评估患儿桡动脉局部皮肤及血管情况。

3.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：治疗盘：无菌棉球、胶贴、一次性动脉采血针、皮肤消毒液、棉签、污物罐、检验医嘱单、检验单和标签、锐器盒、手消毒液。见图2-23。

图2-23用物准备

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁或将患儿转移至操作台旁。见图2-24

图2-24核对信息

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取动脉血标本的目的及过程，取得配合。【实施】 1.协助患儿取舒适姿势，暴露采血部位。在穿刺部位肢体下放置垫巾，患儿手心向上，手腕伸直，触摸动脉搏动最强处为进针点。见图2-25

图2-25 触摸桡动脉搏动

3.取出采血针、针帽备用。

4.以穿刺点为中心消毒穿刺部位，直径5～6cm，消毒操作者左手示指及中指（或戴无菌手套）。见图2-26

图2-26 消毒穿刺部位、操作者手指

5.取动脉采血针，针尖斜面向上，左手示指及中指扪及动脉搏动并固定，右手持针从左手示指及中指之间垂直进针或沿动脉走向与皮肤呈45°进针。针头刺入动脉，血液即可自行进入采血针内。见图2-27

图2-27 取桡动脉血手法

6.取得足够血量后，以干棉球按压穿刺点，迅速拔出针头，使用三指按压穿刺部位5min，直至无出血为止。7.将针头刺入橡皮塞，两手搓动注射器针栓若干下，粘贴标签于采血针上，标本立即送检。见图2-28

图2-28搓动注射器

8.协助患儿取舒适体位，整理床单位及用物。9.洗手，记录采血时间和部位。【评价】

1.采集标本符合检验规定。2.患儿无不适。

3.桡动脉穿刺处无渗血、血肿。【健康教育】

2.指导患儿、家长正确按压穿刺部位。密切观察穿刺处有无渗血、血肿，发现异常及时通知护理人员。

3.使用股动脉采血后，告知患儿家长禁止给患儿使用不清洁的尿裤，以免造成穿刺部位的感染。

【注意事项】

1.采血时，严密隔绝空气，一旦气泡进入血液标本内应立即排除，以免影响结果。

2.采血后立即送检，如不能立即送检，应放置于4℃冰箱内保存，但最长不能超过2h。

3.氧疗患儿在采集动脉血标本后，应在检验申请单上注明吸氧浓度。4.机械通气患儿应记录通气模式、氧浓度、呼吸频率、潮气量等参数。5.凝血功能异常的患儿采血后应延长压迫穿刺部位时间，以防出血。

第二节 其它检验标本采集技术

本节主要介绍痰液标本、尿液标本、粪便标本、咽拭培养标本采集技术。

一、痰液标本采集技术

痰液标本采集是指将患儿的痰液标本收集放入无菌集痰器内进行细菌培养的方法。

【目的】

1.检验痰液性质、颜色、细菌种类等。2.协助诊断疾病，为治疗或用药提供依据。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：痰培养瓶（灭菌集痰器），检验医嘱单，检验单和标签，负压吸引器，一次性吸痰管，漱口液200ml，洗手液。

3.环境准备：关闭门窗，必要时屏风遮挡、请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，根据检验项目选择正确的试管，试管贴标签，携用物至患儿床旁。

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取痰液标本的目的及过程，取得配合。见图2-29。

图2-29 辨识患儿

【实施】 1.收集痰液（1）可自行留痰者

1）清晨醒来未进食前，先用漱口液漱口，再用清水漱口。2）咳痰前先做数次深呼吸，再于呼气时对着痰瓶咳出第一口痰。3）将痰瓶盖好。见图2-30

图2-30 咳痰于培养瓶

（2）患儿无法自咳，或无法合作者 1）协助采取适当卧位，予患儿背部拍击。2）依无菌技术，按吸痰法吸出痰液入无菌集痰器。3）关闭负压吸引器，封闭吸痰管。见图2-31

图2-31吸痰液入无菌集痰器

2.再次核对标本信息，确认采集时间。4.脱手套，洗手，整理床单位及处理用物。

5.及时送检标本，洗手，记录痰标本留取时间痰液的颜色、性质、量等。【评价】

1.痰液标本留取方法正确。2.患儿无不适。【健康教育】

1.教会患儿及家长有效排痰方法。

2.指导痰菌阳性患儿家长正确处理患儿痰液的方法。【注意事项】

1.口鼻腔受损、严重咯血、有严重出血性疾病（如白血病）、进食1小时之内的患儿禁忌进行痰液标本采集。

2.使用负压吸引器留取痰标本时吸取深部痰液，吸痰后视情况予口腔护理。3.痰标本常温2小时内送至检验部门。

二、尿液标本采集技术

尿液标本的采集是指通过集尿袋或其他用具收集尿液标本检验的方法。【目的】

1.检验尿液性质、颜色、气味等。2.明确诊断、协助治疗。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。

3.中段尿标本采集时评估患儿膀胱是否充盈，是否有尿意。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。2.用物准备

（1）常规准备：尿杯，尿管，检验医嘱单，检验单和标签，污物罐，手消毒液。

（2）新生儿及小婴儿需准备：一次性尿袋、清洁手套。（3）中段尿标本采集时需准备：尿液培养管。

（4）特殊留取尿标本：治疗盘，无菌棉球，镊子，0.3%醋酸氯已氨（洗必泰），75%酒精，无菌手套，弯盘，无菌容器，10ml注射器，一次性导尿管，温水（41～43℃），小橡胶中单或一次性尿垫。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，尿管贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-32

图2-32 留尿标本用物

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取尿液标本的目的及过程，取得配合。见图2-33。

图2-33 辨识患儿

【实施】

1..协助患儿留取尿标本。2..戴手套，收集尿检验标本。（1）常规检查

1）婴幼儿或排尿不能自理者：使用一次性尿袋，清洁患儿会阴部，撕去塑料袋上的不干胶纸，将圆孔对准会阴部贴紧以免尿液漏出，塑料袋放平，勿折叠，松穿尿布。有尿后，先取下塑料袋置于尿杯中，放一旁。清洁患儿会阴部及臀部，为患儿穿好尿裤，整理衣物及床单位，然后将适量尿液置入试管。

2）年长儿 ①可下床活动者，给予尿杯，到厕所排尿，留取中段尿液，约尿杯的1/3量。

②患儿若行动不便，给予遮挡，协助在床上使用便盆或尿壶，并留取足量尿液于试管中。

③若为留置导尿的患儿，先放空集尿袋，再以管夹夹住尿管约15min～30min后，安尔碘消毒尿袋出口处2次，松开夹子留尿于试管内。

3.再次核对标本信息，确认采集时间。4.脱手套，洗手，整理患儿床单位及处理用物。

5.尿管放置于试管架内，见图2-34，并及时送检尿标本，洗手，记录留取尿标本时间尿液颜色、性质、气味等。

图2-34尿标本放置于试管架 【评价】

1.所采集标本符合检验规定。2.患儿无不适。

3.留置导尿管收集尿液时方法正确，符合无菌操作原则。【健康教育】

1.指导患儿、家长留置导尿管期间，注意会阴部的清洁，防止泌尿系感染。2.指导患儿、家长发现尿液异常及时通知医护人员。【注意事项】

1.婴幼儿或排尿不能自理者使用一次性尿袋时要经常巡视，观察有无尿液。收集过程中应避免粪便污染。2.尿常规标本留尿后2小时内送检，不能立即送检的标本应放在2℃～8℃冰箱保存，但不得超过6小时：其他尿标本，留取后当天送检。

3.尿常规标本不少于5ml，对于留尿困难的患儿不少于3ml，生化项目标本不少于2ml；晨尿为浓缩尿，细胞和管型型态完整，较适合住院患儿和肾脏科患儿的动态观察。

三、粪便标本采集技术

粪便标本采集是指采集患儿一定量的粪便入标本盒内，用于检验粪便性质、颜色、混合物的方法。

【目的】

1.检验粪便性质、颜色、混合物、寄生虫卵、致病菌等。2.协助诊断。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：标本容器（视需要而定）、检验医嘱单、检验单和标签、棉签、清洁便盆、清洁手套、污物罐、手消毒液。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，便盒贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-35。

图2-35 核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释留取粪便标本的目的及过程，取得配合。见图2-36。

图2-36辨识患儿

【实施】

1.戴手套，采集标本。

（1）粪常规检查：取少量新鲜粪便标本3g～5g(蚕豆大小)放于塑料容器内加盖。（2）粪便培养

1）自然排便采集标本时，取有脓血、黏液、组织碎片部分的粪便花生米大小量，直接装入运送培养基中送检。

2）液体粪便则取絮状物，一般取1ml～3ml，直接装入运送培养基中送检。3）直肠拭子采集粪便标本：以肥皂、水和75%酒精将肛门周围洗净，用经无菌氯化钠湿润的棉拭子插入肛门超越肛门括约肌2 cm～3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉拭子置入运送培养基中送检。（3）寄生虫检查

1）寄生虫卵检查：采取不同部位的标本，尽量采血及黏液部分。2）阿米巴原虫检查：用温便盆给患儿留取粪便标本，连同便盆及时送检。（4）隐血标本：使用清洁容器同粪常规留取法留取标本。2.再次核对标本信息，确认采集时间。

3.脱手套，洗手，协助患儿取舒适体位，整理床单位及处理用物。4.及时送检标本，洗手，记录粪便标本留取时间，粪便性状、颜色、气味等。

【评价】

1．所采集标本符合检验规定。2．患儿无不适。

3．直肠拭子采集粪便标本时方法正确，深度适宜。【健康教育】

1．指导腹泻患儿、家长正确进行肛周皮肤护理。2．指导患儿、家长发现大便异常及时通知医护人员。

3.对于粪便隐血检查的患儿，嘱患儿检查前3天禁食肉类，动物肝脏，大量叶绿素等食物及含铁剂药物。

【注意事项】

1.粪常规标本采集时如腹泻者应采取脓血或黏液部分，如为水样便应盛于容器中送检。标本应避免混有尿液、消毒液及污水等各种物质，以免破坏有形成分。

2.服驱虫药或做血吸虫卵变化检查，应留取全部粪便，及时送检。3.阿米巴原虫在低温下失去活动力，不易查到，因此收集前应事先与检验室联络，将粪便盆用热水加温。

4.一般粪便标本应在留取2小时内送检，检查溶组织阿米巴病原体标本应立即保温送检。粪便培养标本及直肠拭子室温1小时内送检。高度怀疑霍乱弧菌感染的标本室温1小时内送检，送检必须符合特殊标本的安全要求。

四、咽拭培养标本采集技术

咽拭培养标本采集是用无菌长棉签采取双侧咽扁桃体及咽后壁分泌物，插入培养管内进行培养的方法。

【目的】

1.由咽部或扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离。2.协助诊断或治疗。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：咽拭培养管，检验医嘱单，检验单和标签，压舌板，手电筒，温开水，清洁手套，手消毒液。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，试管贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-37。

图2-37核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释留取咽拭培养标本的目的及过程，取得同意和配合。见图2-38。

图2-38辨识患儿

【实施】

1.留取标本 指导患儿用温开水反复漱口，并嘱咐患儿张嘴发“啊”的音(如小婴儿或不配合的患儿，操作者可用左手用压舌板压住患儿舌头)，右手以无菌长棉签采取双侧咽扁桃体及咽后壁分泌物，插入培养管内。见图2-39。

图2-39 采咽拭培养

3.再次核对标本信息，确认采集时间。

4.脱手套，洗手，协助患儿取舒适体位，整理床单位及处理用物。5.及时送检标本，洗手记录咽拭标本留取时间，分泌物的颜色、性质等。【评价】

1.患儿无不适主诉。

2.采集标本时方法正确，深度适宜。【健康教育】

1.指导患儿、家长行咽拭培养标本采集后多饮水，忌食辛辣刺激食物，注意休息。

2.遇流行性疾病爆发时指导患儿、家长有效隔离，降低感染风险。【注意事项】

1.咽拭培养不能用于会厌发炎的患儿。

2.无菌长棉签避免碰到口腔其他部位及试管外口，必要时由助手协助持手电筒，尽可能地增加采集量。

3.正确盖好咽拭培养管，防止泄漏或容器外部留有残留物。4.咽拭培养标本常温2小时内送检。

第三节

儿科常见标本采集的护理配合

本节主要介绍骨髓标本采集及脑脊液标本采集的护理配合。

一、骨髓标本采集的护理配合

骨髓是人体的造血组织，位于身体的许多骨骼内。骨髓标本的采集是通过骨髓穿刺来采取骨髓液的方法，需要医护配合完成。【目的】

1.观察骨髓内细胞形态及分类，以协助各种血液病的诊断、鉴别诊断及治疗随访。

2.发热、怀疑败血症或某些传染病的诊断与鉴别诊断，可作骨髓培养，骨髓涂片找寄生虫等。

3.通过治疗后采集的骨髓，观察某些疾病的疗效。【评估】

1.评估患儿的意识状态及合作能力。

2.评估穿刺部位皮肤有无破溃、瘢痕、硬结。3.评估病室环境是否安全、安静。【计划】

1.护士准备：衣帽整洁，洗手,戴口罩。

2.用物准备：根据小儿的年龄，备齐物品：清洁盘、骨髓穿刺包、2%碘酒和75%酒精、5ml和10ml灭菌注射器、无菌手套、2%普鲁卡因、清洁干燥玻片、推片，如做骨髓培养，另需20ml灭菌注射器、含培养基的细菌培养瓶、酒精灯、火柴。见图2—40.图2—40用物准备

3.环境准备：关闭门窗，调节室温22℃—24℃，明亮、安静、清洁，通知无关人员不要随意进入。

4.核对医嘱，携用物至治疗室。

5.辨识患儿，向患儿及家长解释骨髓穿刺的目的及过程，取得同意和配合。

【实施】 1.协助患者摆好体位，选择穿刺部位，用记号笔在皮肤表面做好记号，常用部位是髂后上棘。见图2—41。

图2—41 标记骨穿部位

2.常规消毒皮肤，戴无菌手套、铺消毒洞巾，用注射器抽吸2%普鲁卡因,由医生作局部麻醉直至骨膜。见图2—42

图2—42配合取出注射器

3．穿刺中，密切观察患儿的生命体征，并询问有无不适主诉。4.协助留取骨髓涂片、送检。见图2—43。

图2—43 骨髓涂片 5.术毕拔除针头，局部按压无菌敷料覆盖。见图2—44

图2—44覆盖、按压

6.协助患儿恢复舒适体位，记录患儿生命体征及伤口情况。【评价】 1.穿刺点无菌敷料无渗血、渗液。2.患儿伤口无疼痛。【健康教育】

1.告知患儿术后卧床休息20～30分钟，3天内勿洗浴，保持穿刺点部位清洁、干燥。

2.告知患儿穿刺点避免挤压。3.告知患儿注意保暖，避免受凉 【注意事项】

1.血友病患儿禁行骨穿。

2.穿刺点应避开局部有炎症或畸形的部位。

3.穿刺点无菌敷料如有污染、潮湿应立即换药，穿刺点结痂后可去除敷料。

二．脑脊液标本采集的护理配合

脑脊液标本采集是通过腰椎间隙穿刺抽取脑脊液的方法，是儿科临床常用的检查方法之一，对神经系统疾病的诊断和治疗有重要价值。【目的】

测定脑脊液压力，动力学检查及脑脊液常规、生化、细胞学、免疫学和细菌学等检查。【评估】

1.评估患儿病情、年龄。

2.评估患儿准备穿刺的局部皮肤有无炎症、皮下感染灶

3、评估患儿意识状态及合作能力。3.评估环境是否安全、安静，急救器材、药品是否到位。【计划】

1.护士准备：衣帽整洁，洗手,戴口罩。

2.用物准备 根据患儿的年龄、穿刺的目的，治疗盘内备：2%碘酒、75%酒精、无菌棉球、纱布、1%～2%普鲁卡因、5ml和10ml灭菌注射器、无菌腰椎穿刺包、测压管、无菌手套、贴膜、火柴、清洁试管，需培养时备培养管、酒精灯。见图2—45

图2—45用物准备

2.环境准备：室温调节至22℃—24℃，光线明亮、清洁、安静，摆放物品于恰当的位置。

4.核对医嘱。

5.辨识患儿，向患儿及家属解释腰椎穿刺的目的及过程，取得同意 【实施】

1.协助患儿弯腰取侧卧位，并靠近医生一侧的床沿，双手抱膝，双膝向胸部屈曲，头向前屈，抱成弓形，脊柱与床面保持平行，骨盆与床面要保 持垂直，以增大腰椎间隙利于穿刺。见图2—46。

图2—46 摆放腰穿体位

2.以骼后上棘连线与后正中线的交会处为穿刺点，一般取第3～4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。

3.协助医师常规消毒皮肤，戴无菌手套、铺消毒洞巾，局部麻醉。4.穿刺中，密切观察患儿的生命体征，并询问有无不适主诉。

5.协助测量压力数值。收集脑脊液2ml～5ml送检；如作培养时，无菌操作法留标本。

6.术毕拔除针头，局部按压、无菌敷料覆盖。7.以平车送患儿回病房, 保持平卧位休息。

8.整理物品,记录标本留取的时间，穿刺点局部情况及患儿主诉。【评价】

1.穿刺点无菌敷料无渗血、渗液。2.患儿伤口无疼痛。【健康教育】

1.告知患儿和家长术后平卧4小时～6小时，以免引起术后低颅压头痛。2.指导家长观察穿刺点有无渗血、渗液，敷料情况，发现异常，告知医护人员。

【注意事项】

1.严格无菌操作，术后如果出现头痛且有体温升高者，应排除脑膜炎发生。2.放脑脊液时勿过快，防止脑疝。

3.穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常等症状时，应立即停止操作，并作相应的处理。

第二篇：检验标本采集处理

一﹑临床常用检验项目的标本采集和处理

（一）血常规检验标本

一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：

1.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；

2.应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3.采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后 应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。

（二）红细胞沉降率（血沉，ESR）测定标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：

1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；

2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）； 3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（三）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG、DD）标本

静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8）。采血注意事项：

1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）； 3.应单独1管血；

4.必须准确采血至刻度线2.0ml；

5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块； 6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（四）血型 与 血交叉标本

为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：

1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）； 2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml； 3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。

（五）尿液常规检查标本

１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：

（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；

（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；

（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为:①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐（hydrochloric ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。

２.尿液常规检查标本采集方法：

（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；

（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。

（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。

（六）粪便常规检查标本

1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取； 2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；

3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；

4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；

5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。

6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。

7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

（七）浆膜腔积液检查标本

（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；

（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用 无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。

（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；

（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

（八）临床化学检验标本

临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：

1.多项化学检测一般可采1管血；

2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml； 3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；

4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。

5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。

（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。

（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

（5）实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。

（6）关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）

①离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；

②温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。

③再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。

（7）离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前）(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；(2)分离出的血清或血浆的储存：

①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC 48h以上储藏于－20ºC；

② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；

③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；

④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；

⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。

（九）血气分析标本

血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为： 1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；

2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可； 3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；

4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；

5.标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。

（十）微生物学检验标本

微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项

（1）标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率； 3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

（2）标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。

（3）标本验收

1）实验室只能接受和处理合格标本；

2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联

（4）处理

根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。2．微生物学检验标本采集和处理

（1）尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml 2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；

3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；

4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用； 5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。

（2）粪便标本采集和处理 1）采集时间：

①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；

③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：

① 自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；

②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。

（3）痰及下呼吸道标本采集和处理 1）自然咳痰法：

① 晨痰为佳；

② 先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；

③ 再用力咳出呼吸道深部的痰；

④ 痰量不得少于1ml；

⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。

（4）血液及骨髓培养标本

1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；

2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检； 3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；

4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；

5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；

6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检(5）脑脊液培养标本

1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。2)采集方法：

①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）

（7）胃液及胆汁培养标本

抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。

（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。

（10）泌尿生殖道培养标本

1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。

2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。

4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。

5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。

6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。(11）烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。

（12）厌氧菌感染培养标本 1）标本采集

①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；

②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；

③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。2）标本运送

① 标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；

② 运送方法：

a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送； b含运送培养基的无氧小瓶运送； c厌氧罐运送（组织块）；

d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送； e一般不采用棉拭子法。(13）真菌感染培养标本 1）浅部真菌感染标本采集

① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；

② 指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；

③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。2）深部真菌感染标本采集

① 血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；

② 脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。

（14）病毒感染标本

1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。2)标本采集方法：

① 呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；

②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；

③ 尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；

④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。

3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。

第三篇：检验 标本 采集 手册

检验 标本 采集 手册

吉林大学第一医院检验科 2005 年 11 月

重要警示语

将每一份标本都看作是无法重新获得、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标 1 本，必须小心地：采集、保存、转运。必须小心地：采集、保存、转运。医学实验室都接受 ISO 15189:2003 的认可 CAP 文件分析前程序，ISO/IEC15189 文件定义为：按照时 间顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验程序 时终止检测结果报告发回的步骤，包括：检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前 程序的主体: 大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人 员共同协调，在实验室检测以外的空间完成的。分析前质量管理最易出现问题： 临床反馈不满意的检验结果，60%报告最终可溯源 到标本质量不合要求。可靠的检验结果，第一个环节必须依赖于标本 的高质量。要获得高质量的标本： 临床医生：应主动明确地告之患者如何配合好 护理人员和检验人员：采集好、检测好标本 运输人员：及时快速规范转运好标本 在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回。

一、采集标本前质量保证、对策 2

（一）加强沟通，合理选项 医生应认真、完整地填写检验申请单，讲清每项填写的意。特别是： 患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。

（二）患者准备，至关重要 医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素（药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间）正确指导患者，采取切实措 施，规范采集标本前患者的一切行为，保证采集的标本符合疾病的实际情况，留 取合格的标本。应告之患者：试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报 告时间、如何获得结果。

（三）采集前准备： 条码生成与粘贴 足够合格的采血人员 标准化的采血程序手册 合格的采血器材 1 二.标本基本类别血液.全血、血浆、血清 尿液 便 脑脊液 心包、胸腔和腹腔积液 关节积液 羊水 胃及十二指肠液 前列腺液和精液 痰 其他（包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等）各种穿刺物 3 [血液标本的采集] 一.血液标本基本要求 保持标本完整性：控制各种干扰因素 保持标本新鲜：最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本：高脂肪、溶血、凝固、二.标本采集的时间

（一）随机和急诊标本 随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时而必须采集的血和尿标本，一 般无法让患者进行准备。此类标本主要是门诊、急诊和抢救病人必须做的一些检 查标本，或在体内代谢相对较稳定的检查物质，或受体内外干扰较小的检查物质。凡此类标本在送检时应加以注明，评价检验结果时应注意昼夜节律影响。便于分 析检查结果时参考。

（二）空腹标本 空腹标本一般指进食 8h 后（但不能超过 12h,禁食时间过长可引起部分指标 异常；如补体 C3、转铁蛋白等。）采集的血和尿标本，住院病人多在清晨，此类 标本常用于临床生化定量检查。因为标本是在空腹和安静时采集的，所以受饮食 质、量以及日间生活、生理活动的影响较小。对病人来讲，若多次检查同一项目，也便于比较、对照。测定血肌酑时还应禁肉食 3 天，且不能饮咖啡、茶等。乳糜 血患者检测血脂应素食 3 天后。

（三）指定时间标本 指定时间标本多属功能试验采集的各种标本，因试验目的不同，采集标本的 时间各有不同，必须按试验要求采集，如葡萄糖耐量试验等。三.血液标本检验结果的干扰因素

（一）脂血 血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状，通常称之为脂 血。血清或血浆浑浊本身具有一定的临床意义，实验室报告这一结果，同时血清 浑浊可导致许多指标出现假性升高（如总蛋白）。另处，由于指质可以置换水，经常导致血 K、Na 的的浓度在电极法测定时比火焰光度计法高。脂蛋白可以结 合亲脂成分，降低与抗体的结合，从而干扰免疫检测结果。4

（二）溶血 溶血的标本可以给测定值带来很大的影响，标本溶血后血细胞内含量高的物 质进入到血清可造成结果假性升高，同时溶血可干扰测定中的反应过程及比色，常会导致许多被测指标的浓度假性升高。

（三）黄疸 由于血清总胆红素含量太高干扰许多指标的测定结果。

（四）某些药物的影响 某些药物对测定结果的影响

是不容忽视的。药物的影响主要有（1）药物的 代谢产物对某些试验方法的物理或化学干扰；药物增加一些蛋白质的结合水平，从而影响这些物质的存在方式；药物自身与蛋白质结合。总之，正确全面了解药 物对测定结果的影响对检验医师和临床医师都是十分必要的，这对正确解释检验 结果有帮助的。

（五）巨酶 免疫球蛋白与酶的复合物被称之为巨酶，几存在于所有的诊断酶中，这些结 合可以提高酶的半寿期，从而导致酶的活性升高。最明显的例子就是 CK1 及 CK2，CK1 是 CK-BB 与免疫球蛋白的复合物，CK2 是线粒体 CK 的多聚物，巨 巨 这两种类型的巨 CK 均可使 CK-MB 活性上升。另一个例子是巨淀粉酶，它的显 著特征是使血中淀粉酶活性升高，而尿中淀粉酶则正常。

四、静脉采集基本要求

（一）患者体位 住院患者卧位。从卧位到直立位：则血浆量减少 12%。大多数细胞成分及大 分子物质有 5%-15%升高。不应在输液侧采血：如不可避免，必须注明。否则一 切后果采血者负责。试管准备：按检验条码要求准确备齐各种试管而不能混用

（二）血管选择 应选用较大的血管。血管小：采血时易发生塌陷，引起凝血。不能采到足 够的血量。

（三）注射器 针头外径 1mm。5 针头外径＞1mm 可引起创伤，导致血管碎片入血，促发凝血。针头外径 ＜0.7mm 血液采集时间延长，针头内压力剃度可导致溶血和血小板激活。消毒部位：穿刺处所用消毒液已干

（四）止血带 压脉带控制在 1 min 内。一旦血液入针筒，就应去除。病人握拳：不能一握 一放。抽血过程：应缓慢，不宜过快，将血液沿管壁徐徐注入标本容器，以免产生 大量泡沫或溶血。保证血量：按条码要求选择采血容器颜色。避免抽血不当或血量不足。采血容器的颜色、用途和采血量 头盖颜色 紫色 蓝色 黑色 绿色 红色 黄色 添加剂 EDTA-K2 枸橼酸钠 枸橼酸钠 肝素 分离胶促凝 分离胶促凝 用途 采血量（ml）2.0 2.7 1.8 2.0 4.0 4.0 血常规、HLA-B27、心肌损伤标志物 凝血常规、等凝血试验 血沉 血流变学、D-D、FDP 生化检验 免疫检验

（五）采集多种血液标本的次序： NCCLS 推荐 1.多种血液标本时，采血次序为：血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管/普通血清试管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA 管、葡萄糖 检测管。2.同一患者采集多种试管，采血次序：EDTA 管、其他试管、凝血标本。3.试管混匀：抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂，至少 5 次以上。避免采血损伤和用力转入容器。

（六）抗凝血量

1、血液比例过高——由于抗凝剂相对不足，血浆中出现微血凝块。

2、血液比例过低——抗凝剂相对过剩，对很多检验会造成严重影响。

（七）记录标本信息：标本管上（条码）注明姓名、科别、床号等相关信息。6

（八）标明采血时间 从采血和离心之间的延误可导致试验结果的质量，因此，标明采血时间很重 要。

（九）生物安全 所有采集标本的器皿均应加塞密闭

（十）标本运输和储存 采血完成后，时间耽搁越少，检验结果的可靠性就越高。1.标本运输 温度：在运输到检验科前，标本必须置于室温下，标本转运必须符合储存 条件。ICSH建议：在室温（18～25℃）下，4h完成检测分离血浆和血清：血 细胞与血清或血浆接触＞2h： 血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。同一病人同时有数管血标本送检，应标明采血先后顺序，以便结果不一致 时可进行溯源运输必须平稳。泡沫可使蛋白质变性，血小板激活。试管置于专用试管架和有合适温度的容器转运。2.储存条件： 如不能及时检查，应放在室温、－4℃、－20℃、－80℃冰箱中保存。

（十一）避免标本溶血： 是保证标本质量的重要环节。应将溶血标本弃置并记录，重新采血。标本溶血常见原因：采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入 试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用 消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。肉眼未见溶血，但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时，应 警惕是否发生了非显性溶血。（十

二）血液浓缩原因： 使用压脉带时间过长 进针处按摩、挤压或摸索寻找 长期静脉治疗 7 硬化或阻塞的静脉

（十三）拒收标本标准

1、患者信息不全

2、标签不清，不具备识别系统的唯一性

3、抗凝不当、标本凝固

4、时间延误

5、溶血标本

6、储存温度不当

7、采自输

液管

8、样本外漏、容器破损

9、明显受污染的样本

10、标本量过少

11、标本项目与申请项目不符

12、医嘱作废的标本

13、容器不合格，影响检验结果

（十四）接受标本：必须认真核对标本

1、姓名

2、申请项目

3、标本类型

4、试管和抗凝剂合适性

5、标本是否泄漏或容器损坏

6、标本量是否足够

（十五）治疗药物浓度监测采样时间〕 1 氨基糖苷类抗生素：一般在用药结束后稍晚一点的时间开始，若滴注为 1h，在滴注结束后 10min 取血样，若滴注小于 1h,一般在给药 30 min 取样。

2、卡马西平：达稳态血药浓度时，给下一剂量前立即采样（谷值）。

3、苯巴比妥：由于半衰期长，采样时间不重要，可加固定在同一时间采样，以便比较。

4、丙戊酮：给下一剂量前立即采样（谷值）8

5、地高辛：给药后 8—24 小时。(不管是静脉给药还是口服给药，完成药物 的分布过程需要 8～12h.。

6、茶碱：口吸服后 2～4h。

7、奎尼丁：若每 6h 服药一次，则给药后 6h 左右取血；若每 8h 服药一次，则给药后 5～6h 左右取血。总之，应于下次给药前采血测谷浓度。

8、环孢霉素：服药后 12h。

9、必要时遵照医嘱。〔微生物标本的采集〕一.血液及骨髓(一)采集时间

1、一般原则(1)、病人发热初期或发热高峰.(2)、使用抗菌素前(3)、已经用药者,应在下次用药前 2.、布鲁杆菌感染(1)、最佳时间:发热期(2)、还可多次采血,24 小时抽 3～4 次 3.、沙门菌感染(1)、可在不同时间采集标本（2、)肠热症患者在病程 1～3 周内采集标本 4.、亚急性心内膜炎：除发热期外,应多次采集

5、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内分别在 3 个不同部位抽血样培养。

6、急性败血症：脑膜炎、骨髓炎、关节炎、急性未处理的细菌性肺炎和肾 盂肾炎除在发热期采血外，应在治疗前短时间内在身体不同部位采血，分别作需 氧、厌氧培养。

7、不明原因发热（1）、发热期内多次采血（2）、如果 24 小时培养为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次血样进行 培养。9

8、肺炎链球菌感染：最佳时期为高热、寒战或休克时。

9、分枝杆菌感染：感染初期采血

（二）采集部位及频率

1、急性败血症：24 小时内抽血 3 次或更多，在不同部位如左、右手臂或颈 部采集。

2、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内，在三个不同部位采集血标本

3、亚急性心内膜炎：第一天在身体不同部位取三次标本。如果 24 小时培养 为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次多部位采集血样进行培养。

4、无名热 ：不定期多次、多部位。24 小时内不超过 3 次，如果培养为阴 性结果，应继续采集送检。

（三）标本采集量 成人：10 毫升血液 儿童：3～5 毫升 婴幼儿：1～2 毫升

（四）标本采集注意事项

1、用 75%酒精消毒瓶盖，不用碘酒消毒

2、严格作好抽血部位的无菌操作

3、同时做需氧和厌氧培养时，先将标本注如厌氧瓶中，然后再注如需氧瓶 里。

4、注如标本的培养瓶立即送检，如不能立即送检时，放室温保存，切勿放 冰箱内

5、化验单上注明采血时间

二、尿液标本

（一）采集时间：抗菌素应用之前，晨起第一次尿液

（二）采集方法

1、段尿采集方法：清洗尿道口，排尿弃去前段尿，留取中段尿 10 毫升于无 菌容器中立即送检。

2、集尿法：结核分枝杆菌集菌检查。将 24 小时尿留在一清洁容器中，取沉 渣 10 毫升送检 10

3、尿法：通过导尿管留尿 10 毫升于无菌容器中立即送检

（三）注意事项

1、尿严格进行无菌操作

2、集后立即送检

3、用药之前进行培养

4、液中不得加防腐剂 三.、粪便标本

（一）采集时间

1、泻病人在急性期用药前采集

2、沙门菌感染

（二）集方法

1、自然排便法：自然排便后，挑取有脓血，黏液部位的粪便于无菌容器内 送检。

2、直肠拭子法：不易获得粪便可采用直肠拭子法采集。

（二）注意事项

1、标本新鲜

2、用药前采集

3、腹泻病人在急性期采集

四、痰及上呼吸道标本

（一）标本采集时间

1、用药前清晨痰

2、鼻咽拭子

（二）采集方法

1、自然咳痰法：清晨起床后，清水反复漱口后用力除第一口痰于无菌容器 中立即送检。

2、上呼吸道标本：采用无菌棉拭子

（三）注意事项 标本采集后立即送检，如不能立即送检，放冰箱保存

五、化脓和创伤标本 用药前，无严格时间要求 肠热症在 2 周以后；胃肠炎病人在急性期采集新鲜粪便 11

（一）标本采集

1、开放性感染：标本采集前清创创口，然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深 部分泌物于无菌管中立即送检。

2、闭锁性脓

肿：无菌操作，穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。

（二）注意事项

1、药前采集标本

2、能立即送检标本，放 4℃保存，但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本除 外。

六、穿刺液

（一）脑脊液

1、集时间 怀疑为脑膜炎的病人，在用药前应立即采集脑脊液进行培养

2、集方法 用腰穿方法采集脑脊液 3~5 毫升于无菌管中立即送检

（二）注意事项

1、于细菌检测：收集脑脊液后 15 分钟内送检，脑脊液不可放冰箱保存。

2、于病毒检测：脑脊液标本应放置冰块，在 4℃15 分钟内送检。

3、行腰穿过程中，严格无菌操作

（三）胆汁及穿刺液

1、检测时间：怀疑感染存在，应尽早在用药之前或停止用药后 1～2 天采集 标本

2、采集方法：无菌穿刺抽取标本于无菌管中立即送检，量不少于 1 毫升

七、烧伤标本

（一）、采集时间 早期、深 П 度烧伤溶痂和Ⅲ度焦痂分离期、后期每天采 集烧伤标本于无菌管中立即送检

（二）、采集方法

（三）、注意事项

1、严格无菌操作

2、床前采集标本进行厌氧培养

3、烧伤 12 小时以后进行采集创面标本，可获得阳性结果

八、生殖道标本 用无菌拭子，直接从烧伤创面的脓汁多部位采集 12

（一）标本采集 尿道分泌物、阴道分泌物、宫颈分泌物、宫呛内容物、前列腺按摩液、精液 等严格无菌操作留取于无菌管中立即送检。

（二）注意事项

1、严格无菌操作

2、采取宫颈标本避免触及阴道壁

3、床前采集标本进行厌氧培养 九.组织标本

（一）采集时间

1、浅表皮肤黏膜

2、深部组织

3、尸检标本

（二）采集方法

（三）注意事项

1、严格无菌操作

2、各种活检组织标本，常温下最长保存 24 小时

3、甲醛固定的组织块标本不用于病原微生物分离 附：样本拒收标准

1、样本上无患者条码或条码不符和要求

2、样本外漏、容器破损及明显受污染的样本

3、样本的检验项目申请不适合进行

4、当日重复送样本（血培养除外）使用抗生素之前采用 手术或内窥镜检查是采集 死后迅速采集 无菌操作留取标本于无菌管中立即送检 〔骨髓形态标本的采集〕

一、髓标本的采集是由临床医生采集，应适量不得超过 0.2ml，取材应避免混血。

二、脑脊液标本的采集是由临床医生采集，采集后应立即送检，接到标本后应及 时制作标本。

三、血液涂片的采集（包括血细胞形态检查和疟原虫检查）方法两种： 由临床护士用 BD 管采血，采血后标本应尽快送检，应在 2 小时内制成血涂 片，标本不可放置过久。13 在未制作血涂片前，标本严禁放入冰箱内保存，分院送检的标本应制成血涂 片送检。冬季室外送检的标本应保温，避免标本受冻溶血,如果标本放置时间超过 24 小时（夏季温度高）可拒收标本。〔细胞遗传（染色体）标本的采集〕

一、预约时要求患者采血化验前半个月内尽量避免应用各种药物。

二、到本室采血时要求患者精神尽量放松，因为患者过度紧张时机体释放的血管 紧张素会影响染色体的生长。〔脱落细胞标本的采集〕

一、痰标本： 留取痰标本的方法有自然咯痰、气管穿刺吸取、经支气管镜抽取等，以自然咯痰为主，本应新鲜。应嘱患者用力咳出气管深处真正的呼吸道分泌 物，于干净痰盒内，密封送到细胞室，而勿混入唾液及鼻咽部分泌物。

二、液体标本（胸、腹水、心包液、尿液、脑脊液等）要求新鲜，送实验室应立 即制片，否则细胞自溶退化而破坏，影响诊断。如不能立即制片，可在标本 中加入 40%甲醛溶液以防止细胞自溶。液体标本要求标本量 50-100ml（脑 脊液除外）。

三、乳腺溢液：询问病史，让病人自行或制片人员沿乳腺导管轻轻挤压，将第一 滴溢液去掉，再挤出制片，如有血选择血性乳液，粘片制成薄厚均匀的涂片，马上固定。

四、气管镜刷片、妇科刮片由临床医生涂制。但标本需马上固定。若做液基细胞 按液体标本方法制片。

五、穿刺细胞学：到时本室取标本。〔血尿定位标本的采集〕

一、患者清晨 3 点排尿一次，这次尿不要，然后留取 3 点 6 点全程尿一次。全部 收集在干燥、清洁、无污染的容器内来检验时带来。

二、早 8 点到检验科由血尿定位定提供清洁尿杯分三杯留取新鲜尿液。

三、本室可保存尿液中存在的有形成分形态冰箱温度为 2℃～8℃。〔粪便标本的采集〕 14 粪便标本的采集方法直接影响检验结果的准确性，通常采取自然排出的粪 便：

1、留取新鲜指头大小（5 克）的大便，放入干燥、清洁、无吸水性的容器 内送检。不要混入其它杂物，容器上应贴好标签、条码或注明患者姓名、科别、床号、收集时间及

检测项目。

2、本应选择具有病理意义的便（如浓血、血粘液、水样等选取）应在半小 时内送检，2 小时内检测完毕，否则应 PH 变化及消化酶的影响可使便的细胞成 分破坏分解。最多不应超过 4 小时。

3、无法排便而又必须检查时，可经肛门用肛试子采便。

4、试验应嘱咐患者在收集标本前三天禁食动物性食物，并禁服铁剂和维生 素 C.且连续检查三天，收集后须迅速送检。

5、寒冷时应保持温度，避免冻溶防止有形成分破坏。〔尿标本的采集〕

一、根据不同检验目的。留取晨尿和餐后 2h 尿、12h 尿、24h 尿及随机尿。.尿常规检验通常为：

（一）、新鲜晨尿（这时的尿标本较浓缩和酸化，不受运动及进餐等影响。适用于尿蛋白、尿沉渣、尿亚硝酸盐检验及细菌培养）和随机尿（尿液可 能被稀释或受进餐、药物以及新陈代谢等影响，尿中成分检出情况不尽相同。餐后尿检测易出现糖尿）。

（二）、尿胆原检测以 14：00～16：00 时间段内留取的尿液为好。

（三）、尿液定量检查需要留取 12h 或 24h 的混合尿液，留取时应按规定时 间内排出之尿液装入含有合适防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取 10ml 送检。1、12h 尿：适用于 Addis 计数。试验当日清晨起，除正常饮食外，不得 再饮水，以利尿液浓缩。于晚上留尿开始时，嘱患者排尿并弃去，收集此后 12h 内的全部尿液。2、24h 尿：适用于代谢产物 24h 定量测定或 24h 尿沉渣抗酸杆菌检查。留取要求同 12h 尿。15

二、尿液标本采集应清洁、干燥的一次性容器，应用时贴上条码。避免经血、白带、精液、粪便混入。标本留取后及时送检，以免因光线、细菌滋生造成 化学物质和有形成分的改变和破坏。作细菌检验的标本，在微生物标本采集 注意事项介绍。

三、尿标本的防腐与保存： 冷藏法：4℃冰箱，不得超过 6 小时。但应注意，有些成分如尿酸盐在低 温时会沉淀析出，影响其化学成分的测定；同时，碱性尿液中的 红细胞以及细胞管型即使在冰箱中也会破坏。因此，要根据检测 项目的需要，选择不同的防腐及保存方法。甲苯法：100ML 尿加 0.5ML 甲苯，适用于 24 小时尿液化学检查。〔前列腺标本留取注意事项〕 由临床医师进行，标本少时 1 滴，多时可达 1ml 左右。置洁净载物玻片上，立即送检。以防干涸。〔精液标本的采集〕

一、嘱患者禁止合房七天，留取精液。

二、直接用干燥、防漏、洁净的容器留取。容器不易过大，以免沾留太多。要求 在半小时内保温送检验科。冬天最好放在内衣口袋里。

三、标本采集次数：精子生成的日间变化较大，因此，对于少精症患者不能仅凭 1 次检查结果诊断。一般间隔 1～2 周再检查 1 次，连续检查 2～3 次后再作 判断。

四、避免用避孕套工具留取。影响活动力。

五、必要时在医生指导下留取。〔浆膜腔穿刺液的采集〕由临床医师进行；穿刺必须注意无菌操作，勿使细菌污染穿刺部位及标本。采取量由检验目的按条码要求而定。为防止细胞变性、凝块发生或细菌溶解，应 及时送检及检验。如不能送检，可加适量的枸橼酸钠抗凝剂（蓝色真空管）内，混均后立即送检。如要观察标本有无凝固现象，则不能加抗凝剂。[胃液标本采集] 16 先将晨间空腹残余胃液抽空弃去。然后在 1h 内连续抽出胃液放入同一瓶内。〔脑脊液标本的采集〕

一、本由医通过腰椎穿刺采集。穿刺应顺利，避免将因液混入标本。

二、标本一般收集 3 管，每管 2ml。第 1 管做细菌培养；第 2 管做化学或免疫检 查；第 3 管做常规及细胞计数。

三、标本就及时送检、及时检验。久置可致细胞破坏、变性、自容，糖分解及病 原菌破坏或溶解等影响检验结果。17 患者

1、状态

2、时间 避免剧烈活动、禁食 12h 后作为采血标准。一般生理成分在晨起时都处于较低水平，随着起床和活动增加而逐步 上升，下午较高，入夜休息和睡眠后渐低，晨起前最低。个体日变动差(最高与最低)项目 钠(mmol/L)钾(mmol/L)氯(mmol/L)磷(mmol/L)总蛋白(mmol/L)白蛋白/球蛋白(mmol/L)尿素氮(mmol/L)尿酸(mmol/L)

3、生活环境

4、药物

5、吸烟

6、性别 停服能干扰检查项目的药物，特别是进行脏器功能试验时更为重要 吸烟对检查的影响与吸烟量成正比.对许多检查项目有影响，女性受性期周期影响较大，男女发育阶段也 日变动差 4.8 0.4 3 0.22 0.6 0.3 1.2 0.49 项目 胆固醇(mmol/L)甘油三酯(mmol/L)碱性磷酸酶(King U)丙氨酸氨基转移酶(U/L)3.6 日变动差 0.52 0.33 门冬氨酸

氨基转移酶(U/L)3.9 乳酸脱氢酶(U/L)胆碱酯酶(⊿ph)淀粉酶(somogy U/L)2.7 0.1 17 有一定的差别。

7、年龄 一般是从婴乳儿、儿童、青少年、青壮年、更年期和老年，从生长发 育代谢旺盛至代谢减慢、衰老，各种生物活性物质从活跃到降低，免疫功能 从发育不全到发育完善直致衰老、萎缩，其相关的检查也有相应的变化。18

第四篇：临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

一

血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

二

红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

三

凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。

C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。

四

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

六

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

七

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。

八

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

九

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水

冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。

⑿

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。

脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送检；标本运送可采用注射器（已驱氧）或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。

第五篇：细菌检验标本的采集

细菌检验标本的采集

1、血液和骨髓标本的采集

（1）、急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎和肾盂炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养（应在抗生素治疗前完成），立即送到实验室。

（2）、疑似心内膜炎患者，急性病例，在抗生素治疗或改变前1-2小时，从各个不同部位采血3次做血液培养。

2、脑脊液标本的采集

CSF采集后，置于无菌试管中。15分钟内运送实验室，绝不可冷藏。每种检验需要最小量：细菌培养≥1ml，真菌≥2ml，抗酸杆菌≥2ml。

3、尿标本的采集

（1）、中段尿采集，清洁外阴及尿道口周围（女性瓣开大小阴唇，男性翻开包皮冲洗拭干），自然排尿，让尿流不间停，截留中段尿，置于无菌大口容器或尿运送杯中，不少于1ml。

（2）、滞留尿管集尿，常规是≤2小时送交实验室。

4、下呼吸道标本的标本处理

告诉病人先用冷开水漱口清洗咽喉，咳出痰液，置于无菌广口容器中，常规培养≤2小时送交实验室立即接种。

5、粪便标本的采集

（1）、常规性培养，直接留置粪便标本于清洁、干燥广口容器中或转移至Cary-Blair保存运送。

（2）、直肠拭子，无菌拭子插入肛门2-4cm，在肛门括约肌外柔和地旋拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入Cary-Blair系统管运送。患者不能自行采集。

6、眼、耳、鼻、喉标本的收集

（1）、眼结膜标本，预先沾湿拭子，在结膜上滚动采集标本。标本在15分钟内送达实验室。

（2）、眼角膜标本采集，在麻醉下，用刮留学在溃疡或创伤边缘刮取碎屑，直接接种在培养基平板上培养和涂片。眼部感染所获取的标本量很少，建议医师取样后直接接种于平板上培养和涂片。（3）、口腔咽部标本，先用一个拭子揩去溃疡或创面浅表分泌物，第二个拭子采集溃疡边缘或底部，常规培养≤2小时运送实验室。

（4）、患有外耳炎患者，需要深部耳拭子，因为浅表拭子可能遗漏链球菌引起的蜂窝织炎。

（5）、鼻标本留取，用一根无菌棉拭子，伸进侧鼻孔约2.5cm，下鼻黏膜接触，轻轻地旋转拭子，蘸取黏膜上分泌物，缓慢抽出。置于运送培养基或将拭子直接送检。

7、脓液标本的采集

（1）、开放脓肿，用无菌盐水或70%乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡基底或边缘部，采集二个拭子，分别做培养和革兰染色。

（2）、闭锁脓肿用注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。

8、生殖系统标本的采集

阴道、子宫颈陷凹、子宫内膜、生殖道创伤、前庭大腺、羊水膜及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。淋病奈瑟菌检查时，不论男女尿道及子宫均需用拭子插入尿道及子宫3cm深取样送检，要避免受阴道分泌物污染拭子。

9、抗凝血检验标本的采集

（1）、血常规（血液分析）标本的采集

清除患者恐惧心理，EDTA-K2专用抗凝管，顺畅采静脉血1ml，立即颠倒混匀8次，及时送检（＜2小时出结果）。

（2）、凝血试验（如血凝四项、D-二聚体）

0.109ml/L枸橼酸钠与血液1:9比例抗凝，用专用真空采血管，采静脉血至2ml，立即颠倒混匀8次，及时送检，＜2小时出结果。采血时尽可能缩短止血带使用时间，不要用力拍打血管，避免产生气泡，采血不顺畅要重抽。

（3）、血沉（红细胞沉降率）标本的采集

0.109ml/L枸橼酸钠抗凝剂与血液1:4比例抗凝（比例要准确），颠倒混匀8次，及时送检，采血后＜3小时内测定。

（4）、糖化血红蛋白标本的采集

EDTA-K2抗凝管，静脉血2ml，颠倒混匀8次，及时送检。（5）、血气分析标本的采集

向病人解释动脉采血目的和方法，消除其恐惧心理，常规消毒皮肤（直径5-7cm），注射器抽吸肝素0.5ml湿润注射器内壁（余液全部弃去），以最快速度抽取鲜红动脉血液3-5ml，将注射器针头斜面刺入软木塞内（隔绝空气），将标本连同化验单及时送检。

（6）、脑利钠肽（brain natriuretic peptide）

BNP采用EDTA抗凝（建议用塑料材料的样品试管），抽静脉血2ml，颠倒混匀8次，立即送检，4小时出结果或及时分离血浆放-20c可保存两天。

10、临床体液常规检验标本采集（1）、尿液标本的采集和处理

1）尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。还应注意避免烟灰、手纸等异物混入。

2）、标本留取后，应及时送验，以免细菌繁殖、细胞溶解等。3）、标本送验时应注意避光。

4）、尿液常规筛查尽量不要使用防腐剂，在标本收集后2小时之内送检。5）、标本需防腐时（24小时定量）

①甲醛，每100ml尿加入400g/l甲醛0.5ml，用于管型、细胞检查。②甲苯，每100ml尿加入甲苯0.5ml，用于尿糖、尿蛋白的防腐。（2）、粪便检查

1）、一般检验留取指头大小（约5g）新鲜粪便即可，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内送检，标本容器最好用内层涂脂的硬纸盒。

2）、检查蛲虫卵需要用软黏透明纸试子，在清晨排便前由肛门四周试取标本，也可用棉试子试取，但均须立即镜检。

3）、检查阿米巴滋养体，应于排便后迅速送检，立即检查。冬季需采取保温措施。4）、一般检验不应采取尿壶或便盆中的粪便标本。（3）、脑脊液检查

标本收集后应立即送检，不能超过1小时。将CSF分别收集于三个无菌试管（或小瓶）中，每管1-2ml；第一管做细菌培养，必须留于无菌小试管中；第二管做化学或免疫学检查；第三管做一般性状检查和显微镜检查。

（4）、浆膜腔积液检查

1）、由穿刺取得的标本为防止细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时。

2）、为防止凝固，最好加入100g/L乙二胺四乙酸二钠或二钾（EDTA钠盐或钾盐）抗凝，每0.1ml可抗凝6ml浆膜腔积液，及时完成细胞涂片检查。3）、PH测定应用肝素抗凝专用采样器。（5）、滑膜液检查

微生物培养应置于灭菌消毒试管，显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每毫升约用肝素钠25单位，血液标本应与滑膜液标本在同一时间内收集。收集后立即送检。

（6）、精液检查

1）、在3个月内检查2次至数次，二次之间间隔应＞7天，但不超过3周。2）、采样前至少禁欲3天，但不超过7天。3）、采样后1小时内送到检验科。

4）、用清洁干燥广口塑料或玻璃小瓶收集精液，不宜采用避孕套内的精液。5）、应将射精精液全部送验（冬天注意保温）。6）、尽可能用手淫法。（7）、前列腺液标本收集

临床医师作前列腺按摩术后，采集标本于清洁玻片上，立即送检，培养标本按细菌标本处理。

（8）、阴道分泌物标本采集

1）、取阴道分泌物、用生理盐水涂片。

2）、滴虫检查，在寒冷天，标本要采取保温措施，立即送检（培养标本按细菌检验标本处理）。