细菌标本采集规范（5篇材料）

第一篇：细菌标本采集规范

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求

正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果，给临床以误导，延误对患者的正确治疗。为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。

一、血液细菌培养标本的采集和处理

临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。

1．采集方法：静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。

2.采血时间以及血培养份数：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本，可使细菌检出率高达99%。对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2～3份血液标本培养。

（2）可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养，如果24小时后阴性，再采集两份血标本培养。

（3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24～36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。因为1次血培养不足以说明问题，可能会遗漏阳性结果。

（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时；应改变血培养方法，以获得罕见或苛养的微生物。

（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需马上做抗菌治疗；或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。3.采血部位：采血部位通常为肘静脉。疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。要避免从血管插管内取血，因插管常被污染，其培养结果不能反映真实情况。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。采血时要求严格无菌操作，防止皮肤正常菌群污染。

4.采血量：采血量与血培养的检出率相关，所以采血量一定要足够。成人一般为8～10ml/瓶，新生儿与婴幼儿为1～5 ml/瓶，骨髓采血量为1～2ml/瓶。5.标本运送与保存：含血样的培养瓶应立即送往实验室；不能及时送检的标本，应将其放在室温，切忌冰箱存放，因为某些苛养菌可在低温环境中死亡，而使培养阳性率下降。

二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取和处理

下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但痰标本的质量往往难以保证，造成病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，直接影响抗菌药物的应用、甚至耐药菌的出现或流行。痰标本的细菌学检验地带网检查应注意如下几个问题。

1.标本的采集：痰液标本最好在应用抗菌药物之前采集，以深咳晨痰最好，主要有自然咳痰法、支气管镜采集法、胃内采痰法、小儿采痰法和气管穿刺法等。

(1)自然咳痰法：为最常用的采集痰液方法。留取标本前，嘱咐患者用清水漱口数次，然后将痰吐入无菌带盖的痰杯中。对无痰或少痰的患者可采用雾化吸入加温至45℃的10%NaCl水溶液，使痰液易于排出。对咳痰少的幼儿，可轻压胸骨上部的气管，促进痰液的排出。

(2)气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行操作，主要用于厌氧培养。

(3)支气管镜采集法：用气管镜在肺部病灶附近用导管吸引或者用支气管刷直接取材，患者不易接受，故不常用。

(4)胃内采痰法：无自觉症状的肺结核患者（尤其婴幼儿）不会咳嗽，有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分枝杆菌培养。清晨空腹时将胃管插入患者胃内抽取胃液送检。

(5)小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿收到刺激咳嗽时，可咳出肺部或气管分泌物粘在拭子上。

2.标本的运送与保存：痰液标本采集后应立即送检，以防止某些细菌在外环境中死亡。做结核分枝杆菌和真菌培养的标本不能及时送检时，可放4℃保存，以免杂菌生长。

三、尿液细菌培养标本的采集和处理 尿液的细菌培养检查对于膀胱和肾脏感染的及早发现和病原学诊断很有价值。对于尿道、前列腺以及内、外生殖器炎症的诊断也有一定价值。

1.标本收集时间：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5 d之后留取尿液标本；尿液在膀胱内应停留6～8h以上，使细菌有足够时间繁殖。最好留取早晨清洁中段尿标本。2.标本收集方法：

(1)清洁排尿法：女患者首先用肥皂水或碘伏清洗会阴部及尿道口，再用清水冲洗，擦干并排出前段尿液后，用无菌容器接取中段尿10～20ml；男患者应翻转包皮冲洗，用碘伏消毒尿道口；婴儿消毒其阴部后，将无菌小瓶直接对准尿道口接取尿液；均加盖立即送检。

(2)膀胱穿刺法：为避免尿道正常菌群的污染，收集尿液最好的方法是膀胱穿刺。尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器在耻检验地带网骨联合距脐1/3处穿刺。膀胱穿刺的适应症有：①有尿道感染的临床症状，但中段尿培养细菌数很低，而又难以确定感染源者。②婴幼儿、新生儿、不能用导管者。③怀疑有厌氧菌感染时。(3)肾盂尿采集法：若取左右两侧肾盂尿，应请泌尿科医生采取，左右侧的标本要标记明确，以免出现错误。

(4)对用封闭式引流装置的留置导尿患者留取尿液标本培养时，用适当的消毒剂严格消毒引流管和导尿管连接处的管壁，用装有21号针头的注射器穿刺导尿管壁吸取尿液。不可打开导尿管和引流管连接处收集标本，培养用的尿液标本也不能从引流袋中留取。

(5)膀胱镜检查、输尿管插管或逆行肾盂造影时，收集的尿液可用来做细菌培养。(6)做病毒学检测时用容器收集清洁的标本即可，不需特殊方法收集。标本中加入抗生素可抑制细菌的过度生长，且标本需冷藏。

3.标本的运送和保存：尿液标本采集后应立即送检、及时接种，室温下保存时间不能超过2小时，4℃冷藏时间不能超过8小时，否则尿液细菌迅速繁殖，使尿中细菌计数不准确。但疑为淋病奈瑟菌感染患者的标本不能冷藏保存。

四、粪便标本微生物学检查的质量要求

1.采集方法：粪便标本多采用自认排便法，特殊情况下可采用直肠拭子法。（1）自然排便法：患者用药前自然排便后，采集有脓血、黏液部分粪便2～3克；外观无异常的粪便应从粪便不同部位取材；液体粪便取絮状物，盛于无菌容器或保存液中送检。（2）直肠拭子法：对于不易获得粪便或排便困难的患者，可采用直肠拭子法采集。将拭子前端用无菌甘油或盐水湿润，然后插入肛门约4～5cm（幼儿2～3cm）处，轻轻在直肠内旋转，擦去直肠表面黏液后取出，盛入无菌试管或保存液中送检。

2.标本保存和运送：粪便标本应立即送检；如不能立即送检，放入Cary-Blair运送培养基或pH7.0的磷酸盐甘油（0.033mol/L PBS与等体积的甘油混合）中运送和保存。标本置密封好的小瓶中，记录姓名、日期、标本号、及时送检，一般不长于2小时。

五、生殖道标本的采集和处理 1.男性标本：

(1)如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗龟头部后，以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取放入无菌试管中，立即送检，或以专用的细拭子插入尿道口2～3cm，旋转采取。(2)如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺，以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。2.女性标本：

(1)成年妇女自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下，选取有炎症或分泌物部位，先以无菌棉拭子拭去表浅层分泌物，再用另一拭子取分泌物放入无菌试管中立即送检。如做厌氧或真菌培养应另外采取标本。

(2)如未成年幼女疑患性传播疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物放入无菌试管中立即送检。

六、胸腹水、脑脊液标本的采集

1.采集方法：（1）脑脊液多由临床医生采集，通过腰穿法无菌操作采集脑脊液3～5ml，盛于无菌试管或培养瓶中。

（2）胸腹水均由医师以无菌手续穿刺取3～5ml，必须应用带盖的无菌容器，立即送检。

2.标本运送与保存：收集到的脑脊液标本应立即送检，15分钟内送到实验室，同时注意保温，不可置于冰箱保存，否则会使一些细菌死亡（如脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌和嗜血杆菌），影响细菌的检出率。

七、对不合格标本的处理

微生物室对于下列标本收集不符合规定的标本将予拒收，并通知临床，按标本要求复送：

1.申请单项目与标本不符。

2.申请单姓名、科别、床号与标本的标签不符。3.标本已有明显的污染迹象(如开塞)。4.标本量过少或已明显干燥。

5.尿培养应留样于无菌试管或带盖无菌杯中。（不合格标本大部分是因为留在尿常规杯中）。尿培养标本不合格者，多以污染而致三种以上杂菌生长居多。特别需杜绝的是一些患者见无菌容器太小直接留取中段尿有难度，于是把小便拉在痰盂等大容器中，再把小便倒在无菌容器中送检。

6.痰培养应留样于带盖无菌痰杯中。（不合格标本大部分是因为留在尿常规杯中）。痰培养标本不合格者，多以口水居多或口腔污染严重。挑取痰标本直接涂片镜检，WBC＜10/LP，上皮细胞＞25/LP不适合做细菌培养。

7.大便培养标本不合格者，多以送检时间过长导致标本干燥无法培养，故大便标本须及时送检（1小时内，最好在上班时间直接送细菌室检验）。

第二篇：细菌标本采集规范

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求

正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果，给临床以误导，延误对患者的正确治疗。为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。

一、血液细菌培养标本的采集和处理

临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。

1.采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。

2.采血次数及间隔：在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需马上做抗菌治疗；或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。对感染性心内膜炎患者，建议在24h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。对发热原因不明者两次抽血间隔60 min；必要时于24～48h后再抽血2次。因为1次血培养不足以说明问题，可能会遗漏阳性结果。

3.采血部位：多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。要避免从血管插管内取血，因插管常被污染，其培养结果不能反映真实情况。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。

4.采血量：采血量与血培养的检出率相关，所以采血量一定要足够。成人一般为10ml，新生儿与婴幼儿为1～2 ml。

二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取和处理

下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但痰标本的质量往往难以保证，造成病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，直接影响抗菌药物的应用、甚至耐药菌的出现或流行。痰标本的细菌学检验地带网检查应注意如下几个问题。

1.标本的采取：自然咳痰：要求患者清晨留取，留取标本前用清水漱口3次，之后用力咳出。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻叩胸骨柄上方以诱发咳痰。

2.气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师 进行操作。

3.纤维支气管镜抽吸：通常用于在给患者行纤维支气管镜检查时顺便抽取。

4.胃液抽取法：多用于可疑患有肺结核的患者在有可能将痰液咽下的情况时采用。

5.标本的运送：标本采集后应立即送检，以避免杂菌过度生长。

三、尿液细菌培养标本的采集和处理

尿液的细菌培养检查对于膀胱和肾脏感染的及早发现和病原学诊断很有价值。对于尿道、前列腺以及内、外生殖器炎症的诊断也有一定价值。

1.标本收集时间：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5 d之后留取尿液标本；尿液在膀胱内应停留6～8h以上，使细菌有足够时间繁殖。

2.标本收集方法：

(1)清洁排尿法：女患者以手指将阴唇分开，用肥皂水或碘伏清洗外阴，然后以清水冲洗尿道口周围，擦干并排出前段尿液后，用无菌容器接取中段尿；男患者应翻转包皮冲洗，用碘伏消毒尿道口；婴儿消毒其阴部后，将无菌小瓶直接对准尿道口排尿后立即送检。

(2)膀胱穿刺法：为避免尿道正常菌群的污染，收集尿液最好的方法是膀胱穿刺。尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器在耻检验地带网骨联合距脐1/3处穿刺。膀胱穿刺的适应症有：①有尿道感染的临床症状，但中段尿培养细菌数很低，而又难以确定感染源者。②婴幼儿、新生儿、不能用导管者。③怀疑有厌氧菌感染时。

(3)肾盂尿采集法：若取左右两侧肾盂尿，应请泌尿科医生采取，左右侧的标本要标记明确，以免出现错误。

(4)对用封闭式引流装置的留置导尿患者留取尿液标本培养时，用适当的消毒剂严格消毒引流管和导尿管连接处的管壁，用装有21号针头的注射器穿刺导尿管壁吸取尿液。不可打开导尿管和引流管连接处收集标本，培养用的尿液标本也不能从引流袋中留取。(5)膀胱镜检查、输尿管插管或逆行肾盂造影时，收集的尿液可用来做细菌培养。

(6)做病毒学检测时用容器收集清洁的标本即可，不需特殊方法收集。标本中加入抗生素可抑制细菌的过度生长，且标本需冷藏。

2.标本的运送和保存：用无菌带螺帽的容器盛标本，标本应在1 h之内送检，超过2 h者应重送，否则易致假阳性结果。

四、粪便标本微生物学检查的质量要求

1.标本采集：粪便标本应在发病早期并且尽量在用抗生素治疗前采集，直接用棉拭子，也可用直肠拭子，置小瓶中送检。

2.显微镜检查：粪便直接涂片革兰染色，可作为艰难梭菌、弧菌、弯曲菌、葡萄球菌、白色念珠菌等初步筛查，盐水滴片用作肠道寄生虫检查。

3.标本保存和运送：标本置密封好的小瓶中，记录姓名、日期、标本号、及时送检，一般不长于2小时。

五、生殖道标本的采集和处理 1.男性标本：

(1)如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗龟头部后，以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取，立即送检，或以专用的细拭子插入尿道口1～2cm，旋转采取。

(2)如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺，以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。

2.女性标本：

(1)成年妇女自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下，选取有炎症或分泌物部位，先以无菌棉拭子拭去表浅层分泌物，再用另一拭子取分泌物送检。如做厌氧或真菌培养应另外采取标本。

(2)如未成年幼女疑患性传播疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物送检。

六、胸腹水、脑脊液标本的采集

均由医师以无菌手续穿刺取得，必须应用带盖的无菌容器，立即送检。

七、对不合格标本的处理

微生物室对于下列标本收集不符合规定的标本将予拒收，并通知临床，按标本要求复送：

1.申请单项目与标本不符。

2.申请单姓名、科别、床号与标本的标签不符。3.标本已有明显的污染迹象(如开塞)。

4.标本量过少或已明显干燥。

第三篇：细菌检验标本的采集

细菌检验标本的采集

1、血液和骨髓标本的采集

（1）、急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎和肾盂炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养（应在抗生素治疗前完成），立即送到实验室。

（2）、疑似心内膜炎患者，急性病例，在抗生素治疗或改变前1-2小时，从各个不同部位采血3次做血液培养。

2、脑脊液标本的采集

CSF采集后，置于无菌试管中。15分钟内运送实验室，绝不可冷藏。每种检验需要最小量：细菌培养≥1ml，真菌≥2ml，抗酸杆菌≥2ml。

3、尿标本的采集

（1）、中段尿采集，清洁外阴及尿道口周围（女性瓣开大小阴唇，男性翻开包皮冲洗拭干），自然排尿，让尿流不间停，截留中段尿，置于无菌大口容器或尿运送杯中，不少于1ml。

（2）、滞留尿管集尿，常规是≤2小时送交实验室。

4、下呼吸道标本的标本处理

告诉病人先用冷开水漱口清洗咽喉，咳出痰液，置于无菌广口容器中，常规培养≤2小时送交实验室立即接种。

5、粪便标本的采集

（1）、常规性培养，直接留置粪便标本于清洁、干燥广口容器中或转移至Cary-Blair保存运送。

（2）、直肠拭子，无菌拭子插入肛门2-4cm，在肛门括约肌外柔和地旋拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入Cary-Blair系统管运送。患者不能自行采集。

6、眼、耳、鼻、喉标本的收集

（1）、眼结膜标本，预先沾湿拭子，在结膜上滚动采集标本。标本在15分钟内送达实验室。

（2）、眼角膜标本采集，在麻醉下，用刮留学在溃疡或创伤边缘刮取碎屑，直接接种在培养基平板上培养和涂片。眼部感染所获取的标本量很少，建议医师取样后直接接种于平板上培养和涂片。（3）、口腔咽部标本，先用一个拭子揩去溃疡或创面浅表分泌物，第二个拭子采集溃疡边缘或底部，常规培养≤2小时运送实验室。

（4）、患有外耳炎患者，需要深部耳拭子，因为浅表拭子可能遗漏链球菌引起的蜂窝织炎。

（5）、鼻标本留取，用一根无菌棉拭子，伸进侧鼻孔约2.5cm，下鼻黏膜接触，轻轻地旋转拭子，蘸取黏膜上分泌物，缓慢抽出。置于运送培养基或将拭子直接送检。

7、脓液标本的采集

（1）、开放脓肿，用无菌盐水或70%乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡基底或边缘部，采集二个拭子，分别做培养和革兰染色。

（2）、闭锁脓肿用注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。

8、生殖系统标本的采集

阴道、子宫颈陷凹、子宫内膜、生殖道创伤、前庭大腺、羊水膜及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。淋病奈瑟菌检查时，不论男女尿道及子宫均需用拭子插入尿道及子宫3cm深取样送检，要避免受阴道分泌物污染拭子。

9、抗凝血检验标本的采集

（1）、血常规（血液分析）标本的采集

清除患者恐惧心理，EDTA-K2专用抗凝管，顺畅采静脉血1ml，立即颠倒混匀8次，及时送检（＜2小时出结果）。

（2）、凝血试验（如血凝四项、D-二聚体）

0.109ml/L枸橼酸钠与血液1:9比例抗凝，用专用真空采血管，采静脉血至2ml，立即颠倒混匀8次，及时送检，＜2小时出结果。采血时尽可能缩短止血带使用时间，不要用力拍打血管，避免产生气泡，采血不顺畅要重抽。

（3）、血沉（红细胞沉降率）标本的采集

0.109ml/L枸橼酸钠抗凝剂与血液1:4比例抗凝（比例要准确），颠倒混匀8次，及时送检，采血后＜3小时内测定。

（4）、糖化血红蛋白标本的采集

EDTA-K2抗凝管，静脉血2ml，颠倒混匀8次，及时送检。（5）、血气分析标本的采集

向病人解释动脉采血目的和方法，消除其恐惧心理，常规消毒皮肤（直径5-7cm），注射器抽吸肝素0.5ml湿润注射器内壁（余液全部弃去），以最快速度抽取鲜红动脉血液3-5ml，将注射器针头斜面刺入软木塞内（隔绝空气），将标本连同化验单及时送检。

（6）、脑利钠肽（brain natriuretic peptide）

BNP采用EDTA抗凝（建议用塑料材料的样品试管），抽静脉血2ml，颠倒混匀8次，立即送检，4小时出结果或及时分离血浆放-20c可保存两天。

10、临床体液常规检验标本采集（1）、尿液标本的采集和处理

1）尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。还应注意避免烟灰、手纸等异物混入。

2）、标本留取后，应及时送验，以免细菌繁殖、细胞溶解等。3）、标本送验时应注意避光。

4）、尿液常规筛查尽量不要使用防腐剂，在标本收集后2小时之内送检。5）、标本需防腐时（24小时定量）

①甲醛，每100ml尿加入400g/l甲醛0.5ml，用于管型、细胞检查。②甲苯，每100ml尿加入甲苯0.5ml，用于尿糖、尿蛋白的防腐。（2）、粪便检查

1）、一般检验留取指头大小（约5g）新鲜粪便即可，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内送检，标本容器最好用内层涂脂的硬纸盒。

2）、检查蛲虫卵需要用软黏透明纸试子，在清晨排便前由肛门四周试取标本，也可用棉试子试取，但均须立即镜检。

3）、检查阿米巴滋养体，应于排便后迅速送检，立即检查。冬季需采取保温措施。4）、一般检验不应采取尿壶或便盆中的粪便标本。（3）、脑脊液检查

标本收集后应立即送检，不能超过1小时。将CSF分别收集于三个无菌试管（或小瓶）中，每管1-2ml；第一管做细菌培养，必须留于无菌小试管中；第二管做化学或免疫学检查；第三管做一般性状检查和显微镜检查。

（4）、浆膜腔积液检查

1）、由穿刺取得的标本为防止细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时。

2）、为防止凝固，最好加入100g/L乙二胺四乙酸二钠或二钾（EDTA钠盐或钾盐）抗凝，每0.1ml可抗凝6ml浆膜腔积液，及时完成细胞涂片检查。3）、PH测定应用肝素抗凝专用采样器。（5）、滑膜液检查

微生物培养应置于灭菌消毒试管，显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每毫升约用肝素钠25单位，血液标本应与滑膜液标本在同一时间内收集。收集后立即送检。

（6）、精液检查

1）、在3个月内检查2次至数次，二次之间间隔应＞7天，但不超过3周。2）、采样前至少禁欲3天，但不超过7天。3）、采样后1小时内送到检验科。

4）、用清洁干燥广口塑料或玻璃小瓶收集精液，不宜采用避孕套内的精液。5）、应将射精精液全部送验（冬天注意保温）。6）、尽可能用手淫法。（7）、前列腺液标本收集

临床医师作前列腺按摩术后，采集标本于清洁玻片上，立即送检，培养标本按细菌标本处理。

（8）、阴道分泌物标本采集

1）、取阴道分泌物、用生理盐水涂片。

2）、滴虫检查，在寒冷天，标本要采取保温措施，立即送检（培养标本按细菌检验标本处理）。

第四篇：临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

一

血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

二

红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

三

凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。

C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。

四

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

六

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

七

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。

八

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

九

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水

冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。

⑿

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。

脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送检；标本运送可采用注射器（已驱氧）或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。

第五篇：住院病人血标本采集规范

住院病人血标本采集规范

一、标本的采集基本原则

1、遵照医嘱采集血标本

2、做好充分的准备：患者的准备；用物准备；护士自身准备

3、严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住院号

4、正确采集：方法、时间、采血量、采血容器

5、采集后标本及时送检

6、血标本必须满足检测结果正确性的各项要求。

7、检测结果必须能真实、客观地反映患者当前病情。因此应尽可能避免一些干扰因素，这些干扰因素存在时，一是影响检测结果的正确性，二是检验结果并不真实反映患者当前病情。所以“用不符合质量要求的标本进行检验，不如不进行这项检验”应该成为牢记的座右铭！

二、血液标本的采集

临床血液检验，因检验方法和目的不同，所需的血量亦不同，因而血液采集的方法也不一样，最多用的有毛细血管采血法、静脉采血法和动脉采血法三种。1.毛细血管采血法：

(1)采血部位：成人可从手指、后耳垂采血，婴幼儿则可在足跟等处。因耳垂部位的血液循环比手指差，且容易受外界气温影响，采血条件也不及手指恒定，血细胞数和血红蛋白含量都高于静脉血和指血，故一般不主张用耳垂血做血常规检查。世界卫生组织(WHO)推荐取左手无名指指端内侧血液做血常规检验。

(2)采血方法：先用75%乙醇棉球消毒局部皮肤，待干后用左手拇指和食指固定采血部位，右手持采血针迅速穿刺组织约3mm，待血液自行流出后，用消毒干棉球擦去第1滴血，如出血不畅，可在针刺四周稍稍加压(切记用力挤压，以免组织液混入影响检验结果)。以后流出的血液用血红蛋白吸管吸取所需量血液做检验用。采血顺序依次为血小板计数、红细胞计数、血红蛋白检验、白细胞计数和血型等。2.静脉采血法：血沉、红细胞比积、生化、免疫、血液细菌培养等检查需血量较多，可采用静脉血。、（1)采血部位：一般采用肘窝或肘前静脉，如肘部静脉不明显，可改用手背静脉或下肢踝部静脉，必要时也可从股静脉采血。小儿在必要时可用颈外静脉，但因危险，以少用为宜。(2)采血方法：

采血前护士服装整洁，仪表端庄，语言柔和恰当。核对医嘱，患者信息，询问是否按要求进食等，告知患者操作方法，目的，指导配合。评估患者采血部位皮肤，血管情况，意识状态评估，合作程度。

采血时护士洗手，备齐用物，再次核对医嘱和患者信息是否准确。协助患者取舒适卧位，在穿刺点上方6cm以上绑扎止血带，从穿刺中心到周围进行环状消毒，直径大于5cm，消毒两遍。自然干燥后绷紧皮肤，斜面向上，以30°角进针，争取一次穿刺成功接采血试管。先采抗凝管，再采普通管。混匀时需手法轻柔，不可震荡。拔针后用无菌敷贴按压针眼3-5分钟，不要揉搓。

采血完毕后，核对医嘱和标签是否匹配，按垃圾分类处理用物，洗手，记录，签字。按医院规定，及时送检。(3)注意事项：

1）严格执行查对制度，要注意核对患者床号、姓名、住院号、采血试管的编号与化验单的编号及采血项目。

2）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁、淤血时间过长、穿刺不顺利，组织损伤过多、抽血速度太快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。3）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。

4）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血，若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。

5）采血体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般直立位采血，一般比卧位高5%-15%.因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。6)采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。7）采血结束后，立即用消毒干棉签按压穿刺部位，需在针眼及向上1～2 cm处纵向按压3～5 min止血，不能搓揉，以防止造成皮下血肿，24 h内保持穿刺手臂清洁干燥。若有出血倾向，更要延长按压时间，若局部已经出现清淤，24 h后可用热毛巾湿敷，以促进淤血吸收。

8）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。

3、动脉采血法：

桡动脉穿刺、肱动脉、股动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60°角刺入，血液将自动进入注射器内。

4、真空采血法

双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的的污染，并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采血采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和试验用途。可根据需要选择相应的盛血试管。