检验标本采集处理

第一篇：检验标本采集处理

一﹑临床常用检验项目的标本采集和处理

（一）血常规检验标本

一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：

1.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；

2.应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3.采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后 应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。

（二）红细胞沉降率（血沉，ESR）测定标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：

1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；

2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）； 3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（三）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG、DD）标本

静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8）。采血注意事项：

1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）； 3.应单独1管血；

4.必须准确采血至刻度线2.0ml；

5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块； 6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（四）血型 与 血交叉标本

为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：

1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）； 2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml； 3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。

（五）尿液常规检查标本

１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：

（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；

（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；

（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为:①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐（hydrochloric ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。

２.尿液常规检查标本采集方法：

（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；

（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。

（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。

（六）粪便常规检查标本

1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取； 2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；

3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；

4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；

5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。

6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。

7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

（七）浆膜腔积液检查标本

（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；

（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用 无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。

（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；

（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

（八）临床化学检验标本

临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：

1.多项化学检测一般可采1管血；

2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml； 3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；

4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。

5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。

（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。

（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

（5）实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。

（6）关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）

①离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；

②温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。

③再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。

（7）离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前）(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；(2)分离出的血清或血浆的储存：

①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC 48h以上储藏于－20ºC；

② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；

③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；

④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；

⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。

（九）血气分析标本

血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为： 1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；

2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可； 3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；

4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；

5.标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。

（十）微生物学检验标本

微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项

（1）标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率； 3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

（2）标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。

（3）标本验收

1）实验室只能接受和处理合格标本；

2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联

（4）处理

根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。2．微生物学检验标本采集和处理

（1）尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml 2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；

3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；

4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用； 5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。

（2）粪便标本采集和处理 1）采集时间：

①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；

③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：

① 自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；

②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。

（3）痰及下呼吸道标本采集和处理 1）自然咳痰法：

① 晨痰为佳；

② 先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；

③ 再用力咳出呼吸道深部的痰；

④ 痰量不得少于1ml；

⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。

（4）血液及骨髓培养标本

1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；

2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检； 3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；

4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；

5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；

6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检(5）脑脊液培养标本

1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。2)采集方法：

①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）

（7）胃液及胆汁培养标本

抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。

（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。

（10）泌尿生殖道培养标本

1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。

2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。

4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。

5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。

6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。(11）烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。

（12）厌氧菌感染培养标本 1）标本采集

①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；

②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；

③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。2）标本运送

① 标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；

② 运送方法：

a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送； b含运送培养基的无氧小瓶运送； c厌氧罐运送（组织块）；

d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送； e一般不采用棉拭子法。(13）真菌感染培养标本 1）浅部真菌感染标本采集

① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；

② 指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；

③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。2）深部真菌感染标本采集

① 血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；

② 脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。

（14）病毒感染标本

1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。2)标本采集方法：

① 呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；

②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；

③ 尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；

④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。

3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。

第二篇：检验 标本 采集 手册

检验 标本 采集 手册

吉林大学第一医院检验科 2005 年 11 月

重要警示语

将每一份标本都看作是无法重新获得、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标 1 本，必须小心地：采集、保存、转运。必须小心地：采集、保存、转运。医学实验室都接受 ISO 15189:2003 的认可 CAP 文件分析前程序，ISO/IEC15189 文件定义为：按照时 间顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验程序 时终止检测结果报告发回的步骤，包括：检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前 程序的主体: 大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人 员共同协调，在实验室检测以外的空间完成的。分析前质量管理最易出现问题： 临床反馈不满意的检验结果，60%报告最终可溯源 到标本质量不合要求。可靠的检验结果，第一个环节必须依赖于标本 的高质量。要获得高质量的标本： 临床医生：应主动明确地告之患者如何配合好 护理人员和检验人员：采集好、检测好标本 运输人员：及时快速规范转运好标本 在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回。

一、采集标本前质量保证、对策 2

（一）加强沟通，合理选项 医生应认真、完整地填写检验申请单，讲清每项填写的意。特别是： 患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。

（二）患者准备，至关重要 医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素（药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间）正确指导患者，采取切实措 施，规范采集标本前患者的一切行为，保证采集的标本符合疾病的实际情况，留 取合格的标本。应告之患者：试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报 告时间、如何获得结果。

（三）采集前准备： 条码生成与粘贴 足够合格的采血人员 标准化的采血程序手册 合格的采血器材 1 二.标本基本类别血液.全血、血浆、血清 尿液 便 脑脊液 心包、胸腔和腹腔积液 关节积液 羊水 胃及十二指肠液 前列腺液和精液 痰 其他（包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等）各种穿刺物 3 [血液标本的采集] 一.血液标本基本要求 保持标本完整性：控制各种干扰因素 保持标本新鲜：最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本：高脂肪、溶血、凝固、二.标本采集的时间

（一）随机和急诊标本 随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时而必须采集的血和尿标本，一 般无法让患者进行准备。此类标本主要是门诊、急诊和抢救病人必须做的一些检 查标本，或在体内代谢相对较稳定的检查物质，或受体内外干扰较小的检查物质。凡此类标本在送检时应加以注明，评价检验结果时应注意昼夜节律影响。便于分 析检查结果时参考。

（二）空腹标本 空腹标本一般指进食 8h 后（但不能超过 12h,禁食时间过长可引起部分指标 异常；如补体 C3、转铁蛋白等。）采集的血和尿标本，住院病人多在清晨，此类 标本常用于临床生化定量检查。因为标本是在空腹和安静时采集的，所以受饮食 质、量以及日间生活、生理活动的影响较小。对病人来讲，若多次检查同一项目，也便于比较、对照。测定血肌酑时还应禁肉食 3 天，且不能饮咖啡、茶等。乳糜 血患者检测血脂应素食 3 天后。

（三）指定时间标本 指定时间标本多属功能试验采集的各种标本，因试验目的不同，采集标本的 时间各有不同，必须按试验要求采集，如葡萄糖耐量试验等。三.血液标本检验结果的干扰因素

（一）脂血 血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状，通常称之为脂 血。血清或血浆浑浊本身具有一定的临床意义，实验室报告这一结果，同时血清 浑浊可导致许多指标出现假性升高（如总蛋白）。另处，由于指质可以置换水，经常导致血 K、Na 的的浓度在电极法测定时比火焰光度计法高。脂蛋白可以结 合亲脂成分，降低与抗体的结合，从而干扰免疫检测结果。4

（二）溶血 溶血的标本可以给测定值带来很大的影响，标本溶血后血细胞内含量高的物 质进入到血清可造成结果假性升高，同时溶血可干扰测定中的反应过程及比色，常会导致许多被测指标的浓度假性升高。

（三）黄疸 由于血清总胆红素含量太高干扰许多指标的测定结果。

（四）某些药物的影响 某些药物对测定结果的影响

是不容忽视的。药物的影响主要有（1）药物的 代谢产物对某些试验方法的物理或化学干扰；药物增加一些蛋白质的结合水平，从而影响这些物质的存在方式；药物自身与蛋白质结合。总之，正确全面了解药 物对测定结果的影响对检验医师和临床医师都是十分必要的，这对正确解释检验 结果有帮助的。

（五）巨酶 免疫球蛋白与酶的复合物被称之为巨酶，几存在于所有的诊断酶中，这些结 合可以提高酶的半寿期，从而导致酶的活性升高。最明显的例子就是 CK1 及 CK2，CK1 是 CK-BB 与免疫球蛋白的复合物，CK2 是线粒体 CK 的多聚物，巨 巨 这两种类型的巨 CK 均可使 CK-MB 活性上升。另一个例子是巨淀粉酶，它的显 著特征是使血中淀粉酶活性升高，而尿中淀粉酶则正常。

四、静脉采集基本要求

（一）患者体位 住院患者卧位。从卧位到直立位：则血浆量减少 12%。大多数细胞成分及大 分子物质有 5%-15%升高。不应在输液侧采血：如不可避免，必须注明。否则一 切后果采血者负责。试管准备：按检验条码要求准确备齐各种试管而不能混用

（二）血管选择 应选用较大的血管。血管小：采血时易发生塌陷，引起凝血。不能采到足 够的血量。

（三）注射器 针头外径 1mm。5 针头外径＞1mm 可引起创伤，导致血管碎片入血，促发凝血。针头外径 ＜0.7mm 血液采集时间延长，针头内压力剃度可导致溶血和血小板激活。消毒部位：穿刺处所用消毒液已干

（四）止血带 压脉带控制在 1 min 内。一旦血液入针筒，就应去除。病人握拳：不能一握 一放。抽血过程：应缓慢，不宜过快，将血液沿管壁徐徐注入标本容器，以免产生 大量泡沫或溶血。保证血量：按条码要求选择采血容器颜色。避免抽血不当或血量不足。采血容器的颜色、用途和采血量 头盖颜色 紫色 蓝色 黑色 绿色 红色 黄色 添加剂 EDTA-K2 枸橼酸钠 枸橼酸钠 肝素 分离胶促凝 分离胶促凝 用途 采血量（ml）2.0 2.7 1.8 2.0 4.0 4.0 血常规、HLA-B27、心肌损伤标志物 凝血常规、等凝血试验 血沉 血流变学、D-D、FDP 生化检验 免疫检验

（五）采集多种血液标本的次序： NCCLS 推荐 1.多种血液标本时，采血次序为：血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管/普通血清试管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA 管、葡萄糖 检测管。2.同一患者采集多种试管，采血次序：EDTA 管、其他试管、凝血标本。3.试管混匀：抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂，至少 5 次以上。避免采血损伤和用力转入容器。

（六）抗凝血量

1、血液比例过高——由于抗凝剂相对不足，血浆中出现微血凝块。

2、血液比例过低——抗凝剂相对过剩，对很多检验会造成严重影响。

（七）记录标本信息：标本管上（条码）注明姓名、科别、床号等相关信息。6

（八）标明采血时间 从采血和离心之间的延误可导致试验结果的质量，因此，标明采血时间很重 要。

（九）生物安全 所有采集标本的器皿均应加塞密闭

（十）标本运输和储存 采血完成后，时间耽搁越少，检验结果的可靠性就越高。1.标本运输 温度：在运输到检验科前，标本必须置于室温下，标本转运必须符合储存 条件。ICSH建议：在室温（18～25℃）下，4h完成检测分离血浆和血清：血 细胞与血清或血浆接触＞2h： 血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。同一病人同时有数管血标本送检，应标明采血先后顺序，以便结果不一致 时可进行溯源运输必须平稳。泡沫可使蛋白质变性，血小板激活。试管置于专用试管架和有合适温度的容器转运。2.储存条件： 如不能及时检查，应放在室温、－4℃、－20℃、－80℃冰箱中保存。

（十一）避免标本溶血： 是保证标本质量的重要环节。应将溶血标本弃置并记录，重新采血。标本溶血常见原因：采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入 试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用 消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。肉眼未见溶血，但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时，应 警惕是否发生了非显性溶血。（十

二）血液浓缩原因： 使用压脉带时间过长 进针处按摩、挤压或摸索寻找 长期静脉治疗 7 硬化或阻塞的静脉

（十三）拒收标本标准

1、患者信息不全

2、标签不清，不具备识别系统的唯一性

3、抗凝不当、标本凝固

4、时间延误

5、溶血标本

6、储存温度不当

7、采自输

液管

8、样本外漏、容器破损

9、明显受污染的样本

10、标本量过少

11、标本项目与申请项目不符

12、医嘱作废的标本

13、容器不合格，影响检验结果

（十四）接受标本：必须认真核对标本

1、姓名

2、申请项目

3、标本类型

4、试管和抗凝剂合适性

5、标本是否泄漏或容器损坏

6、标本量是否足够

（十五）治疗药物浓度监测采样时间〕 1 氨基糖苷类抗生素：一般在用药结束后稍晚一点的时间开始，若滴注为 1h，在滴注结束后 10min 取血样，若滴注小于 1h,一般在给药 30 min 取样。

2、卡马西平：达稳态血药浓度时，给下一剂量前立即采样（谷值）。

3、苯巴比妥：由于半衰期长，采样时间不重要，可加固定在同一时间采样，以便比较。

4、丙戊酮：给下一剂量前立即采样（谷值）8

5、地高辛：给药后 8—24 小时。(不管是静脉给药还是口服给药，完成药物 的分布过程需要 8～12h.。

6、茶碱：口吸服后 2～4h。

7、奎尼丁：若每 6h 服药一次，则给药后 6h 左右取血；若每 8h 服药一次，则给药后 5～6h 左右取血。总之，应于下次给药前采血测谷浓度。

8、环孢霉素：服药后 12h。

9、必要时遵照医嘱。〔微生物标本的采集〕一.血液及骨髓(一)采集时间

1、一般原则(1)、病人发热初期或发热高峰.(2)、使用抗菌素前(3)、已经用药者,应在下次用药前 2.、布鲁杆菌感染(1)、最佳时间:发热期(2)、还可多次采血,24 小时抽 3～4 次 3.、沙门菌感染(1)、可在不同时间采集标本（2、)肠热症患者在病程 1～3 周内采集标本 4.、亚急性心内膜炎：除发热期外,应多次采集

5、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内分别在 3 个不同部位抽血样培养。

6、急性败血症：脑膜炎、骨髓炎、关节炎、急性未处理的细菌性肺炎和肾 盂肾炎除在发热期采血外，应在治疗前短时间内在身体不同部位采血，分别作需 氧、厌氧培养。

7、不明原因发热（1）、发热期内多次采血（2）、如果 24 小时培养为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次血样进行 培养。9

8、肺炎链球菌感染：最佳时期为高热、寒战或休克时。

9、分枝杆菌感染：感染初期采血

（二）采集部位及频率

1、急性败血症：24 小时内抽血 3 次或更多，在不同部位如左、右手臂或颈 部采集。

2、急性心内膜炎：治疗前 1～2 小时内，在三个不同部位采集血标本

3、亚急性心内膜炎：第一天在身体不同部位取三次标本。如果 24 小时培养 为阴性结果，应继续采集 2～3 份或更多次多部位采集血样进行培养。

4、无名热 ：不定期多次、多部位。24 小时内不超过 3 次，如果培养为阴 性结果，应继续采集送检。

（三）标本采集量 成人：10 毫升血液 儿童：3～5 毫升 婴幼儿：1～2 毫升

（四）标本采集注意事项

1、用 75%酒精消毒瓶盖，不用碘酒消毒

2、严格作好抽血部位的无菌操作

3、同时做需氧和厌氧培养时，先将标本注如厌氧瓶中，然后再注如需氧瓶 里。

4、注如标本的培养瓶立即送检，如不能立即送检时，放室温保存，切勿放 冰箱内

5、化验单上注明采血时间

二、尿液标本

（一）采集时间：抗菌素应用之前，晨起第一次尿液

（二）采集方法

1、段尿采集方法：清洗尿道口，排尿弃去前段尿，留取中段尿 10 毫升于无 菌容器中立即送检。

2、集尿法：结核分枝杆菌集菌检查。将 24 小时尿留在一清洁容器中，取沉 渣 10 毫升送检 10

3、尿法：通过导尿管留尿 10 毫升于无菌容器中立即送检

（三）注意事项

1、尿严格进行无菌操作

2、集后立即送检

3、用药之前进行培养

4、液中不得加防腐剂 三.、粪便标本

（一）采集时间

1、泻病人在急性期用药前采集

2、沙门菌感染

（二）集方法

1、自然排便法：自然排便后，挑取有脓血，黏液部位的粪便于无菌容器内 送检。

2、直肠拭子法：不易获得粪便可采用直肠拭子法采集。

（二）注意事项

1、标本新鲜

2、用药前采集

3、腹泻病人在急性期采集

四、痰及上呼吸道标本

（一）标本采集时间

1、用药前清晨痰

2、鼻咽拭子

（二）采集方法

1、自然咳痰法：清晨起床后，清水反复漱口后用力除第一口痰于无菌容器 中立即送检。

2、上呼吸道标本：采用无菌棉拭子

（三）注意事项 标本采集后立即送检，如不能立即送检，放冰箱保存

五、化脓和创伤标本 用药前，无严格时间要求 肠热症在 2 周以后；胃肠炎病人在急性期采集新鲜粪便 11

（一）标本采集

1、开放性感染：标本采集前清创创口，然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深 部分泌物于无菌管中立即送检。

2、闭锁性脓

肿：无菌操作，穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。

（二）注意事项

1、药前采集标本

2、能立即送检标本，放 4℃保存，但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本除 外。

六、穿刺液

（一）脑脊液

1、集时间 怀疑为脑膜炎的病人，在用药前应立即采集脑脊液进行培养

2、集方法 用腰穿方法采集脑脊液 3~5 毫升于无菌管中立即送检

（二）注意事项

1、于细菌检测：收集脑脊液后 15 分钟内送检，脑脊液不可放冰箱保存。

2、于病毒检测：脑脊液标本应放置冰块，在 4℃15 分钟内送检。

3、行腰穿过程中，严格无菌操作

（三）胆汁及穿刺液

1、检测时间：怀疑感染存在，应尽早在用药之前或停止用药后 1～2 天采集 标本

2、采集方法：无菌穿刺抽取标本于无菌管中立即送检，量不少于 1 毫升

七、烧伤标本

（一）、采集时间 早期、深 П 度烧伤溶痂和Ⅲ度焦痂分离期、后期每天采 集烧伤标本于无菌管中立即送检

（二）、采集方法

（三）、注意事项

1、严格无菌操作

2、床前采集标本进行厌氧培养

3、烧伤 12 小时以后进行采集创面标本，可获得阳性结果

八、生殖道标本 用无菌拭子，直接从烧伤创面的脓汁多部位采集 12

（一）标本采集 尿道分泌物、阴道分泌物、宫颈分泌物、宫呛内容物、前列腺按摩液、精液 等严格无菌操作留取于无菌管中立即送检。

（二）注意事项

1、严格无菌操作

2、采取宫颈标本避免触及阴道壁

3、床前采集标本进行厌氧培养 九.组织标本

（一）采集时间

1、浅表皮肤黏膜

2、深部组织

3、尸检标本

（二）采集方法

（三）注意事项

1、严格无菌操作

2、各种活检组织标本，常温下最长保存 24 小时

3、甲醛固定的组织块标本不用于病原微生物分离 附：样本拒收标准

1、样本上无患者条码或条码不符和要求

2、样本外漏、容器破损及明显受污染的样本

3、样本的检验项目申请不适合进行

4、当日重复送样本（血培养除外）使用抗生素之前采用 手术或内窥镜检查是采集 死后迅速采集 无菌操作留取标本于无菌管中立即送检 〔骨髓形态标本的采集〕

一、髓标本的采集是由临床医生采集，应适量不得超过 0.2ml，取材应避免混血。

二、脑脊液标本的采集是由临床医生采集，采集后应立即送检，接到标本后应及 时制作标本。

三、血液涂片的采集（包括血细胞形态检查和疟原虫检查）方法两种： 由临床护士用 BD 管采血，采血后标本应尽快送检，应在 2 小时内制成血涂 片，标本不可放置过久。13 在未制作血涂片前，标本严禁放入冰箱内保存，分院送检的标本应制成血涂 片送检。冬季室外送检的标本应保温，避免标本受冻溶血,如果标本放置时间超过 24 小时（夏季温度高）可拒收标本。〔细胞遗传（染色体）标本的采集〕

一、预约时要求患者采血化验前半个月内尽量避免应用各种药物。

二、到本室采血时要求患者精神尽量放松，因为患者过度紧张时机体释放的血管 紧张素会影响染色体的生长。〔脱落细胞标本的采集〕

一、痰标本： 留取痰标本的方法有自然咯痰、气管穿刺吸取、经支气管镜抽取等，以自然咯痰为主，本应新鲜。应嘱患者用力咳出气管深处真正的呼吸道分泌 物，于干净痰盒内，密封送到细胞室，而勿混入唾液及鼻咽部分泌物。

二、液体标本（胸、腹水、心包液、尿液、脑脊液等）要求新鲜，送实验室应立 即制片，否则细胞自溶退化而破坏，影响诊断。如不能立即制片，可在标本 中加入 40%甲醛溶液以防止细胞自溶。液体标本要求标本量 50-100ml（脑 脊液除外）。

三、乳腺溢液：询问病史，让病人自行或制片人员沿乳腺导管轻轻挤压，将第一 滴溢液去掉，再挤出制片，如有血选择血性乳液，粘片制成薄厚均匀的涂片，马上固定。

四、气管镜刷片、妇科刮片由临床医生涂制。但标本需马上固定。若做液基细胞 按液体标本方法制片。

五、穿刺细胞学：到时本室取标本。〔血尿定位标本的采集〕

一、患者清晨 3 点排尿一次，这次尿不要，然后留取 3 点 6 点全程尿一次。全部 收集在干燥、清洁、无污染的容器内来检验时带来。

二、早 8 点到检验科由血尿定位定提供清洁尿杯分三杯留取新鲜尿液。

三、本室可保存尿液中存在的有形成分形态冰箱温度为 2℃～8℃。〔粪便标本的采集〕 14 粪便标本的采集方法直接影响检验结果的准确性，通常采取自然排出的粪 便：

1、留取新鲜指头大小（5 克）的大便，放入干燥、清洁、无吸水性的容器 内送检。不要混入其它杂物，容器上应贴好标签、条码或注明患者姓名、科别、床号、收集时间及

检测项目。

2、本应选择具有病理意义的便（如浓血、血粘液、水样等选取）应在半小 时内送检，2 小时内检测完毕，否则应 PH 变化及消化酶的影响可使便的细胞成 分破坏分解。最多不应超过 4 小时。

3、无法排便而又必须检查时，可经肛门用肛试子采便。

4、试验应嘱咐患者在收集标本前三天禁食动物性食物，并禁服铁剂和维生 素 C.且连续检查三天，收集后须迅速送检。

5、寒冷时应保持温度，避免冻溶防止有形成分破坏。〔尿标本的采集〕

一、根据不同检验目的。留取晨尿和餐后 2h 尿、12h 尿、24h 尿及随机尿。.尿常规检验通常为：

（一）、新鲜晨尿（这时的尿标本较浓缩和酸化，不受运动及进餐等影响。适用于尿蛋白、尿沉渣、尿亚硝酸盐检验及细菌培养）和随机尿（尿液可 能被稀释或受进餐、药物以及新陈代谢等影响，尿中成分检出情况不尽相同。餐后尿检测易出现糖尿）。

（二）、尿胆原检测以 14：00～16：00 时间段内留取的尿液为好。

（三）、尿液定量检查需要留取 12h 或 24h 的混合尿液，留取时应按规定时 间内排出之尿液装入含有合适防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取 10ml 送检。1、12h 尿：适用于 Addis 计数。试验当日清晨起，除正常饮食外，不得 再饮水，以利尿液浓缩。于晚上留尿开始时，嘱患者排尿并弃去，收集此后 12h 内的全部尿液。2、24h 尿：适用于代谢产物 24h 定量测定或 24h 尿沉渣抗酸杆菌检查。留取要求同 12h 尿。15

二、尿液标本采集应清洁、干燥的一次性容器，应用时贴上条码。避免经血、白带、精液、粪便混入。标本留取后及时送检，以免因光线、细菌滋生造成 化学物质和有形成分的改变和破坏。作细菌检验的标本，在微生物标本采集 注意事项介绍。

三、尿标本的防腐与保存： 冷藏法：4℃冰箱，不得超过 6 小时。但应注意，有些成分如尿酸盐在低 温时会沉淀析出，影响其化学成分的测定；同时，碱性尿液中的 红细胞以及细胞管型即使在冰箱中也会破坏。因此，要根据检测 项目的需要，选择不同的防腐及保存方法。甲苯法：100ML 尿加 0.5ML 甲苯，适用于 24 小时尿液化学检查。〔前列腺标本留取注意事项〕 由临床医师进行，标本少时 1 滴，多时可达 1ml 左右。置洁净载物玻片上，立即送检。以防干涸。〔精液标本的采集〕

一、嘱患者禁止合房七天，留取精液。

二、直接用干燥、防漏、洁净的容器留取。容器不易过大，以免沾留太多。要求 在半小时内保温送检验科。冬天最好放在内衣口袋里。

三、标本采集次数：精子生成的日间变化较大，因此，对于少精症患者不能仅凭 1 次检查结果诊断。一般间隔 1～2 周再检查 1 次，连续检查 2～3 次后再作 判断。

四、避免用避孕套工具留取。影响活动力。

五、必要时在医生指导下留取。〔浆膜腔穿刺液的采集〕由临床医师进行；穿刺必须注意无菌操作，勿使细菌污染穿刺部位及标本。采取量由检验目的按条码要求而定。为防止细胞变性、凝块发生或细菌溶解，应 及时送检及检验。如不能送检，可加适量的枸橼酸钠抗凝剂（蓝色真空管）内，混均后立即送检。如要观察标本有无凝固现象，则不能加抗凝剂。[胃液标本采集] 16 先将晨间空腹残余胃液抽空弃去。然后在 1h 内连续抽出胃液放入同一瓶内。〔脑脊液标本的采集〕

一、本由医通过腰椎穿刺采集。穿刺应顺利，避免将因液混入标本。

二、标本一般收集 3 管，每管 2ml。第 1 管做细菌培养；第 2 管做化学或免疫检 查；第 3 管做常规及细胞计数。

三、标本就及时送检、及时检验。久置可致细胞破坏、变性、自容，糖分解及病 原菌破坏或溶解等影响检验结果。17 患者

1、状态

2、时间 避免剧烈活动、禁食 12h 后作为采血标准。一般生理成分在晨起时都处于较低水平，随着起床和活动增加而逐步 上升，下午较高，入夜休息和睡眠后渐低，晨起前最低。个体日变动差(最高与最低)项目 钠(mmol/L)钾(mmol/L)氯(mmol/L)磷(mmol/L)总蛋白(mmol/L)白蛋白/球蛋白(mmol/L)尿素氮(mmol/L)尿酸(mmol/L)

3、生活环境

4、药物

5、吸烟

6、性别 停服能干扰检查项目的药物，特别是进行脏器功能试验时更为重要 吸烟对检查的影响与吸烟量成正比.对许多检查项目有影响，女性受性期周期影响较大，男女发育阶段也 日变动差 4.8 0.4 3 0.22 0.6 0.3 1.2 0.49 项目 胆固醇(mmol/L)甘油三酯(mmol/L)碱性磷酸酶(King U)丙氨酸氨基转移酶(U/L)3.6 日变动差 0.52 0.33 门冬氨酸

氨基转移酶(U/L)3.9 乳酸脱氢酶(U/L)胆碱酯酶(⊿ph)淀粉酶(somogy U/L)2.7 0.1 17 有一定的差别。

7、年龄 一般是从婴乳儿、儿童、青少年、青壮年、更年期和老年，从生长发 育代谢旺盛至代谢减慢、衰老，各种生物活性物质从活跃到降低，免疫功能 从发育不全到发育完善直致衰老、萎缩，其相关的检查也有相应的变化。18

第三篇：检验科检验标本采集简述

•检验科检验标本采集简述

一、概述

• 实践证明，为保证临床检验质量，必须做到全过程质量控制，即对实验室检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制是全面质量控制的前提。国内外均有报道，检验结果误差中70%左右来自实验前（分析前），而且实验前（分析前）误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。因此，必须注意做好实验前质量管理。

二、实验前质量控制主要包括：

（一）患者的准备；

•许多检测对饮食、饮水和药物有特殊要求，如：空腹标本是指空腹8h后采集的标本，血脂测定须禁食12-14h，情绪紧张会使血糖升高，醛固酮检测要在起床活动前取卧位血，起床后活动2h取立位血，吗啡、可卡因可使淀粉酶（AMY）升高； •

（二）标本的采集；

1、止血带压迫时间不宜超过40秒，否则会导致乳酸升高、pH值降低、K、Ca升高、淤血、静脉扩张等；

2、采血后应立即上下颠倒混匀5-10次采血管，不可用力震荡，摇晃； •

3、静脉血避免在输液同时取血，输液不仅使血液稀释，而且会对血糖和电解质等检验结果发生严重干扰；

4、多个组合检测项目同时采血应按下列顺序：血培养-无添加剂管（红帽）-凝血管（黄帽）-枸橼酸盐管（黑/蓝帽）-肝素管（绿帽）-EDTA管（紫帽）-草酸盐/氟化钠管（灰帽）；

（三）标本的储存；

（四）标本的运送；

（五）标本送出及签收；

（六）标本的处理；不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，从标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

（七）已知的和需考虑的生物因素和干扰因素等。

第四篇：临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

一

血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

二

红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

三

凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。

C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。

四

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

六

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

七

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。

八

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

九

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水

冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。

⑿

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。

脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送检；标本运送可采用注射器（已驱氧）或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。

第五篇：血液标本采集与处理

血液标本采集与处理

一：静脉采血法

（一）普通采血法 试剂与器材 1．30g/L碘酊。2.75%乙醇。

3.其他 一次性注射器，压脉带，垫枕，试管，消消毒棉签。操作

1.取试管一支（需抗凝者应加相应抗凝剂）。

2.打开一次性注射器包装，取下针头无菌帽，将针头与针筒链接，针头斜面对准针筒刻度，抽拉针栓检查有无阻塞和漏气，排尽注射器内的空气，套上针头无菌帽，备用。3.受检者取坐位，前臂水平伸直置于桌面枕垫上，选择容易固定、明显可见的肘前静脉或手背静脉，幼儿可用颈外静脉采血。

4.用30g/L碘酊自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤，待碘酊挥发后，再用75%乙醇以同样方式脱碘，待干。

5.在穿刺点上方约6CM处系紧压脉带，瞩受检者紧握拳头，使静脉充盈显露。

6.取下针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位下端，右手拇指和中指持注射器针筒，市指固定针头下座，针头斜面和针筒刻度向上，沿静脉走向使针头与皮肤呈30度角，快速刺入皮肤，然后成5度角向前刺破静脉壁进入静脉腔。见回血后，将针头顺势深入少许。穿刺成功后右手固定注射器，左手松压脉带后，再缓缓抽动注射器针栓至所需血量。受检者松拳，消毒干棉球压住穿刺孔，拔出针头。瞩受检者继续压按针孔数分钟。

7.取下注射器针头，将血液沿试管壁缓缓注入试管中。抗凝血需立即轻轻摇匀，盖紧试管塞，及时送检。《附注》

1:采血部位通常选择肘前静脉，如此处静脉不明显，可采用手背，手腕，腘窝和外踝部静脉。幼儿可采用颈外静脉。2：采血一般取坐位或卧位。体位影响水分在血管内外的分布，从而影响被测血液成分浓度。

3：压脉带捆扎时间不应超过1分，否则会使血液成分浓度发生改变。

4：血液注入试管前应先取下注射器针头，然后将血液沿试管壁缓缓注入试管中，防止溶血和泡沫产生。需要抗凝时应与抗凝剂混匀，切勿用力震荡试管。

5：如遇受检者发生晕针，应立即拔出针头，让其平卧。必要时可用拇指压掐或针刺人中，合谷等穴位，或嗅吸芳香酊等药物。

二，真空采血管采血法 原理

将有头盖胶塞的采血试管预先抽成不同的真空度，利用其负压自动定量采集静脉血样。试剂与器材

目前真空采血器有软接式双向采血针系统（头皮静脉双向采血式）和硬接式双向采血针系统（套筒双向采血式）两种，都是一端为穿刺针，另一端为刺塞针。另附不同用处的一次性真空采血管，有的加有不同抗凝剂，或其他添加剂，均均用不同颜色头盖标记便于识别。真空采血法复合生物安全措施。操作

一：消毒：为受检者选静脉与消毒

二：采血

1：软接式双向采血针系统采血，拔除采血穿刺针的护套，以左手固定受检者的前臂，右手拇指和示指持穿刺针，沿静脉走向使针头与皮肤呈30度，快速刺入皮肤，然后成5度角向前刺破静脉壁进入静脉腔，见回血后将刺塞针端直接刺穿真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管内，如需多管血样，将刺塞端拔出，刺入另一真空采血管即可。达到采血量后，松压脉带，瞩受检者松拳，拔下刺塞端的采血试管。将消毒干棉球压住穿刺孔，立即拔出穿刺针，瞩受检者继续按压针孔数分钟。2：硬连接式双向采血针系统采血:静脉穿刺如上：采血时将真空采血试管拧入硬连接式双向采血针的刺塞针端中，静脉血就会自动流入采血试管中，拔下采血试管后，再拔出穿刺针头。3：抗凝血

须立即混匀。附注

1.使用真空采血器前应仔细阅读厂家说明书，严格按说明书要求操作。

2.尽量选粗大的静脉进行穿刺。

3.刺塞针端的乳胶套能防止拔出采血试管后继续流血污染周围，达到封闭采血防止污染环境的作用，因此不可取下乳胶套。

4.带乳胶套的刺塞端须从真空采血试管的胶塞中心垂直穿刺。

5.采血完毕后，先拔下刺塞端的采血试管，后拔穿刺针端。6.使用前勿松动一次性真空采血管盖塞，以防采血量不准。

7.如果一次采血要求采取几个标准时，应按以下顺序采血：血培养管，无抗凝剂及添加剂管，凝血象管，有抗凝剂管。