标本采集应急预案及处理程序

第一篇：标本采集应急预案及处理程序

标本采集应急管理制度和应急预案

1、正确标本的采集

1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，婴幼儿常用颈静脉。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。禁止在静脉输液管道内采血，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。2）、尿液标本的采集

一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集由医护人员行相关操作留取标本。3）、粪便标本的采集

留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5 g及时送检。4）、阴道分泌物标本的采集

一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5-2cm，稍用力转动两周，以取得分

泌物及脱落细胞。5）、痰标本的采集

嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。6）、其他标本的采集

脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。

2、临床不合格标本常见的原因

1）标本溶血 主要是因为标本采集量不足，管内剩余真空的存在造成血球破裂；用注射器采血转装于采血管时，未卸下注射器针头(血样在一定压力下，通过狭小的通道受到挤压，血细胞变形或破裂)；在摇匀抗凝剂，抗凝管摇匀方式错误或幅度太大(血样冲击力过大，破坏血球)；使用干粉剂采血管时，不及时摇匀(其溶解接触面不均衡，介面温度过高，出现溶解热和反应热)。

2）标本凝血 使用注射器采血时，分装量超过采血管额定量；抗凝管没有摇匀或未及时摇匀、摇匀方式错误；血液粘度高的病人，选择采血针型号过小，采血速度过慢；异常的开塞操作(即水剂的抗凝剂常吸附在丁基胶塞上)，异常开塞后胶塞会带走部分预加的抗凝剂，导致抗凝剂剂量不足；由于患者疾病或自身因素造成血管条件不理想,致使抽血时间过长而导致血液凝固；多项采血时将血常规标本放在最后,导致拔针后针管

内的血液返入试管,造成血量过多而凝固；止血带使用时间过长。3）采血容器不当、采血量过少 护士对检验相关业务和一些新开展业务不熟，造成对标本采集的容器选择和采血量缺乏正确的认识。4)标本与LIS系统扫码不相符 护士处理检验医嘱时未认真履行查对制度，造成标本容器上条码与患者姓名不相符；护士扫码未保存医嘱，造成实验室无法接受标本。

5)医嘱停止或使用已停止医嘱的条码张贴在血液标本，护士处理检验医嘱时未认真履行查对制度，采集后的标本未与采集后检验汇总单进行一一核对，造成实验室无法接受标本。

6)输液侧采集标本 护士对标本采集要求不熟，造成标本采集时从患者输液侧采集标本。

7)脂血标本 护士在标本采集前未告诉患者明确的禁食时间及禁食内容以及饮食因素对检验结果的影响，患者在采集标本前未空腹或者进食高脂食物。

8)标本采集后未及时送检 护士对标本未引起足够的认识，导致标本采集后放置时间过长。

3、不合格标本改进措施

1)溶血的改进措施 使用不足量标本时，采血完毕后开启管塞片刻，放出管内多余真空；特殊情况需注射器采血分装于采血管时，应卸下针头，开塞后沿管壁缓慢注入；颠倒180度摇匀，尽量减小血样冲击力；及时摇匀5～8次。对于一些血管条件不理想的患者，临床科室要重视，护士应

不断提高自身静脉穿刺技术，做到一次成功。护理部经常组织技术操作训练，以促进和提高护士的穿刺技术。

2）凝血的改进措施 特殊情况需分装血样时，应以采血管额定量为准；及时轻轻颠倒180度，摇匀5～8次；选择适宜的采血针，或采血量大时边采集边摇匀；需开塞操作时，先将采血管底部向下轻敲或将其适当甩一甩，使得吸附在胶塞上的抗凝剂沿管壁滑下，开塞操作完毕后，合上胶塞颠倒180度，摇匀5～8次。提高护士的静脉穿刺技术，对于一些血管条件不理想的患者，科室要重视，护士应不断提高自身静脉穿刺技术，做到一次成功。

3)加强护士对标本采集知识的学习和培训 临床应将检验分析的意义、标本收集的规程等列入护理“三基”培训的内容中去，尤其对一些新开展的特殊检验项目实验室进行专题讲座，使血液标本的采集更规范。确保检验前标本的采集质量,并不断建立和健全标本采集质量管理的标准与要求,使护理质量和检验质量得到同步提高。

4)加强护理规章制度的落实 做好“三查七对”，加强工作责任心；采血前再次认真查对医嘱与标本容器是否相符。

5)加强对患者、陪护人员的健康宣教力度 在对患者进行健康宣教时,正确指导患者做好检验标本留取前的准备,把留取标本的注意事项讲解清楚。

临床中，护士留取血液标本不合格，增加了实验室和下一班护士的工作量，还增加了病人的痛苦。因此，血液标本的质量问题是检验和护理工作质量控制的薄弱环节，应引起临床护士的高度重视，减少和杜绝不合格血液标

本，提升护理质量，提高标本质量以保证实验室更好的为临床服务。

患者输血时血标本采集错误的应急预案及程序 应急预案

1． 发现血标本采集错误时，若血标本未送至输血科，及时找出血标本，并毁弃

2． 若血标本已送至输血科，立即电话通知输血科，勿进行交叉配血，并由护士至输血科将错误血标本收回，毁弃

3． 血标本毁弃后，值班护士重新遵医嘱，并严格执行三查七对制度，经两人核对后抽取血标本，在医嘱单上签全名

4． 由护士将血标本送至输血科，与输血科工作人员黑队无误后，交予输血科进行交叉配血实验，并在标本送检本上登记患者床号、姓名、年龄、住院号、及标本到达时间，送检护士签全名

5． 主动上报护士长、值班医生，及时上报不良事件表至护理部，组织讨论，及时总结经验教训 程序：

发现血标本错误 回收血标本并毁弃 两人核对后重新抽取血

标本 将血标本送输血科 核对无误后登记患者信息 上报护理部

采集血标本溅洒事故的应急预案及程序 应急预案

1.从标本管中溅洒出来的血标本不能再放回标本管内作为标本送检 2.立即对被污染物，如体表、衣物、台面、地面等，进行有效的消毒处理

3.重新选取标本管，为患者解释重新抽取标本的重要性，取得患者及患者家属的谅解

4.严格执行三查七对，重新按累抽取血标本，并由送至检验科 程序

血标本溅洒 勿重新回收送检 消毒处理被污染物 为患者解释重新抽取血标本的原因 取得患者谅解 重新抽取血标本 及时送检

血标本溶血或凝血的应急预案及程序 应急预案

1.找出血标本被检验科拒收的原因，若需重新留取血标本，护士重新打印标本标签，再次留取血标本

2.严禁将因出现凝集而拒收的血标本在挑出血凝块之后重新送检 3.为患者解释重新留取标本的原因，取得患者及患者家属的同意，严格执行三查七对，并注意防止血标本再次凝血活溶血，留取血标本 4.及时由专人将血标本送检 程序

发现标本溶血或凝血 重新留取血标本 向患者解释原因 取得患者及患者家属的同意 再次留取血标本 及时送检

大小便标本被拒收的应急预案及程序 应急预案

1.找出大小便标本被拒收的原因

2.向患者解释重新留取标本的原因，先协助患者清洁外阴及周围皮肤，女性患者特别避免阴道分泌物或经血的污染

3.选择清洁、无吸水、防渗漏、一次性的专用容器，留取合适标本 4.包含病人姓名及特定编码的标签应贴容器上，不可贴在盖上 5.及时由专人将标本送检 程序

大小便标本拒收 找出被拒收原因 重新留取标本 清洁外阴及周围皮肤 选择专用容器 留取标本 正确贴标签 及时送检

第二篇：标本采集接收处理程序

标本采集、接收和处理程序

1． 目的 规范标本采集、接收和处理工作，确保标本质量，保证结果的准确可靠，确保输血安全。

2． 范围 适用于标本采集、接收和处理。3． 职责

科主任：负责标本采集、接收和处理的管理工作。

工作人员：负责标本采集、接收和处理的日常工作。

质量监督员：负责标本采集、接收和处理日常监督工作。4． 程序

1．标本采集：①标本采集前作好充分准备，各种物料、器材准备充分；②采集标本时须让受检者知情同意；③认真核对患者姓名、性别、年龄、病案号、病室或门急诊、床号、血型和诊断等，准确无误后方可采集标本；④采集标本时严格消毒，无菌操作；⑤采集的标本准确放入有唯一性标记的容器内，一一对应；⑥对标本采集过程中使用的材料进行安全处置。

2．标本接收：①认真核对标本管与《临床输血申请单》内容是否一致；②检查标本质量是否符合要求，标签粘贴是否牢固；③检查《临床输血申请单》是否填写完整、是否有执业医师签名；④接收标本时，双方核对无误后，记录标本的接收时间、数量，签字认可，标本放入冰箱按规定保存；⑤拒收标本应说明拒收理由。

3．标本处理：①检测前根据不同的检测目的严格按照标准操作规程对标本进行离心、分离、加样等处理，做好树立记录；②检测中严格按照各项目的检测方法加样、加试剂、孵育、反应、读结果等，并做好记录；③检测后交叉配血后标本2-8℃保存7d,7d后按规定进行销毁，并做好销毁记录。

4．监督管理：①科主任不定期对标本采集、接收和处理进行监督检查，发现问题，发《限期整改通知书》，限期整改；②质量监督员对标本采集、接收和处理进行日常监督，发现问题，及时上报科主任。

第三篇：标本采集应急预案 1

标本采集的应急预案和程序

一、发现血标本采集错误时

１．若血标本未送至输血科，及时找出血标本，并毁弃。

2． 若血标本已送至输血科，立即电话通知输血科，勿进行交叉配血，并由护士至输血科将 错误血标本收回，毁弃。

3． 血标本毁弃后，值班护士重新遵医嘱，并严格执行三查七对制度，经两人核对后抽取血 标本，在医嘱单上签全名。

4． 由护士将血标本送至输血科，与输血科工作人员核队无误后，交予输血科进行交叉配血 实验，并在标本送检本上登记患者床号、姓名、年龄、住院号、及标本到达时间，送检护士签全名。

5． 主动上报护士长、值班医生，及时上报不良事件表至护理部，组织讨论，及时总结经验 教训。程序： 发现血标本错误—— 回收血标本并毁弃 ——两人核对后重新抽取血标本—— 将血标 本送输血科 ——核对无误后登记患者信息 ——上报护理部

二、采集血标本溅洒时

1.从标本管中溅洒出来的血标本不能再放回标本管内作为标本送检。

2.立即对被污染物，如体表、衣物、台面、地面等，进行有效的消毒处理。

3.重新选取标本管，为患者解释重新抽取标本的重要性，取得患者及患者家属的谅解。4.严格执行三查七对，重新抽取血标本，并及时送至检验科。

程序: 血标本溅洒 ——勿重新回收送检―― 消毒处理被污染物 ――为患者解释重新抽取血标本的原因 ――取得患者谅解 ――重新抽取血标本 ――及时送检

三、血标本溶血或凝血时

1.找出血标本被检验科拒收的原因，若需重新留取血标本，护士重新打印标本标签，再次留取血标本。

2.严禁将因出现凝集而拒收的血标本在挑出血凝块之后重新送检。

3.为患者解释重新留取标本的原因，取得患者及患者家属的同意，严格执行三查七对，并注意防止血标本再次凝血活溶血，留取血标本。

4.及时由专人将血标本送检。程序： 发现标本溶血或凝血―― 重新留取血标本―― 向患者解释原因―― 取得患者及患者家 属的同意―― 再次留取血标本―― 及时送检

四、大小便标本被拒收时

1.找出大小便标本被拒收的原因。

2.向患者解释重新留取标本的原因，先协助患者清洁外阴及周围皮肤。

3.选择清洁、无吸水、防渗漏、一次性的专用容器，留取合适标本，4.包含病人姓名及特定编码的标签应贴容器上，不可贴在盖上。

5.及时由专人将标本送检。

程序： 大小便标本拒收―― 找出被拒收原因―― 重新留取标本―― 清洁外阴及周围皮肤 选择专用容器―― 留取标本―― 正确贴标签 及时送检。

第四篇：血液标本采集程序

血液标本采集程序

1.目的

规范生化检验标本的采集方法，减少分析前因素对检验结果的影响，保证检验质量。2.范围

适用于各种临床生化标本来集。临床标本包括血液，尿液、胸腹水等各种体液等。3.职责

3．1 门诊和临床各科护士、门诊检验人员负责标本的采集。3．2 护工或其他经过相应培训人员负责标本的转运。

3．3 检验科负责标本的接收和处理，负责指导临床各科和病人如何正确采集标本。4.程序

4.1 血液标本采集

正确采集血液标本是获得准确、可靠检验结果的关键。在自动化检验仪器应用普遍的现代临床实验室中，基础性的血液标本的采集和处理是检测前质量保证的主要环节。4.2 血液标本类型

4.3 血液标本采集方法

血液标本的采集方法按采集部位可分为皮肤采血法、静脉采血法和动脉采血法。

4.3.1 皮肤采血法

主要用于需要微量血液的检验项目和婴幼儿血常规检验。皮肤采血法所获得的血液标本是微动脉血、微静脉血和毛细血管血混合的末梢全血。4.3.1.1采血针皮肤采血法（1）器材准备

（2）部位选择：采血针皮肤采血法的部位与评价见表1-1。

（3）采血方法 ：见表1-1-1

（4）注意事项：见表1-1-0。4.3.2 静脉采血法

静脉采血法是临床广泛应用的采血方法，所采集的静脉血能准确反映全身血液的真实情况，因其不易受气温和末梢循环变化的影响，而更具有代表性。静脉采血法根据采血方式可分为普通采血法和负压采血法。4.3.2.1 普通采血法 普通采血法，即传统的静脉采血方法。

4.3.2.2 负压采血法 负压采血法又称为真空采血法，具有计量准确、传送方便、封闭无尘、标识醒目、刻度清晰、容易保存、一次进针多管采血等优点。

（1）主要器材：负压采血系统由双向采血针、采血管构成（图1-1）。负压采血管的种类和用途见表1-2。

（2）静脉选择和消毒：与普通静脉采血法相同。

图1-2 多管血液标本采集顺序

4.3.3.3 动脉采血法

动脉采血法的步骤与方法、注意事项见表1-2-

4、表1-2-5

4.4 血液标本的处理、运送与保存

4.4.1 血液标本检测前预处理

1．分离血清或血浆

2．分离细胞

3．添加剂的选择

为了快速获得血清有时还要使用促凝剂和分离胶等。常用添加剂的用途和特点见表1-3。

4.4.2 血液标本运送

血液标本的运送可采用人工运送、轨道传送或气压管道运送等，无论采用哪种运送方式，都应该注意以下3个原则。

4.4.3 实验室要制定标本接收的标准文件。因不同的检验项目对标本的要求不同，还要制定拒收标准。因“让步”而接收的不合格标本，其检验报告单上应注明标本存在的问题，在解释结果时必须特别说明。

需要注意的是，标本拒收不但造成检验费用增高和时间浪费，还可能延误诊治甚至危害患者。因此，涉及血液标本采集的所有工作人员，都必须在标本采集、转运和处理各个环节进行全面而规范的培训。4.4.4 血液标本保存

血液标本保存应当在规定的时间内、确保标本特性稳定的条件下，按要求分为室温保存、冷藏保存、冷冻保存（表1-3-3）。

4.4.4 检测后血液标本的处理

根据《实验室生物安全通用要求》要求：

①将操作、收集、运输及处理废弃物的危险减至最小。②将其对环境的有害作用减至最小。

血液标本采集的质量保证

1.目的

规范生化检验标本的接收、处理、保存等过程，减少分析前因素对检验结果的影响，避免标本交接和处理过程中发生差错。保证检验质量。2.范围

门诊和各临床科室送检的生化标本。3.职责

3．1 各临床科室医生负责检验申请单的填写。

3．2 临床各科护士、门诊检验人员负责标本的采集；护土、护工或其他指定人员负责标本的送检。

3．3 检验科生化组负责标本的接收和处理。4.程序

4.1 血液标本采集环境要求与生物安全

4.1.1环境要求---应该人性化设置，空间宽敞，光线明亮，通风良好，血 标本采集的台面高低和宽度适宜，座位舒适。4.12生物安全---(1)防止交叉感染

(2)环境消毒

4.2 血液标本采集的过程要求 4.2.1检验申请单

检验申请单或电子申请表中应包括患者最基本的信息，以识别患者和经授权的申请者，同时应提供相关的临床信息。相关的临床信息至少包括姓名、性别、年龄，以用于解读检验结果。4.2.2标本采集和处理的具体要求

实验室应向负责采集标本的人员提供标本采集和处理的具体要求（表1-4）。

4.2.3标本信息完整性与接收

血液标本可通过检验申请单溯源到特定的个体，实验室不应接收或处理缺少标识的检验申请单和标本（表1-4-1）。

4.3 血液标本采集及检测结果的影响因素 4.3.1饮食和生理状态

患者饮食和生理状态对检验结果的影响见表1-5。

4.3.2药物

药物干扰检验结果主要有4条途径： ①影响待测成分的物理性质。②参与检验过程的化学反应。

③影响机体组织器官生理功能和（或）细胞活动中的物质代谢。④对机体器官的药理活性和毒性作用。4.4 采血操作

（1）采血时间

（2）采血部位

（3）采血时体位（4）压脉带的使用 4.5 其他

（1）输液。（2）溶血（表1-6）（3）某些抗凝剂对标本的影响（4）低温保存对标本的影响

假设HCT为0.50

生化实验室标本检测

1.目的

规范生化标本的检测程序，减少分析过程中各种因素对检验结果的影响，确保检验质量。2.范围

适用于所有临床生化标本的检测。临床生化标本包括血液、尿液、胸腹水等各种体液。3.职责

生化组所有检验人员按生化组岗位职责，负责标本的预处理、测定、检验结果的报告等。4.程序

4．1 检测过程流程：接收样品一统一编号一离心或按检验项目要求处理一输入诊疗卡号或标本号一选择项目一确定一退出项目录入，进入主菜单一选择起始样品架号一确定，开始测定一审单打印一签发报告。4．2 样品接收和编号：按生化标本管理程序进行。

4．3 离心或按检验项目要求处理：将编好号的样本以2500 一3000 r／分离心l O分钟，直接上机测定。为了避免样品针堵塞和／或血清(或血浆)与血凝块(或血细胞)接触时间过长对检验结果的影响，可将血清或血浆移入另一样品杯，再上机检测。

4．4 上机测定：按生化分析仪或相应仪器设备的操作规程进行，但应注意标本测定前应按室内质控程序先作质控，只有质控结果在控时，才开始测定标本。若有条件，在测定过程中或测定结束后再分别测定不同浓度的质控品，对检测的全过程实施质量控制，确保检验质量。4．5 结果报告

4．5．1 样品检验完毕后，由操作人员逐一核对检验项目有无遗漏，确保与验单上的申请项目准确无误后打印结果，由授权签字人再次进行核对，确保检验结果间不相互矛盾，并与临床诊断相符时签发报告。

4．5．2 当发现检验报告中有缺陷而对其准确性及有效性产生怀疑时，应由相关人员处理追回已发出有缺陷的报告单，并报告科室负责人。对其作必要的修改后再发出。

4．5．3 检验工作人员不得向无关人员透露检验结果及相关信息。4．5．4 检验报告使用者因特殊原因造成报告损坏或遗失时，只有从网络计算机能够调出者或登记本上有记录者，才可补发。

4．6 申诉及处理：检验报告申请人或被检者对检验报告的内容有异议时，可向本室负责人或上级单位提出申诉，按投诉处理程序执行。5.支持性文件

《迈瑞480 生化分析仪操作规程》 《生化样本管理程序》。

第五篇：检验标本采集处理

一﹑临床常用检验项目的标本采集和处理

（一）血常规检验标本

一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：

1.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；

2.应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3.采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后 应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。

（二）红细胞沉降率（血沉，ESR）测定标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：

1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；

2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）； 3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（三）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG、DD）标本

静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8）。采血注意事项：

1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）； 3.应单独1管血；

4.必须准确采血至刻度线2.0ml；

5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块； 6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（四）血型 与 血交叉标本

为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：

1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）； 2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml； 3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。

（五）尿液常规检查标本

１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：

（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；

（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；

（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为:①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐（hydrochloric ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。

２.尿液常规检查标本采集方法：

（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；

（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。

（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。

（六）粪便常规检查标本

1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取； 2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；

3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；

4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；

5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。

6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。

7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

（七）浆膜腔积液检查标本

（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；

（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用 无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。

（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；

（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

（八）临床化学检验标本

临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：

1.多项化学检测一般可采1管血；

2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml； 3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；

4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。

5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。

（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。

（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

（5）实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。

（6）关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）

①离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；

②温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。

③再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。

（7）离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前）(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；(2)分离出的血清或血浆的储存：

①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC 48h以上储藏于－20ºC；

② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；

③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；

④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；

⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。

（九）血气分析标本

血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为： 1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；

2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可； 3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；

4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；

5.标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。

（十）微生物学检验标本

微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项

（1）标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率； 3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

（2）标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。

（3）标本验收

1）实验室只能接受和处理合格标本；

2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联

（4）处理

根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。2．微生物学检验标本采集和处理

（1）尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml 2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；

3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；

4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用； 5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。

（2）粪便标本采集和处理 1）采集时间：

①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；

③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：

① 自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；

②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。

（3）痰及下呼吸道标本采集和处理 1）自然咳痰法：

① 晨痰为佳；

② 先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；

③ 再用力咳出呼吸道深部的痰；

④ 痰量不得少于1ml；

⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。

（4）血液及骨髓培养标本

1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；

2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检； 3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；

4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；

5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；

6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检(5）脑脊液培养标本

1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。2)采集方法：

①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）

（7）胃液及胆汁培养标本

抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。

（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。

（10）泌尿生殖道培养标本

1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。

2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。

4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。

5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。

6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。(11）烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。

（12）厌氧菌感染培养标本 1）标本采集

①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；

②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；

③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。2）标本运送

① 标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；

② 运送方法：

a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送； b含运送培养基的无氧小瓶运送； c厌氧罐运送（组织块）；

d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送； e一般不采用棉拭子法。(13）真菌感染培养标本 1）浅部真菌感染标本采集

① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；

② 指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；

③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。2）深部真菌感染标本采集

① 血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；

② 脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。

（14）病毒感染标本

1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。2)标本采集方法：

① 呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；

②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；

③ 尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；

④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。

3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。