标本采集和处理对凝血四项检验结果的影响

第一篇：标本采集和处理对凝血四项检验结果的影响

标本采集和处理对凝血四项检验结果的影

响

临床实验室及时、可靠的检验结果，除了按实验室严格的质量控制外，还与医护人员正确采集检验标本有很大关系，一份送检标本合格与否，往往是影响检验结果的重要环节。

多数临床医生认为检验结果的及时性与可靠性由检验科来保证，而实际工作中导致检验结果质量误差的因素有很多方面，如患者个体的差异、仪器误差、操作者个体误差和采样送检是否正确等。为了保证检验结果的及时性和可靠性，应注意标本检验分析前的质量控制。1、标本采集 由于小孩、老人、烧伤、低血压休克等因素造成静脉血不易抽取，抽血时操作不规范，使标本中有肉眼可见的微小凝块，使PT、APTT、TT延长，FIB降低。血液与抗凝剂未能充分混匀，也可以使标本中有肉眼可见的凝血块。其原因为：往往由于工作忙，标本采集后未能及时处理，抽血时操作不规范，使标本溶血，造成PT、APTT缩短，TT延长。血量与抗凝剂比例减少，造成PT、APTT显著延长。长时间扎止血带、静脉穿刺不能一次成功造成血管损伤或组织因子进入血液。造成检验结果波动的因素很多，而不规范标本采集送检是其最主要的原因之一，为了避免检验结果与临床诊断不符，造成不必要的抽血和复查，增加患者的负担，建议标本采集时，护士应加强责任心，以科学的态度采集及处理标本，减少不必要的误差。2、标本的送检 在实际工作中，标本送到实验室检验时，为了避免实验室由于本身某些因素造成的结果误差，我们建议：（1）加强检验人员的个体素质，不断提高基础理论水平及现代的技术水平。在日常工作中，检验人员必须严格遵守实验室的规章制度，严格执行操作规程，对不合格标本予以拒收，对检验的结果做到心中有数。（2）加强与临床医护人员的联系，对检验中出现异常和某些阳性结果应主动及时与临床医生取得沟通，对临床有疑问的结果做到合理解释，尽职尽责地为临床抢救工作及手术等提供及时准确的检验结果。

第二篇：血液标本采集对检验结果的影响分析

血液标本采集对检验结果的影响分析

摘要：目的：探讨血液标本的采集对于临床上检验结果所带来的具体影响，从而避免一些问题的出现。

方法：从采血的具体部位、采血方法、采血时间、标本的放置时间、采血的体位等多方面进行分析，找出容易出错的地方。

结果：采血过程中所使用的方法不同以及相关的其他因素都在一定程度上影响了最终的检验结果。

结论：在对血液标本进行采集时，要注意容易出错的一些地方，比如血液标本的采集部位以及放置时间等，这些因素都会对最终结果产生十分明显的影响。

关键词：血液标本采集影响因素最终结果

Doi：10.3969/j.issn.1671-8801.2014.05.596

【中图分类号】R9【文献标识码】B【文章编号】1671-8801（2014）05-0367-01

现代医学技术的发展越来越离不开实验室内部的检验结果，在对病人的身体情况做最终的鉴定时，都需要用到实验室的检验报告，因此不难看出，检验结果对于医护人员和病人及其家属来说意义重大。实际医学研究中，诸多因素都会影响到最终的化学检验结果，在这其中，因为标本的采集过程出现漏洞造成结果出现误差的现象是十分普遍的，针对这一问题，笔者根据临床研究资料，提出了一些自己的观点和看法，部分意见仅供参考。

1资料和方法

1.1一般资料。选取我院在2011年至2013年三年期间收治的共400例病人的血液标本作为临床研究资料，其中，男性260例，女性140例，年龄在15岁至80岁之间，平均年龄45.6岁，所有病人的抽血过程均由医护人员进行。

1.2方法。样本由护理人员送达检验科，在收到杨本之后，核对了所有的患者信息，确保没有出现失误，检验样本的过程包括了常规、免疫、生化检验等，检验过程中针对一些影响因素（比如：采血的时间、采血的具体部位和方法等）仔细观察检验结果之间的差异。

2结果

对最终的实验结果进行检测发现，所有样本中出现不合格的有25例，占总人数的6.25%，在不合格的血液样本中，因为采血容器的不同、采血的时间不同、混匀情况、采血的血量不同等多种因素造成的结果不合格的有15例，占总人数的3.75%，样本在送到检验的过程中因为没有做到及时、低温等原因造成的检验不合格的有9例，占总人数的2.25%，1例标本出现了溶血现象，占总人数的0.25%，没有出现凝块的现象。通过对比存放以及传送过程对于检验结果的影响

3讨论

3.1采血具体时间和部位对于结果的影响。在采血过程中患者因为会受到各种因素的影响，导致最终的结果出现误差，因此，在采血之前要让患者有一定的心理准备，采血时间的选择上要尽可能的合理。一般情况下，禁食之后的8个小时就可以进行空腹的采血，通常都会在早上用餐之前进行采血，这样就可以避免因为白天的活动以及用餐对检验结果造成的影响。因为人的生理有着周期性的变化，一天之中身体各方面的表现各不相同，因此，不同时间段进行采血，最终得到的结果也是不尽相同。

3.2采血方法的选择。一是选择在末梢进行循环性质的采血，这种采血方法一般用于急诊或者床边的项目，最终的检验结果只能代表局部范围内的结果，成人可以选择在手指端，婴儿选择在足跟部位进行血液样本的采集，穿刺的深度要合理控制，不要出现挤压的现象。第二个就是进行静脉采血，这种方法指的是在需血量比较多的时候或者要了解病人的全部身体状况时经常采用的一种方法，一般选择在病人的腕部、肘部或者手背的静脉进行血液样本采集，采血过程所使用的器材要保持干净、清洁，抽血过程不能出现大量的气泡，在样本采集过程中要避免出现污染血液的现象发生。

3.3放置时间和体位对最终结果带来的影响。在血液离开人体之后一般会发生一些变化，比如说白细胞仍然在进行一系列的新陈代谢，这就会使得一部分的葡萄糖经过反应之后转变为乳糖，从而导致血糖含量进一步降低，促进二氧化碳的含量上升，导致一部分离子进入到血浆内部，从而对最终的检验结果造成影响。因此，在采集到了血液样本之后，要立即送到检验科进行检验，避免出现污染。

3.4止血压迫时间的合理选择对结果的影响。一般来说，在收集完血液样本之后，会选择在一分钟之内对病人进行止血压迫，再见到回血之后就要立刻放松止血带，使用的时间过长就会导致血管局部出现缺氧现象，从而导致血液内乳酸过高，钾离子等也会因此跑到细胞外部去，导致最后的检测结果出现误差，同时，采血过程切忌反复对采血部位进行拍打或者挤压。

参考文献

[1]谭晓玉，庞保军；检验标本的正确采集与处理[J]；实用医技杂志；2003（08）：125-127

[2]石敏，江慕尧，张秀琼；血液标本采集中护理因素的影响及对策[J]；护理管理杂志；2004（07）：324-325

[3]郭月丽；林燕燕；临床血液标本采集对检验结果的影响[J]；卫生职业教育；2011（03）：542-543

第三篇：标本采集对医院检验结果的影响研究

描述：目的：分析观察标本采集对医院检验结果的影响。方法：对濮阳市第三人民医院2011下半年到2013上半年的100份住院患者的血液标本进行回顾性分析，分析在不同时间采血、不同部位采血、标本溶血与标本送检时...【摘要】 目的：分析观察标本采集对医院检验结果的影响。方法：对濮阳市第三人民医院2011下半年到2013上半年的100份住院患者的血液标本进行回顾性分析，分析在不同时间采血、不同部位采血、标本溶血与标本送检时间对医院生化检验结果的影响。结果：医院生化检验结果中，对于标本采集时间、标本采集部位以及标 本溶血、标本送检时间都会影响到医院的生化检验结果，与正常标本参考值比较差异差异均有统计学意义（P<0.05）。结论：在临床中，为提高医院检 验结果的准确性，应该严格控制在采集标本上的误差，值得在实际中推广。

在医院临床治疗方面，在对患者进行生化检验中，为提高生化检验结果的准确性，对于血液标本的采集也提出了不同的要求，在采血时间、标本溶血、采血部位以及送检时间方面，都应该特别重视。以下本篇就对濮阳市第三人民医院从2011下半年到2013上半年的100份住院患者的血液标本进行分析，探讨标本采集对医院检验结果的影响，具体报告如下。资料与方法

1.1 一般资料 根据濮阳市第三人民医院2011下半年到2013上半年的100份住院患者的血液标本作为研究对象，对这100份标本分别采用反复洗涤的玻璃试管以及真空分离胶采血管、一次性塑料管、普通抗凝管放置在室温内。

1.2 方法 对于100份血液标本的采集检验中，将会采用日产的CA400全自动生化分析仪进行检测，根据临床生化指标，分别从不同的采血时间、采血部位以及标本溶血、送检时间对标本进行生化检验。

1.3 统计学处理 采用SPSS 12.0软件对所得数据进行统计分析，计量资料用（x±s）表示，比较采用t检验，计数资料采用 字2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。

结果

血液采集部位的不同将会影响医院生化检验的结果，血液采集的时间也会影响医院生化检验结果。并且标本溶血、送检时间的不同也将会对血液生化检验有一定的影响，与正常标本参考值比较差异差异均有统计学意义（P<0.5）。见表1、2。

讨论

据悉，在医院的临床生化检验中，其中血液标本就是最常用到的人体体液标本，然而在实际的检验过程中，由于患者个体存在的差异，以及各种生理生物学的因素，包括在采集血液标本中的时间、采集方式的不同、检验室仪器设备的误差等都将会引起医院检验结果的波动。以下就来具体介绍血液标本采集对 生化检验结果的影响。

3.1 血液标本采集部位的影响 在临床工作中，对于血液标本采集部位的不同，也将会影响医院生化检验结果。因此在临床工作中，应该提高血液采集的工作效率，应该对正在输液或输血者对侧肢 体进行采血，切忌不能在静脉推注后进行标本采集。沈华生标本采集误差对血生化检验的影响中指出，有些护士为了减少患者的痛苦，直接从针头处采血，不 仅会使采集到的血液标本有所稀释，还将会致使检验结果与实际值的差异，降低检验的准确性。

3.2 采集血液标本的时间 在临床上对患者进行生活检验中，应该要求患者的血液标本采集是在空腹时采集，并且医护人员还应该提示患者禁食时间，强化血液标本采集的准确性，提高生化检 验结果的准确率。李燕等溶血和输液对生化检验结果的影响中指出，对于临床上生活检验中，对于血液标本采集的时间，由于人们在进行一顿标准餐 后，其体内的甘油三酯、血糖都可增加到53%，而且胆红素还可以增加到16%，对于体内的天门冬氨酸转移酶、丙氨酸转氨酶、钾也会有所增加，这些都将会影响生化检验结果的准确性。另外在标本采集中，患者还应该避免运动，因为运动中由于出汗和呼吸，都将会加快体液分布以及数量发生改变，期刊 论文增加血液循环，使得患 者体内的血糖、钾、钠、钙等值有所改变影响检验结果的准确性。朱强等在临床生化检验的标本采集处理及质量控制中指出，血液采集中，应该掌握准确的时机，有效降低对生化检验结果的影响。因此在实际的生化检验中，对于标本采集前，应该嘱咐患者空腹12 h，以晨起空腹为最佳，此时的检验结果较准确。对于饮酒后的患者，以及对于输液患者，其采血时间应在缓解一段时间之后再进行标本采集工作。并且在标本采集 前，还应该嘱咐患者避免做剧烈活动，缓解情绪紧张，当患者情绪得到稳定、休息了30 min之后再进行血液标本的采集工作，在采血前，患者需要禁止进刺激性的食物，并且在用药方面应明确标识，从更多方面去保证医院检验结果的准确性。

3.3 标本溶血的影响 在医院生化检验中，对于标本采集中若是标本溶血，也将会影响检验结果的准确性，溶血后的细胞内，其含量高的成分将会进入到血清中，使血清中该成分的含量升 高，纵使是轻度溶血，也会使血清的检测值有明显升高。溶血标本与正常标本结果的比较中，对于生化检验结果有很大的影响，降低生化检验结果的准确率。杜秋香等在生化检验结果异常的原因分析中指出，标本溶血中若是红细胞内含量过低，其也可对送检的血清产生稀释作用，从而使生化检验结果降低。因此在医院检 验中，若是标本溶血，应该再次取血来做生化检验，提高检验结果的准确性。

3.4 标本送检时间 在医院生化检验中，其结果也会受到血液标本送检时间的影响，这是因为当血液标本抽取后，当放置时间过久，就会导致标本中某些成分发生生化改变。陈秀兰等在血液标本采集和运送对分析前质量控制的影响中指出，对于血液标本的送检时间，将会影响生化检验的结果。如在血液标本采集中，若是标本送检时间过 长，就会导致白细胞产生降解作用，导致标本中的红细胞消耗能量，使得标本中产生细菌污染分解葡萄糖，降低血液标本中的血糖浓度。还有就是送检时间过久，就 会导致标本中红细胞的钾离子进入到血清中，使血清中钾含量升高，并且对于二氧化碳的逸散还可以使检验结果降低，也会导致血液标本的pH值发生变化，降低酶 活性。并且若是血样标本同时还被微生物污染，以及在高温情况下存放，还将会导致检验结果的严重失真。因此在实际的医院检验中，血液送检时间也会对医院生化 检验结果产生一定的影响，因此应该规范送检时间，降低标本检验结果误差的发生，对于血样标本在血液采集到血气分析，其检测全过程必须保证在15 min以内完成，并且还应该在隔绝空气的条件下进行血样抽取，在递送以及检测过程中也需要与空气隔离，提高检验结果的准确性。

3.5 提高标本采集准确性 医院生化检验结果的准确性，不仅与血液送检时间、溶血标本、血液采集部位以及标本采集时间都有一定的影响，因此在医院中严格控制标本采集工作，降低标本采 集中的工作失误，准确按时完成血液标本的检验，避免血液标本的污染，可以有效提高医院生化检验结果的准确性。根据刘燕血液标本采集对生化检验结果的 影响分析中指出，在临床中采血过程中，医护人员应该有严谨的工作作风，并且一定要严格遵循医院的各项护理操作规程，提高医护人员的业务技术水平。并且在工 作中医护人员也要认真执行“三查七对”制度，掌握基本的护理标准，认真按照护理工作制度进行工作，并且还要熟练掌握临床中的护理工作制度，医院应该加强对 医护人员的“三基”技能培训，有效强化医院生化检验中对标本采集的准确率，采取有效的管理制度以及措施，提高采血的成功率，这样不仅可以有效杜绝标本采集 中的差错，还可以提高生化检验的准确性，强化医院对患者诊治的准确率，有效避免医疗纠纷的发生。

总之，在临床中对血液标本的采集，是一项非常重要的工作，因此为确保生化检验结果的准确无误，可以真实反映出患者的病情，因此在血液标本采集及送检方面应该特别重视，提高血液标本的质量控制，这对与患者的临床诊断以及治疗都有着重要的意义，值得推广。

第四篇：检验标本采集处理

一﹑临床常用检验项目的标本采集和处理

（一）血常规检验标本

一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：

1.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；

2.应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3.采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后 应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。

（二）红细胞沉降率（血沉，ESR）测定标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：

1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；

2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）； 3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（三）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG、DD）标本

静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8）。采血注意事项：

1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）； 3.应单独1管血；

4.必须准确采血至刻度线2.0ml；

5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块； 6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

（四）血型 与 血交叉标本

为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：

1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）； 2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml； 3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。

（五）尿液常规检查标本

１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：

（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；

（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；

（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为:①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐（hydrochloric ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。

２.尿液常规检查标本采集方法：

（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；

（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。

（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。

（六）粪便常规检查标本

1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取； 2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；

3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；

4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；

5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。

6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。

7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

（七）浆膜腔积液检查标本

（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；

（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用 无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。

（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；

（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

（八）临床化学检验标本

临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：

1.多项化学检测一般可采1管血；

2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml； 3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；

4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。

5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。

（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。

（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

（5）实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。

（6）关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）

①离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；

②温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。

③再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。

（7）离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前）(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；(2)分离出的血清或血浆的储存：

①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC 48h以上储藏于－20ºC；

② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；

③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；

④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；

⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。

（九）血气分析标本

血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为： 1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；

2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可； 3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；

4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；

5.标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。

（十）微生物学检验标本

微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项

（1）标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； 2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率； 3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； 6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

（2）标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。

（3）标本验收

1）实验室只能接受和处理合格标本；

2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联

（4）处理

根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。2．微生物学检验标本采集和处理

（1）尿液标本采集和处理 通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml 2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；

3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；

4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用； 5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。

（2）粪便标本采集和处理 1）采集时间：

①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；

③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：

① 自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；

②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。

（3）痰及下呼吸道标本采集和处理 1）自然咳痰法：

① 晨痰为佳；

② 先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；

③ 再用力咳出呼吸道深部的痰；

④ 痰量不得少于1ml；

⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。

（4）血液及骨髓培养标本

1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；

2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检； 3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；

4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；

5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；

6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检(5）脑脊液培养标本

1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。2)采集方法：

①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）

（7）胃液及胆汁培养标本

抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。

（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。

（10）泌尿生殖道培养标本

1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。

2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。

4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。

5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。

6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。(11）烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。

（12）厌氧菌感染培养标本 1）标本采集

①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；

②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；

③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。2）标本运送

① 标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；

② 运送方法：

a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送； b含运送培养基的无氧小瓶运送； c厌氧罐运送（组织块）；

d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送； e一般不采用棉拭子法。(13）真菌感染培养标本 1）浅部真菌感染标本采集

① 皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；

② 指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；

③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。2）深部真菌感染标本采集

① 血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；

② 脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。

（14）病毒感染标本

1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。2)标本采集方法：

① 呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；

②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；

③ 尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；

④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。

3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。

第五篇：收集血液标本的样品管对生化检验结果的影响

内容摘要：

【摘要】 目的 探讨收集血液标本的样品管对生化检验结果的影响。方法 严格按照日常操作常规对196名健康查体人员采集静脉血20ml，分别采入反复洗涤的玻璃试管、一次性塑料管、真空分离胶采血管和普通抗凝管，离心后上机测定常规生化项目。结果 采用spss软件对试验数据进行统计学分析，试验证明采用各种不同的样品管收集血液标本对生化结果是有一定的影响的。

【关键词】检验结果血液标本样品管

检验结果的准确度代表一个实验室的技术水平，实验室通过室内质控可以减少因操作、试剂和仪器性能的改变的因素引起的误差，通过室内质评来评价实验室测定结果的准确性和可比性[2]。近年来由于大型全自动生化分析仪的使用和方法学的改进及标准品质量的提高，大大提高了临床生化分析的精密度，使分析的批内和批间变异明显下降。所以测定结果的准确度往往不是来自分析过程本身而是来自分析过程之外(即分析前程序)，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验程序时终止的步骤，包括检验申请、患者的准备、原始样品的采集、运送到实验室并在实验室进行传输[1]。

本文就原始样品的采集过程中收集血液标本的样品管对生化检验结果的影响进行分析： 1材料和方法 1.1材料 1.1.1样品管

采用反复洗涤的玻璃试管、一次性塑料管、真空分离胶采血管和普通抗凝管4种不同的样品管收集同一受试者的静脉血。1.1.2试剂

各种生化项目试剂分别使用上海科化和北京中生试剂盒(试剂盒均在有效期内)标准品均采用试剂盒所带的标准品；质控血清采用宝灵曼(罗氏生化质控)批号：157934～07。1.1.3仪器设备

belkmanculteraij,egtrtm21r低温高速离心机，tba-120fr型全自动生化分析仪。1.1.4样本收集

对196名健康查体人员采集静脉血20ml，分别采入反复洗涤的玻璃试管、一次性塑料管、真空分离胶采血管和普通抗凝管置于室温。1.2方法

1.2.1根据试验人数检查试剂是否充足并检查各生化项目的试验参数。

1.2.2将采集的血液标本静置lh后置于离心机中离心(2000r／min)10min，随即取出样品上机测定各常规生化项目。

1.2.3采用spss软件对试验数据进行统计学分析，所有数据均以x±s。2结果

采用不同类型的样品管收集血液标本测得196名健康查体人员的各生化项目结果，反复洗涤的玻璃试管中ca、k、bun结果明显高于其他样品管，而alt、ast、ldhglu结果明显低于其他样品管；一次性塑料管中k略高而alt、ast、ldh、glu略低于其他样品管；真空分离胶采血管和普通抗凝管中得生化结果比较一致。3讨论

采用各种不同的样品管收集血液标本对生化结果是有一定的影响的。长期以来我国临床生化采血没有统一的器械，有些单位使用反复使用的玻璃试管，有些单位使用一次性塑料试管，使用中存在不少问题。如试管洗涤不净造成溶血或残存物质的干扰使得离子和氮类测定结果误差较大；一次性塑料试管收集血液标本，血清中不含外加化学物质，测定结果较客观的反映血液中的物质水平，但是血液 自然 凝固析出血清的时间延长，从而容易造成被检成分的改变，如葡萄糖酵解、酶活性降低、细胞中k离子外溢等，普通抗凝管由于抗凝剂得成分不同对试验项目的影响也不同，而且抗凝管种类较多也给工作带来不便，容易造成错误。真空分离胶采血管是一种较为理想的采血装置，它利用促凝剂，约在15min左右使血液凝固，离心后呈现三层：血清-分离胶-血细胞，由于在中间把血清和血细胞隔离，这样可以使血清成分稳定，经过初步评价试验证明其对大部分生化测定结果无影响，对葡萄糖和酶类有保护作用[2]。实现临床生化测定血样单一真空采集减少了采血人员的不便，适用于常规和急诊生化测定是一种理想的采血装置。随着检验科室内质控制度的完善，开展室内质评不断推动临床生化检验质量的提高，但文中提到的血液标本收集的样品管引起的分析误差仅仅靠质量控制是不能消除的，因此强调分析本身质量控制的同时也必须同样强调分析过程之外的质量控制。