标本采集相关注意事项（精选五篇）

第一篇：标本采集相关注意事项

标本采集相关注意事项

一、静脉血标本的采集：

静脉采血时病人方面应注意的问题

1、避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨采血，住院病人可在起床前采血，回家住的病人应至少休息15分钟后采血。

2、注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食水12h后空腹采血。

3、药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。静脉采血时护士应注意的问题

4、采血的顺序：采血顺序为：血培养→生化、免疫项目→凝血→血流变、微量元素→ 血沉/血常规→氟化钠血糖

5、采血时止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变。

6、当一侧手臂输液时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度。

7、血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热等等。

8、静脉采血后混匀次数说明：血培养瓶混匀8-10次，含分离胶（黄帽）的采血管混匀5次；凝血管（蓝帽）混匀3-4次，含肝素（绿帽）和血常规（紫帽）抗凝采血管混匀8-10次；血糖（灰帽）氟化钠抗凝采血管混匀8-10次；混匀方式如下图（图为混匀1次）。*注意要轻柔混匀，不要剧烈震荡，以防细胞破裂影响检验结果。

二、血培养标本的采集

血培养标本的采集指征及最佳时机

病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养： 1.发热（大于等于38℃）或低温（小于等于36℃）2.寒战

3.白细胞增多（大于10X109/L，特别有“核左移”时）4.粒细胞减少（成熟的多形核白细胞小于1X109/L)5.血小板减少 6.皮肤、黏膜出血 7.昏迷

8.多器官衰竭 9.血压降低 10.呼吸加快

寒战高热前1h左右菌量最多，建议在寒战高热时采血培养

在寒战或高热高峰到来之前尽快（10分钟内）从不同部位采集两套血培养。 如果从导管或输液港采集导管血，不需要使用盐水冲洗管道内残留的抗凝剂，其抗菌作用可被培养基充分稀释。 应至少做2套血培养，其中至少有1套外周血，同时应尽快无菌操作从导管或VAP采集另一套血培养。

 选定采血点后，先对培养瓶进行消毒，弃去培养瓶金属盖  75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,待干60秒。采血前质量保证：皮肤消毒 三步法：

范围：直径>5cm 1.75%酒精擦拭静脉穿刺点 >30秒；

2.1%2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒，从穿刺点由内向外环形消毒；

3.75%酒精脱碘。

擦酒精 涂碘伏 酒精脱碘 血标本采集质量保证：采血量

1.每位患者采集2~3套血培养（40~60ml）在不同部位穿刺.2.1套（20ml）：一个穿刺点，通常为1个需氧+1个厌氧(各10ml)，提高阳性率。3.如果采血量不足，应优先将血液注入需氧瓶，剩余血液注入厌氧瓶。因为大部分需氧菌、兼性厌氧菌、酵母菌可以在需氧瓶中生长。

4.用注射器（采血注射器不能含有抗凝剂）无菌穿刺取血后，勿换针头，排除针头的空气和少量血液后，直接注入血培养瓶；  注入的顺序：先厌氧血培养瓶→再需氧血培养瓶，避免发生最后将余血注入厌氧瓶时同时将空气注入的情况。5.如用蝶形针采血，完成采血后  注入的顺序：先需氧血培养瓶→再厌氧血培养瓶。注完后应先拔出与厌氧瓶连接的针，再拔出刺入患者血管的针，以避免气体进入瓶中。血培养标本的送检

 室温：立即送检；  不可冷藏或冷冻；

 2小时内上机；延迟上机可能导致假阴性。 血培养标本应按要求尽快送往实验室，不得超过2小时。如无法及时送检，血培养标本需室温（20-25℃）保存。

三、痰标本的采集 采集方法 1.自然咳痰法

以晨痰为佳。用清水反复漱口，深呼吸几次后用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液，不要唾液。无痰或痰量极少者可用3～5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。

如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。在抗生素应用前采集痰标本;咳痰标本应用最早且广泛，但也是最受争议的标本；取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口;深咳，采集标本过程中最好要有专业的医务人员指导。2.经人工气道吸痰标本采集 注意事项

1.痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。室温下耽搁数小时，定植于口咽部的非致病菌过度生长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显降低。

2.在临床上咳痰仍是诊断肺部感染最常用的标本，但咳痰也最易被口咽部正常菌群污染。痰液标本的细菌学检验，必须区分是病原菌还是来自上呼吸道的正常菌群。经过洗涤处理的痰液或自气管镜采集及气管穿刺所获标本，结果比较可靠。3.由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革兰阴性厌氧细菌，而且缺乏可靠的方法区分它们究竟是致病菌还是定植菌，因此不主张对咳痰标本进行厌氧菌培养。4.约有1/4～1/2肺部感染患者可能发生菌血症，应同时做血培养。

5.无论是何种方式留取痰标本，都应该尽可能避免污染菌、口咽部定植菌的污染。

四、尿标本的采集

尿培养采集时常出现的问题

1.收集的尿液不新鲜，放置时间超过1小时，细菌大增，出现假阳性。2.膀胱内尿液停留时间短（不到6小时），或饮水太多，稀释了尿中细菌。3.中段尿收集不合标准，外阴消毒对尿培养影响很大，消毒液过多而混入尿标本抑制了细菌生长，出现假阴性结果。

4.尿培养前曾使用抗菌药物，可出现假阴性。女性患者清洁中段尿采集方法：

清洁和采集标本时保持两腿分开（男性：翻转包皮并清洁龟头（阴茎头部）余同女性。）清洗：在采集标本前充分清洗。使清洁剂，尽可能认真地擦拭生殖器区域，从前向后擦拭皮肤折叠处。

冲洗：在使用肥皂片清洗后，用水湿润纱布片同向从前向后冲洗。每个纱布片只使用一次即丟弃。用手指拿着采样杯外侧，不要接触杯口边缘。首先，将少量尿液排入厕所，然后用样品杯采集半杯尿液，盖紧样本杯盖子。留置尿管尿培养标本采集方法

 对长期留置尿管的患者进行常规尿培养，可能除流行病学意义没有其它价值。这些患者通常会培养出大量潜在病原菌。

 可选择的尿标本是从留置尿管的采样口采集的标本。使用无针的尿液采集端可增强操作安全性 操作：

 将导管夹闭，在管中采集尿标本，但夹闭时间不能超过30 min；  使用酒精棉签消毒采样口（如果没有采集口，消毒采样导管部位）；  将针头插入采样管，将尿液吸入注射器；  将尿液转入无菌容器；

 在申请单上注明标本采集自留置导尿管。送检

 尿标本在室温中会使病原菌和污染菌同时生长。

 所有的尿培养标本采集后必须在30min内送检进行培养。

 若采集后不能在30min内送检进行培养则必须冷藏。冷藏的尿标本应当在24h进行送检培养。

五、各种标本送检的时间要求

标本送检的时间要求

1.血常规检测标本采集后应立即送检，不能立即送检的样本也不应超过2小时，因细胞形态学检查必须在4小时内将涂片制成，样本保存室温即可。

2．粪便标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应在室温保存，但需在4h内完成检验。

3．脑脊液采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常温立即送检，实验室收到标本后应立即检验。脑脊液标本送检的理想时间为15min内，半小时送检是可接受的，如果送检时间超过1h，则会影响结果，须与临床沟通，并说明由于标本延时结果可能受到影响。在结果报告时，在备注处注明此情况。4.浆膜腔积液（胸腹水）：常规检验标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应室温保存，但需在2h内完成检验。

5.凝血功能检测标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应以3000r/min离心10分钟，在2小时内分离血浆，需在4小时内测定.6.尿标本运送：必须保证标本运送过程中的安全，防止溢出。溢出后应立刻对环境进行消毒处理。在标本采集后2小时内完成检验。

7．动脉血气：保证标本运送的及时性，标本采集后应立即送检。如不能及时送检，应放入冰箱中2-8℃保存。必须保证标本运送过程中的安全性，防止过度震荡、防止标本容器的破损、防止标本被污染、防止标本及唯一性标识的丢失和混淆、防止标本对环境的污染、水分蒸发等。如有标本溢出，溢出后应立即对环境进行消毒处理，尤其小心针头的暴露。8.血培养标本：采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常温立即送检，实验室收到标本后应立即放入血培养仪中进行培养。如果实验室收到采血量不足的血培养标本不必拒收，仍需进行培养，但需在报告单上注明“送检血液标本量未达到要求，会影响结果的灵敏度”。

9用于生化检验的标本采集后应立即送检，不能马上送检的可暂置4℃冰箱保存，但应在4h内检测。

10免疫血标本标本采集后应立即送检，或及时分离血清暂放4℃短时保存；穿刺液标本的微生物检查送检要求

11.一般胸腹水标本采集后，常温15分钟内送至检验科，若不能及时送检，室温保存不超过2小时。若做真菌培养需4℃保存。

第二篇：标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

医学检验又称临床检验，是指通过感官观察，试剂反应，仪器分析等，对离体标本如体液，分泌物，排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断，病情判定，疗效观察，预后评估等提出实验数据。

检验结果的准确与否，与病人采样前的状态，准备，取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法，时间，饮食的要求，药物的影响，标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此，护士要有对病人负责的精神，科学的工作态度，严谨的工作作风，一丝不苟地做好临床标本的采集工作，并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断，为治疗护理提供参考依据。各种标本采集的注意事项的重要意义

护士承担着大多数标本的采集任务，由于标本的来源，性质，采集方式不同，将直接影响临床检验结果的准确性。因此，护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况，明确采集标本的要求，以保证标本质量，为临床诊断提供可靠依据。1 血标本采集方法及注意事项

采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，解除病人的恐惧或焦虑，安慰病人，使之处于安定状态，避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求，采血的时间也不同：

空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。

餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。

急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升，12-72小时达高峰，4小时左右恢复正常。留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。采血部位

动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。

静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。

毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。

采血器材：a,注射器，瓶塞，玻璃或塑料试管，防腐剂，抗凝剂，标签等。B，真空采血器：以不同彩色标记各种试管盖，用于不同实验。（我院常用的真空采血管规格及标志）

添加剂：一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸（EDTA）二甲抗凝，枸橼酸盐，草酸钠（钾）均系与钙作用而抗凝；肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用，用于血PH，血气，内分泌激素，氨基酸，药物浓度，6-磷酸葡萄糖，染色体等检查。用抗凝试管时，每管的抗凝剂与采血最大量有关，要求与血液充分混匀，不够可致血液凝固。标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。全血：用抗凝剂。

血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。

血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。操作重点

认真查对病人姓名，检查项目，留取标本要求。

严格无菌操作：采血前，常规消毒皮肤，使用一次性注射器或真空采血器。采血后。必须仔细检查病人，有无继续出血，血肿等情况，特别是昏迷或半昏迷病人。必要时要找医生处理。止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。

注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。操作完毕按要求处理注射器等污染物品。有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。尿标本采集方法及注意事项 方法：

导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送检。

中段尿采集法：是临床上采用最多的方法。女性病人应以肥皂水或1：1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20毫升于无菌容器内，立即加盖送检。

肾盂尿采集法：为确定菌尿是否来自肾脏，可用导尿管采集肾盂尿，一般应请泌尿科医生协助进行。

膀胱穿刺尿采集法：将病人耻骨上皮肤消毒后，以无菌注射器做膀胱穿刺。取得尿液后，针头插于橡皮塞上送检。只要用于厌氧菌的培养。

集尿法：做结核分枝杆菌培养时，可用一洁净容器，留取24小时尿液，取沉渣10—15毫升盛于清洁瓶内送检。尿标本采集注意事项：

尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。尿液不能及时送检应适当防腐，防腐剂的选择取决于要分析的物质所采用的方法。收集期间，标本应放入冰箱或阴凉处，以免细菌繁殖，细胞溶解等。收集完毕，要立即送到实验室（一般夏季1小时以内，冬季2小时内完成检验）。

标签和申请单上，应写明标本收集的年月日，核对姓名。尿标本应避免经血，白带，精液，粪便等混入。尿液检验常用项目送检要求：

一般形状检查:收集24小时尿按每升尿液加5毫升甲苯防腐，送检。参考值健康成人：1.0—1.5L/24h 小儿：按体重（Kg）算，较成人多3-4倍。尿色检验尿透明度尿味检验：采集新鲜尿液，及时送检。

尿酸碱度（尿ph）尿比重（SG）显微镜检查尿葡萄糖（GLU）尿酮体（KET）尿胆原（UBG）尿胆红素（BIL）尿沉渣检查:晨起空腹，患者清洗外阴后，自采中段尿液10ml，1h 内送检。尿蛋白定量（PRO）:：收集24h尿按每升尿液加5ml甲苯防腐，送检。尿本周蛋白定性(B-JP)乳糜尿：取采集新鲜尿液10ml于干净容器中送检。尿隐血试验肌红蛋白定性试验(Mb)：采集新鲜尿液5ml于干净试管中送检。

尿爱迪记数(Addis)要求:晚上8时排尿弃去，以后12小时尿液（包括次晨8时尿液）全部收集于干净容器中送检。

尿妊娠试验：晨尿或即时新鲜尿液5ml送检。大便标本的采集方法及注意事项

自然排便采集法挑取有脓血，黏液部分的大便，液状大便取絮状物，盛于灭菌的广口瓶或蜡纸盒中，或者置于保存液，增菌液中送检。

直肠拭子方法：将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，插入肛门4-5厘米（幼儿2-3厘米）处，轻轻旋转，取直肠表面黏液后取出，放入无菌试管或保存液中送检。

如不能立即送检应放入卡里-布来尔（Cary-Blair）运送培养基或PH值7.0的磷酸甘油（0.033mol/L磷酸盐缓冲液与等体积的甘油混合）中运送和保存。粪便标本采集的注意事项

粪便标本的采集容器可用不吸水的纸盒，要求清洁，干燥。

粪便的寄生虫检查，需多次留取标本。收集蛲虫用透明纸带方法，较肛门拭子为优。收集标本后，要迅速送于实验室。

标本要新鲜，且不可混入尿液。其留取量约5g(常为指头大小)。

作大便潜血试验前3天嘱病人禁食肉类食品，铁剂及大量绿色蔬菜。检查血吸虫毛蚴孵化，粪便量不得少于30克，标本要新鲜。

阿米巴及其他原虫之滋养体检查，从排出粪便到检查完毕不宜超过30分钟。冬天需采取保暖措施，迅速送检。培养阿米巴所用分辩量须在2克以上。浓缩查虫卵，包囊，粪便量宜在20克以上。痰液及支气管分泌物标本的采集

自然咯痰法：用清水反复漱口后用力自气管深部咳出第一口痰，置于无菌容器中尽快送检。气管镜采集法：用气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或者用支气管刷直接取得，该法病人耐受性较差。

小儿取痰法：用压舌板向后压舌，用棉拭深入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部和气管分泌物，粘在棉拭子上，取出检查。

气管穿刺法：通过气管穿刺取得的痰液主要用于厌氧培养。

胃内采痰法：结核病人，尤其是婴幼儿病人不会咳痰，且有时把痰误咽入胃内，可采胃内容物做结核培养，其阳性率比咯痰法高10%左右。该方法用于清晨空腹是，将胃管插入胃内，用注射器抽取胃液。痰标本采集注意事项：

病人应在护士指导下，早餐前漱口后，用力咳出气管深处的呼吸道分泌物留作标本。查找结核杆菌或细菌培养需连续留取痰标本。

新鲜痰液作标本，不可含有唾液及鼻咽部分泌物。小儿痰液收集困难时，可用棉拭子刮取标本。体液及排泄物标本采集注意事项： 脑脊液：

（一）标本的采集：以无菌方法采取脑脊液3-5毫升，盛于无菌试管或小瓶中送检。

（二）注意事项：1）标本收集好后立即送检，标本量每次至少1-2毫升。2）细胞计数管应避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用草酸钾或EDTA抗凝。穿刺液标本的采集方法

由临床医生行穿刺术抽取，在病人用药之前或停药1-2天后进行。胸水腹水抽5-10毫升。心包液关节液抽1-5毫升。将采集物盛于含有或不含抗凝剂的无菌试管或小瓶内，充分混匀后，立即送检或置于4度的冰箱保存。胸膜腔积液的注意事项：

穿刺抽取胸水腹水等标本后，要及时送检，以防细胞变性或细菌破坏溶解。标本采集量，每次5-10毫升，如需测比重的标本应在60毫升以上。

为防止凝固，加入EDTA或草酸钾抗凝，每0。1毫升可抗凝6毫升浆膜积液。生殖道标本的采集方法及注意事项 分泌物标本：尿道及尿道口外阴部糜烂面及溃疡标本应先用生理盐水清洗局部后，再用无菌棉拭子采集；阴道及宫颈口分泌物则在窥阴器下操作，淋菌双球菌用用革兰染色油镜镜检，阴道滴虫用盐水涂片检查；前列腺液则需进行前列腺按摩获取。穿刺液标本：生殖器庖疹消毒后用无菌皮试注射器刺入采取疱疹液；女性盆腔脓肿则在阴道内部消毒后由直肠子宫凹陷处进针抽取。细菌培养标本采集方法及注意事项 采集方法：

血液骨髓的细菌培养：a普通培养：在严格无菌操作下抽取静脉血3-5毫升（骨髓液1-2毫升）接种入30-50毫升的培养基中，立即放入35度温箱中培养。B感染性心内膜炎患者血培养：采血10毫升培养。C布鲁杆菌培养：采血10毫升接种入肝浸液培养基中培养。各种体液的细菌培养；取各种体液如胸水心包液关节液鞘膜积液等标本5-10毫升，至少1毫升，置无菌试管内立即送检。

脑脊液的细菌培养：经穿刺以无菌方式收集脑脊液2毫升以上，置无菌试管中立即送检。粪便细菌培养：采取新鲜粪便的脓血黏液部分，或乙状结肠镜时取脓性分泌物，放入清洁容器，立即送检。

尿液细菌培养：按中段尿留取法留取尿液0.01毫升涂于血琼脂培养皿。

痰脓及各种分泌物的细菌培养：嘱患者早晨起床后以清洁水漱口，然后由气管内咳痰数口，于无菌试管内或培养皿中，用无菌生理盐水洗涤后接种。

厌氧菌培养：用注射器抽取的深部脓肿胸水腹水脑脊液胆汁标本，抽取后立即排出空气，再于针头上插无菌橡皮塞，立即送检。二注意事项

送检标本，必须使用清洁无菌试管或其他容器。

采集标本应严格执行无菌操作，防止细菌感染。慎防标本玷污容器外部，严防容器翻倒或破裂而导致污染及传播。

标本中不得加入防腐抗菌药物或其他药物。血液脑脊液骨髓胸水腹水等标本，应在使用抗菌药物前采取。

对特殊细菌的检查应注明，需做药敏试验者注明抗菌药物名称。细菌培养后如需保存病种，送检时应注明。

标本一经采集，应尽快送检。

第三篇：检验科标本采集原则及注意事项

检验科标本采集原则及注意事项

一、病人准备

1、血液检查前的准备：

1.1住院病人静脉血标本原则上应清晨空腹抽取。

1.2门诊病人应避免疾走、跑步等剧烈运动，并应静坐半小时以上后再采集标本。

1.3采血前一天忌用烟、酒、茶、咖啡，并应尽可能避免服用任何药物，不能停用的药物应予以注明，如抗生素、激素、维生素及其它影响代谢或干扰测试反应的药物，以便解释结果时参考。1.4血清脂质或脂蛋白测定应在空腹12～14小时采集血液标本。

1.5为提高对糖尿病筛查和诊断的敏感性，测定早餐后2小时血糖优于空腹血糖。糖尿病治疗监测和疗效评价，有时须分别测定空腹和餐后血糖。

2、尿液检查前的准备

2.1病人在做尿液检查前，应做到如：清洁标本采集部位、明确标记；避免月经、阴道分泌物、粪便清洁剂等各种物质的污染；使用合格容器，细菌培养的标本，应使用消毒培养瓶或无菌、有盖的容器。2.2清洁尿：包括中段尿、导尿标本或耻骨上穿刺尿。

3、粪便检查前的准备

3.1盛标本的容器应清洁、干燥、有盖，无吸水和渗漏。细菌学检查，粪便标本应采集于灭菌、有盖的容器内。

3.2一般采集指头大小（约3-5g）的新鲜粪便，盛于清洁、干燥、无吸水性的有盖容器内。细菌学检验时的粪便标本应收集于无菌容器内。

3.3隐血试验时，应嘱咐患者素食3d后留取标本，禁服VitC及铁剂等药品。

4、有些特殊试验，如外周血微丝蚴检查等，请咨询相关技术人员。

5、所有检查均通知病人并获得病人或家属同意。二

血液标本采集方法

（一）血液标本的种类和用途

1、静脉采血

静脉血是最常用的血液标本，用于绝大多数临床化学、免疫学和血清学、全血细胞计数和血细胞形态学、血液寄生虫学和病原微生物学检验等。

2、毛细血管采血

毛细血管采血可满足用血量不足200ul的检验，如血型、全血细胞计数（预稀释法）等。

3、动脉采血

用于血气分析等。

（二）采血器材

1、真空采血装置

真空管采血简便、快速、省力，可连续多管采血，免去用注射器的抽吸和转注步骤，可避免或减轻机械性溶血；无血液污染，保持手、工作台面和申请单清洁，预防交叉感染，对工作人员和患者有保护作用；抗凝剂和血液比例固定，有利于保证检验质量。一次性真空采血管分类表 采血管

名称

颜色

添加剂

适用范围

规格（ml）血常规

紫

EDTA－K2

血常规

常规生化 红

巴西呋咜

凝血酶 生化凝血四项 蓝

枸缘酸钠

凝血机制

1.8 血沉

黑

枸缘酸钠

血沉

1.28 血液流变 绿

肝素钠

血液流变检查病毒管 粉红色

无 脑脊液、胸腹水等杂项注：

1、注射器和试管塑料器材和玻璃器材，对某些试验有不同的影响。凝血因子测定以塑料注射器采血为好，玻璃器材可加速血液凝固。

用塑料试管，因血液不易凝固，分离血清时间延长，不利于临床化学、血清学和免疫学的检验。普通注射器抽血，由于抽吸和转注，容易引起可见和不可见的溶血。

（三）血液标本的采集方法 静脉血标本的采集 采血部位

通常采用肘部静脉，当肘部静脉不明显时，可采用手背部、手腕部、腋窝处和外踝部静脉，婴幼儿可采用颈外静脉采血。采血步骤 住院病人：

应携带贴有条形码或已标记好的试管采集病人标本，需核查病人姓名、床号以确保无误。门诊病人：

1、核查内容包括核查病人姓名是否与条码或申请单一致、病人是否符合采血要求如空腹等。若符合，贴条码或在申请单和试管上统一编号，采血垫上垫上一张新的卫生纸。

2、按检验项目的要求，准备好相应的采血器材。

3、患者取卧位或坐位，手臂伸直平放在台面垫枕上，充分显露穿刺部位。

4、采血前，采血员须用消毒剂擦手消毒。

5、找好静脉后，先用碘伏棉签由内向外顺时针方向消毒穿刺处皮肤，稍等片刻再用无菌棉签以相同方向擦去碘迹。在采血部位上方扎上压脉带，嘱患者紧握拳头，使静脉显露。如静脉仍不明显，可嘱咐患者反复握拳数次，促使静脉怒张。肥胖患者，上述伸握拳数次后仍不明显，这时必须凭操作者经验，以左手食指在采血部位触摸，发现静脉走向后，试探性穿刺。

6、穿刺采血

6.1使用真空采血针采血

1）打开包装袋，取出采血针并将采血针上的护套取下，手持采血针以15°的角度刺入静脉血管，此时可在连接胶管中见回血，然后将管塞穿刺针（不要将乳胶护套取下）刺入真空采血管，血液会自动流入真空采血管中。

2）采血完后，先把采血针从静脉血管中抽出，用无菌干棉签压住伤口，然后再从真空采血管中拔出管塞穿刺针。添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。3）再次核对病人姓名和号码，并将一次性采血器材放入一次性利器盒中。

4）取出采血垫枕上的卫生纸，换上新的一张，再用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。5）当使用多种试管采血时依抗凝管、不含添加剂管次序进行，具体顺序如下： 血培养瓶→绿头管→蓝头管→黑头管→紫头管→红头管→其它 6.2使用注射器采血

1）操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持注射器，使针头斜面和针筒刻度向上，先以约与皮肤呈30°的位置迅速刺入皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁穿入静脉腔中，见回血后，顺势将针头深入少许，以免采血时针头滑出，但不可用力深刺以免穿破静脉造成血肿。

2）用右手食指将针头固定，左手缓缓抽动注射器内芯，至所需血量后停止，解开压脉带，嘱患者松拳，用无菌干棉签压住伤口，拔出针头。

3）取出针头，将血液沿管壁缓缓注入试管中，防止产生泡沫，添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。注意事项： 1）、溶血对许多项目的检测产生干扰（可咨询我科相关技术人员），因此必须严格防止标本溶血，造成溶血的原因有压脉带捆扎时间过长，淤血过久；穿刺不顺组织过多；抽血速度太快；抗凝血用力振荡；离心速度过快等。2）、采血前应向病人耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧心理。如遇个别病人进针时或采血后发生眩晕，应立即拔出针头让其平卧休息片刻即可恢复。若因低血糖诱发眩晕，可立即静注葡萄糖或嘱患者口服糖水即可。如有其它情况，应立即找医生共同处理。3）、操作时避免溢出或溅泼血液。若血液溅出，立即用消毒液清洗消毒。警告：注意安全防护，所有的血标本都应视为有潜在的传染性。主要的危险来自于通过血液传播HIV、乙肝、丙肝等病毒，应采取标准预防措施。毛细血管采血

测定项目要求血量不多的情况下一般可采用手指穿刺采血。在下列情况下，手指穿刺采血更优于静脉采血：

1、患者静脉表浅而脆薄。

2、患者是儿童，且找不到合适的静脉穿刺，或不配合静脉采血。然而，下列情况手指穿刺采血不适用：

1、人在极度寒冷状态。

2、手指穿刺采血收集血量不能达到实验要求。测试要求血量

进行WBC分析，要求20ul血量 手指毛细血管穿刺步骤

1、核查病人后，在申请单和试管上统一编号（或贴条形码）。采血前，检验者用消毒剂擦手消毒。

2、病人手指如果寒冷、发绀、肿胀或发炎时应该避免采血。如果病人手指寒冷需要采血，可以用温湿手巾或温水（大约42℃）预温3～5分钟，以促进血液流动。告知病人正确的姿势后，让病人的手能舒适地放在采血垫上。

3、用拇指和食指紧捏住病人的无名指大约离指尖3cm处，轻轻按摩采血部位5～6次（使其自然充血）。

4、用蘸碘伏的棉签清洁整个指尖，待其干燥。

5、一手拿无菌采血针，一手握紧病人的手指，显露最佳采血部位。

6、使皮肤紧绷，快速而平稳的刺破皮肤。采完后，将采血针放入一次性利器盒。

7、如果病人是0.5岁以下的儿童，一般采用大拇指采血，如果是成人，或0.5岁以上的儿童，穿刺部位应选择无名指的指腹。

8、如果血液自动流出，用棉签擦去第一滴血，并擦干切口部。把使用后的棉签丢入“生物危害垃圾袋”（黄色垃圾袋）。

9、如果血液不自动流出，可以把病人的手指朝下轻轻加压，以促进血液的流出，但注意不要把组织液挤出混入血液中。如果施压后血液还不能流出，换部位使用新的采血针再进行穿刺。

10、手持微量毛细管，以30～45度角接触穿刺部位，收集20ul血，用洁净棉球擦干毛细管外侧。

11、将微量毛细管中的血液立即冲入收集管中，混匀。

12、血液采集完毕，用无菌棉签轻压于病人伤口上，等待血液停止流出。

13、采血完成后，检验者用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。脚跟毛细血管穿刺

脚跟毛细血管穿刺采集血液法适用于1周岁以下的新生儿或婴儿。注意：行脚跟穿刺时应避免损伤，最好在儿科病房在医生指导下进行。注意事项：

1、采血前，手必须用消毒剂擦手消毒。

2、让病人安稳的坐好，防范患者眩晕或摔倒。

3、当穿刺后，加压血液也不能流出，考虑再行穿刺时，必须更换新的采血针，旧的采血针已被污染，不能重复使用。

4、当血液采集完毕时，用无菌棉签或纱布压于伤口上，并告知病人轻压伤口直到止血为止，必要时可以提供一个创可贴。不提倡给小孩使用以免其可能会吞下导致窒息。

5、每次采血前后，检验者必须用消毒剂擦手消毒，以防止交叉感染。

6、操作时避免溢出或溅泼血液，若血液溅出，立即用消毒液清洗消毒。

警告：所有的血标本都应视为有潜在的传染性，主要的危险来自于通过血液传播HIV、乙肝、丙肝等病毒。

（四）、不同目的的血液标本采集方法(1)血液寄生虫检验标本采集 1疟原虫

1.1EDTA-K2抗凝剂静脉血1-2ml,由检验人员涂片。为保证涂片质量，推荐病房直接送EDTA-K2抗凝剂静脉血。

1.2取静脉血困难的患者，可采集新鲜末梢血，薄涂片和厚涂片各三张，立即送检，并在1小时内完成检测，如果超过1小时检测，在备注栏内提示处理时间。1.3在治疗之前和规则发热后期采集标本，即间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至10余小时采血，此时，早期滋养体已发育至易于鉴别形态的晚期：恶性疟患者，应在发作后20小时左右采血。2 微丝蚴

2.1 EDTA-K2抗凝剂静脉血1-2ml,由检验人员涂片。为保证涂片质量，推荐病房直接送EDTA-K2抗凝剂静脉血。

2.2采血时间以晚上21:00～24:00时前后为宜。（2）出、凝血功能及血流变检验标本采集

血液和抗凝剂比例一定要准确。标本要及时送检，不能久置，抽血应顺利，避免溶血或凝血。病人在抽血前应禁食，避免脂血减低实验的敏感度。

1、血流变检测

采集清晨空腹静脉血，用肝素抗凝。抗凝血置室温4h内完成测定。另外，加抽一管“血沉”和一管“血常规”标本。

2、凝血功能测定

空腹采样，标本量要求准确，采样后充分颠倒混匀，试验前避免服用影响凝血功能的药物。

3、血小板凝集试验

试验前7-10天内避免服用阿司匹林、保泰松、抗组胺制剂，吩噻嗪类、氯吡格雷、噻氯吡定等影响血小板功能的药物，试验当天禁用含咖啡因饮料，蓝帽真空管静脉采血。（3）血气分析标本采集

用1mL、2mL或5mL消毒注射器，按无菌手术抽取肝素0.2ml,然后将肝素来回抽动,使针管全部湿润,将多余肝素全部排出。注射器内死腔残留的肝素即可抗凝。皮肤消毒后穿刺股动脉、肱动脉或桡动脉，取2ml动脉血，不能有气泡。抽出后用一块小橡皮封针头，隔绝空气。将注射器放在手中双手来回搓动，立即送检。三

尿液标本的采集方法

（一）、尿液标本的种类： 1.晨尿：

即清晨起床后第一次排尿时收集的尿液标本。如为睡眠8小时以上，又称卧位8小时尿液。这种标本尿液较为浓缩，可用于肾脏浓缩能力评价，有利于尿液形态学和化学成分分析。2.随机尿：

即随时的尿液标本，这种标本不受时间限制，标本新鲜易得，最适合于门诊、急诊患者的筛检试验，以及隐血、酮体尿糖、尿淀粉酶等的试验。但此尿液标本易受多种因素的影响，致尿检成分的浓度降低或升高，造成临床结果的比对的混乱。3.负荷尿：

为某种特殊需要，检查一定负荷后的尿。如葡萄糖负荷后的糖耐量试验、运动负荷后的运动后血尿、起立活动后的直立性蛋白尿。4.餐后尿：

通常收集午餐后至下午2时的尿液，这种尿标本，有利于检出病理性糖尿、蛋白尿或尿胆原。这是因为进餐后，胃肠道的负荷加重，减低了尿糖、尿蛋白的肾阈值。5.餐前尿：

早、中、晚三餐前半小时至一小时排尿弃去，进餐前再留取尿标本检测尿糖。尿糖浓度反映餐前空腹的血糖平均水平。用于糖尿病治疗监测和疗效评价。6.计时尿：

一般根据临床诊断或疾病观察的需要，按特定时间采集尿液标本。7.中段尿：

适用于尿培养。标本采集前尽量憋尿，留取晨尿。先用肥皂和水彻底清洗，干净手巾擦干。女性病人撑开阴唇，彻底清洁外阴及阴唇，无菌纱布擦干，保证阴唇分开，手指不碰触清洁区域。男性病人应翻转包皮清洗。在不间断排尿过程中，弃去前段尿，以无菌带盖杯留取中段尿。注意事项： 1）、容器要保证清洁，避免化学品和细菌污染，最好使用一次性尿杯。2）、尿液标本要求新鲜，留取后2h内检验，否则应冷藏，测试前需复温，细菌培养应立即进行检验。3）、定时尿亦即定量尿标本，必须留取规定时间内的全部尿液，时间开始的尿排净弃去，时间结束的尿排净收集，不得溢失，记录尿量，混匀后取40-50ml送检。

（二）、尿液标本的采集容器

1、一次性尿杯

适用于门诊尿常规检测。

2、无菌带盖杯 适用于尿培养

（三）、尿液标本的采集方法

1、尿标本的一般采集方法

1.1通常采集新鲜尿，门诊病人可采集随机尿，尿量至少10ml,避免月经、白带或精液等的污染。1.2收集后应立即检查，不要超过2小时，如不能及时送检，应置4℃下冷藏保存，但冷藏时间不得超过6小时。

1.3 从冰箱取出的尿标本应在室温中放置一定时间，使之温度平衡到室温后再行混匀，然后取样检测。因为冷藏后可能出现的一些结晶析出会影响结果。

2、24小时尿标本的采集方法

患者上午8小时尿一次，将膀胱排空，弃去尿液。此后收集各次排出的尿液，直至次日上午8时最后一次排尿的全部尿液，记录尿量，混匀后取40-50ml送检。四

粪便、体液及生殖道标本采集方法

1、粪便标本采集：

1.1培养的标本采用无菌容器，大便常规采用药袋或大便瓶。

1.2应尽可能挑取含有黏液脓血等异常成分的粪便2-3g。外观无明显异常时，应于粪便内外多点取样。1.3无粪便排出而又必须检验时，可用经无菌生理盐水或用增菌液湿润的直肠拭子插入肛门4～5cm（小儿2～3cm），轻轻转动一圈。擦取直肠表面的粘液后取出。盛于无菌试管或保存液中送检。

1.4寄生虫标本检查：检查蛲虫时需要用透明薄膜拭子或棉拭子于清晨排便前拭取肛门四周，并立即镜检。

1.5检查胆石、胰石、寄生虫体及虫卵计数时，应收集24h内粪便送检。注意事项：

1）粪便标本要新鲜，最好在1小时内检验完毕，否则可因PH值改变及消化酶的作用等，使有形成分分解破坏及病原菌死亡而导致结果不准确。检查阿米巴滋养体时，应于排便后立即检验，冬季还需对标本进行保温处理。

2）不能将标本置于吸水纸中送检，如用棉棒取标本，忌用棉球一侧。避免稀便中有形成分吸入棉球，造成假阴性结果。

3）潜血试验时患者应素食3天。

2、痰液标本检验

2.1用清水嗽口数次，用力自气管深部咳出痰液至一次性痰盖杯中。2.2痰液理学检验以清晨第一口痰标本最适宜。2.3细胞学检验以上午9-10时留痰最好。

2.4用于细菌培养的标本，必须无菌采集，并先用无菌水漱口，以避免口腔内正常菌的污染。注意事项：

1)痰液标本的采集以清晨为佳，此时患者痰量较多且含菌量也较多。2)咳嗽时应尽量避免唾液及鼻咽部分泌物混入，以减少污染。

3)若患者痰量较少，需要检查痰中结核杆菌，可留取多口痰，但不宜超过10ml。

3、脑脊液标本采集

3.1由医生采集，通常采用腰椎穿刺，必要时行小脑延髓池和脑室穿刺。穿刺时皮肤消毒必须彻底。3.2脑脊液穿刺的时机与疾病有关，化脓性脑膜炎于发病后1-2d、病毒性脑膜炎于发病后3-5d、结核性脑膜炎于发病后1-3周，疱疹性脑膜炎于流行性感冒前驱症状期开始后5-7d穿刺采集标本。

3.3穿刺成功后立即测定脑脊液压力，然后留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1-2ml。(申请分枝杆菌培养的标本不宜低于1.0ml)。第一管做病原生物学检验，第二管做化学和免疫学检验，第三管做理学和细胞学检验。

3.4标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。因标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。脑脊液标本应尽量避免凝固和混入血液。

3.5注意事项：当颅内出血、感染或肿瘤，颅内压升高，穿刺有一定的危险性；必要时可给予适量的渗透性利尿剂（如20%甘露醇），降低颅内压后穿刺并减少取材量，以免诱发脑疝。

4、浆膜腔积液标本采集

4.1浆膜腔积液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等。

4.2穿刺成功后，留取中段液体于无菌的容器内。常规检查需要留取50ml，理学检查、细胞学检查和化学检查各留取2ml，厌氧菌培养留取1ml，结核杆菌检查留取5ml-10ml。

4.3由于积液极易出现凝块、细胞变性、细菌破坏和自溶等，所以留取标本后应及时送检，不能及时送检的标本可加入适量乙醇以固定细胞成分。理学检查和细胞学检查宜采用EDTA-Na2抗凝，化学检查宜采用肝素抗凝。

5、精液标本采集

5.1采集标本前应禁欲3-5天，采前排净尿液。

5.2将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内（不能使用乳胶避孕套）。5.3采集微生物培养标本须无菌操作。5.4送检时间不超过1小时。

6、淋病奈瑟菌涂片

6.1一般由医生或护士采集。

6.2男性患者，洗净尿道口，用手指由后向前挤出脓液滴于载波片上，如无分泌物，可用小拭子插入尿道1.5-2.5cm,待10-15s后在轻轻旋转数秒钟，取出涂片。

6.3女性阴道分泌物或宫颈刮片，最好用不含润滑剂的窥镜取材，先拭去脓性分泌物，再用一无菌拭子伸入宫颈内1-2cm,并压出宫颈腺体分泌物，放置30s后，使拭子充分吸收分泌物再取出涂片。

第四篇：血常规标本采集方法及注意事项

血液分析（血常规）标本采集方法及注意事项

一、方法：

1、患者坐位或卧位，消毒穿刺皮肤后，扎上压脉带，嘱患者握紧拳头，暴露静脉。操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持注射器，针头斜面和针筒刻度向上，先以约与皮肤呈30度角的位臵迅速刺破皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁进入静脉腔中，见回血后，解开压脉带，将针头顺势深入少许，以免采血时针头滑出，但不可用力深刺，以免穿破静脉造成血肿。用右手手指将针头固定，左手缓缓抽动注射器内芯至所需血量，嘱患者松拳，用无菌干棉球压住伤口，拔出针头。取下针头后，将血液沿试管壁缓缓注入事先准备好的抗凝管中，轻轻混匀防止凝固。

2、真空采血法，又称负压采血法，其优点为：封闭式运转方便；能完好保持血标本的原始形状；可避免对医护人员的感染和病人血标本间的交叉感染；可减少溶血现象；采血量准确。

二、注意事项：

1、如患者进针时或采血后发生眩晕，应立即拔出针头，让其平卧休息，必要时可给患者嗅吸芳香氨酊、针刺（或拇指压掐）人中和合谷、静脉注射葡萄糖或口服糖水。如有其他情况，应立即找医生共同处理。

2、防止标本溶血，造成溶血的原因有：压脉带使用时间太长，淤血过久；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头；用力推出产生大量气泡；混匀时用力振荡等。

3、避免淤血和浓缩：压脉带压迫时间最好不超过1分钟。

4、抽血时只能向外抽，不能像静脉内推，避免空气注入形成气栓，造成严重后果。

5、抗凝管选择：血液分析应选择紫色抗凝管（如图），采血量应与抗凝管上的标识采血量一致，过多或过少血量将导致血液分析参数不准确。

6、充分混匀避免凝块产生：正确方法是血液注入抗凝管后立即轻轻颠倒混匀1分钟左右，混匀不充分将导致血液凝固或产生微小凝块，无法进行血液分析。

7、及时贴试管标签：混匀后将试管上的双联试管标签撕下一张贴到化验单右上角，防止标本混淆，（错误做法：将化验单号贴到试管上，会损害血液分析仪进样部件）。

8、标本保存：标本采集后最好立即送检，如不能立即送检，只能在室温下保存，禁止低温（4摄氏度）保存，低温保存将导致血小板计数结果减低。

第五篇：检验科标本采集原则及注意事项

检验科标本采集原则及注意事项

一、病人准备

1、血液检查前的准备：

1.1住院病人静脉血标本原则上应清晨空腹抽取。1.2门诊病人应避免疾走、跑步等剧烈运动，并应静坐半小时以上后再采集标本。

1.3采血前一天忌用烟、酒、茶、咖啡，并应尽可能避免服用任何药物，不能停用的药物应予以注明，如抗生素、激素、维生素及其它影响代谢或干扰测试反应的药物，以便解释结果时参考。

1.4血清脂质或脂蛋白测定应在空腹12～14小时采集血液标本。

1.5为提高对糖尿病筛查和诊断的敏感性，测定早餐后2小时血糖优于空腹血糖。糖尿病治疗监测和疗效评价，有时须分别测定空腹和餐后血糖。

2、尿液检查前的准备

2.1病人在做尿液检查前，应做到如：清洁标本采集部位、明确标记；避免月经、阴道分泌物、粪便清洁剂等各种物质的污染；使用合格容器，细菌培养的标本，应使用消毒培养瓶或无菌、有盖的容器。

2.2清洁尿：包括中段尿、导尿标本或耻骨上穿刺尿。

3、粪便检查前的准备 3.1盛标本的容器应清洁、干燥、有盖，无吸水和渗漏。细菌学检查，粪便标本应采集于灭菌、有盖的容器内。3.2一般采集指头大小（约3-5g）的新鲜粪便，盛于清洁、干燥、无吸水性的有盖容器内。细菌学检验时的粪便标本应收集于无菌容器内。

3.3隐血试验时，应嘱咐患者素食3d后留取标本，禁服VitC及铁剂等药品。

4、有些特殊试验，如外周血微丝蚴检查等，请咨询相关技术人员。

5、所有检查均通知病人并获得病人或家属同意。二 血液标本采集方法

（一）血液标本的种类和用途

1、静脉采血

静脉血是最常用的血液标本，用于绝大多数临床化学、免疫学和血清学、全血细胞计数和血细胞形态学、血液寄生虫学和病原微生物学检验等。

2、毛细血管采血

毛细血管采血可满足用血量不足200ul的检验，如血型、全血细胞计数（预稀释法）等。

3、动脉采血 用于血气分析等。

（二）采血器材

1、真空采血装置 真空管采血简便、快速、省力，可连续多管采血，免去用注射器的抽吸和转注步骤，可避免或减轻机械性溶血；无血液污染，保持手、工作台面和申请单清洁，预防交叉感染，对工作人员和患者有保护作用；抗凝剂和血液比例固定，有利于保证检验质量。一次性真空采血管分类表 采血管 名称 颜色 添加剂 适用范围 规格（ml）血常规 紫 EDTA－K2 血常规 2 常规生化 红 巴西呋咜 凝血酶 生化 5 凝血四项 蓝 枸缘酸钠 凝血机制 1.8 血沉 黑 枸缘酸钠 血沉 1.28 血液流变 绿 肝素钠 血液流变检查 5 病毒管 粉红色 无 脑脊液、胸腹水等杂项 5 备注：

1、注射器和试管塑料器材和玻璃器材，对某些试验有不同的影响。

2、凝血因子测定以塑料注射器采血为好，玻璃器材可加速血液凝固。

3、用塑料试管，因血液不易凝固，分离血清时间延长，不利于临床化学、血清学和免疫学的检验。

4、普通注射器抽血，由于抽吸和转注，容易引起可见和不可见的溶血。

（三）血液标本的采集方法 静脉血标本的采集 采血部位 通常采用肘部静脉，当肘部静脉不明显时，可采用手背部、手腕部、腋窝处和外踝部静脉，婴幼儿可采用颈外静脉采血。

采血步骤 住院病人：

应携带贴有条形码或已标记好的试管采集病人标本，需核查病人姓名、床号以确保无误。门诊病人：

1、核查内容包括核查病人姓名是否与条码或申请单一致、病人是否符合采血要求如空腹等。若符合，贴条码或在申请单和试管上统一编号，采血垫上垫上一张新的卫生纸。

2、按检验项目的要求，准备好相应的采血器材。

3、患者取卧位或坐位，手臂伸直平放在台面垫枕上，充分显露穿刺部位。

4、采血前，采血员须用消毒剂擦手消毒。

5、找好静脉后，先用碘伏棉签由内向外顺时针方向消毒穿刺处皮肤，稍等片刻再用无菌棉签以相同方向擦去碘迹。在采血部位上方扎上压脉带，嘱患者紧握拳头，使静脉显露。如静脉仍不明显，可嘱咐患者反复握拳数次，促使静脉怒张。肥胖患者，上述伸握拳数次后仍不明显，这时必须凭操作者经验，以左手食指在采血部位触摸，发现静脉走向后，试探性穿刺。

6、穿刺采血 6.1使用真空采血针采血

1）打开包装袋，取出采血针并将采血针上的护套取下，手持采血针以15°的角度刺入静脉血管，此时可在连接胶管中见回血，然后将管塞穿刺针（不要将乳胶护套取下）刺入真空采血管，血液会自动流入真空采血管中。

2）采血完后，先把采血针从静脉血管中抽出，用无菌干棉签压住伤口，然后再从真空采血管中拔出管塞穿刺针。添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。3）再次核对病人姓名和号码，并将一次性采血器材放入一次性利器盒中。

4）取出采血垫枕上的卫生纸，换上新的一张，再用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。

5）当使用多种试管采血时依抗凝管、不含添加剂管次序进行，具体顺序如下： 血培养瓶→绿头管→蓝头管→黑头管→紫头管→红头管→其它 6.2使用注射器采血

1）操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持注射器，使针头斜面和针筒刻度向上，先以约与皮肤呈30°的位置迅速刺入皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁穿入静脉腔中，见回血后，顺势将针头深入少许，以免采血时针头滑出，但不可用力深刺以免穿破静脉造成血肿。

2）用右手食指将针头固定，左手缓缓抽动注射器内芯，至所需血量后停止，解开压脉带，嘱患者松拳，用无菌干棉签压住伤口，拔出针头。

3）取出针头，将血液沿管壁缓缓注入试管中，防止产生泡沫，添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。注意事项：

1）、溶血对许多项目的检测产生干扰（可咨询我科相关技术人员），因此必须严格防止标本溶血，造成溶血的原因有压脉带捆扎时间过长，淤血过久；穿刺不顺组织过多；抽血速度太快；抗凝血用力振荡；离心速度过快等。

2）、采血前应向病人耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧心理。如遇个别病人进针时或采血后发生眩晕，应立即拔出针头让其平卧休息片刻即可恢复。若因低血糖诱发眩晕，可立即静注葡萄糖或嘱患者口服糖水即可。如有其它情况，应立即找医生共同处理。

3）、操作时避免溢出或溅泼血液。若血液溅出，立即用消毒液清洗消毒。警告：注意安全防护，所有的血标本都应视为有潜在的传染性。主要的危险来自于通过血液传播HIV、乙肝、丙肝等病毒，应采取标准预防措施。毛细血管采血 测定项目要求血量不多的情况下一般可采用手指穿刺采血。在下列情况下，手指穿刺采血更优于静脉采血：

1、患者静脉表浅而脆薄。

2、患者是儿童，且找不到合适的静脉穿刺，或不配合静脉采血。然而，下列情况手指穿刺采血不适用：

1、人在极度寒冷状态。

2、手指穿刺采血收集血量不能达到实验要求。测试要求血量

进行WBC分析，要求20ul血量 手指毛细血管穿刺步骤

1、核查病人后，在申请单和试管上统一编号（或贴条形码）。采血前，检验者用消毒剂擦手消毒。

2、病人手指如果寒冷、发绀、肿胀或发炎时应该避免采血。如果病人手指寒冷需要采血，可以用温湿手巾或温水（大约42℃）预温3～5分钟，以促进血液流动。告知病人正确的姿势后，让病人的手能舒适地放在采血垫上。

3、用拇指和食指紧捏住病人的无名指大约离指尖3cm处，轻轻按摩采血部位5～6次（使其自然充血）。

4、用蘸碘伏的棉签清洁整个指尖，待其干燥。

5、一手拿无菌采血针，一手握紧病人的手指，显露最佳采血部位。

6、使皮肤紧绷，快速而平稳的刺破皮肤。采完后，将采血针放入一次性利器盒。

7、如果病人是0.5岁以下的儿童，一般采用大拇指采血，如果是成人，或0.5岁以上的儿童，穿刺部位应选择无名指的指腹。

8、如果血液自动流出，用棉签擦去第一滴血，并擦干切口部。把使用后的棉签丢入“生物危害垃圾袋”（黄色垃圾袋）。

9、如果血液不自动流出，可以把病人的手指朝下轻轻加压，以促进血液的流出，但注意不要把组织液挤出混入血液中。如果施压后血液还不能流出，换部位使用新的采血针再进行穿刺。

10、手持微量毛细管，以30～45度角接触穿刺部位，收集20ul血，用洁净棉球擦干毛细管外侧。

11、将微量毛细管中的血液立即冲入收集管中，混匀。

12、血液采集完毕，用无菌棉签轻压于病人伤口上，等待血液停止流出。

13、采血完成后，检验者用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。脚跟毛细血管穿刺

脚跟毛细血管穿刺采集血液法适用于1周岁以下的新生儿或婴儿。注意：行脚跟穿刺时应避免损伤，最好在儿科病房在医生指导下进行。注意事项：

1、采血前，手必须用消毒剂擦手消毒。

2、让病人安稳的坐好，防范患者眩晕或摔倒。

3、当穿刺后，加压血液也不能流出，考虑再行穿刺时，必须更换新的采血针，旧的采血针已被污染，不能重复使用。

4、当血液采集完毕时，用无菌棉签或纱布压于伤口上，并告知病人轻压伤口直到止血为止，必要时可以提供一个创可贴。不提倡给小孩使用以免其可能会吞下导致窒息。

5、每次采血前后，检验者必须用消毒剂擦手消毒，以防止交叉感染。