标本文书运送培训试题

第一篇：标本文书运送培训试题

广州泰科物业管理有限公司《标本文书运送培训》员工考核测试题 项目：员工姓名：科室/岗位：得分：

一、单项选择题（每题5分，共50分）

1、实现（）是确保企业持续稳定发展的有力保证

A 经济效益B 安全生产C 集体荣誉感

2、标本运送的过程中应（）保护自己不被传染

A 眼镜B 穿工作服D、穿工作服、戴手套和口罩

3、在医院工作时戴手套的手（）按电梯楼层按键、电器开关和门把手等公共地方

A可以B没人见到时可以C禁止

4、标本运送合理间隔时间为（）巡回收送一次

A 2小时B1小时C 30分钟D 3小时

5、标本运送需选用（）专用工具，保证标本的安全性

A、衣服的口袋B、标本箱（篮）C、框

6、冰冻标本应在（）内送达检验科，以免标本受损

A、5分钟B、20分钟C、15分钟D、10分钟

7、经供应室消毒出来的消毒包和器械应用（）运送至相关科室

A、布草车B、平板车C、专用不锈钢密闭车

8、在运送贵重药品时正确的做法是（）

A、药物包装要密闭好，不用科室负责人签名

B、药物包装要密闭好，不能重叠堆放，必须要求科室负责人核对并签名确认

C、药物包装要密闭好，不能重叠堆放，科室有人在就找人签收

9、各种检查申请单的预约服务工作流程是（）

A、先收集、费用审核B、收集、预约、费用审核

C、收集、整理、预约、费用审核D、以上都不是

10、医院贵重仪器是否属于我们运送范围内的工作（）

A、是B不是C不确定

二、判断题(正确的打(√)，错误的打(×)，每题10分，共50分）

1、标本运送时应注意保护，不能损坏

2、标本收送时应有签收记录（双方有交接登记）

3、不小心将标本损坏，应及时与该科室联系采取补救措施

4、标本运送分常规运送和紧急运送两类，应紧急运送优先

5、用品、药品接收和送达时双方应清点清楚

广州泰科物业管理有限公司培训部制

2012年版

第二篇：标本采集、运送、保存程序

标本采集、运送、保存成序

1.目的

规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。2.范围 微生物标本。3.职责

3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。4.程序

4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名

4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h.5 采集方法 5.1 血液及骨髓 5.1.1 血液

5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血

培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本）

5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。

5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。

5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。

5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论图片或培养，必须于采集后立即送检。5.3 上呼吸道标本

5.3.1 鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深度停留20～30s,然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽部中细菌的污染）。

5.3.2 喉标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样。喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人。将转运管安全封口，注明标识和日期，将标本尽快送到实验室。5.4 下呼吸道标本 5.4.1 痰

5.4.1.1 采集标本以晨痰为好。支气管扩张症病人清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰标本。

5.4.1.2 自然咳痰法：在留取痰之前，用清水反复漱口，从气管深部咳出痰，吐入无菌容器内。

5.4.1.3 支气管镜下采集法：在病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。

5.4.1.4 气管穿刺法：在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌氧菌培养。

5.4.1.5 棉拭采集法：用无菌棉拭子轻轻擦拭病人鼻咽部黏膜，留取标本，置无菌试管内送检，放置时间不应超过2h.5.4.2 支气管灌洗液：用不少于140ml无菌生理盐水灌洗小支气管和肺泡，40～80ml回收的灌洗液中包含约1ml支气管末梢和肺泡中的分泌物；弃去前段可能污染的部分，收集其余部分后立即送检。5.4.3 保护毛刷(PSB):保护毛刷因有双层套管保护，不易污染上呼吸道和口腔定植菌。用无菌剪刀剪断毛刷，置于1ml生理盐水的无菌容器中（仅供需氧培养），快速送检。5.5 穿刺液标本

5.5.1 采用无菌方法采集体内可疑感染部位的液体约2ml，注入无菌试管，或抽取穿刺液1～2ml注入多功能体液培养瓶，或抽取穿刺液2～5ml注入血培养瓶，混匀，立即送检。

5.5.2 标本保存：采集标本后立即送到实验室，若不能及时送检可置于室温，放置时间不应超过2h.5.6 生殖器来源

5.6.1 阴道：经过阴道口（introitus），将拭子插入约5ml,轻轻转动10～30s。确保拭子触及阴道壁，小心退出，不要触及皮肤，将拭子转移到Aptima采集管，与第二线折断。拭子必须必须置于运输管中，尽快送抵实验室。梅毒螺旋体标本从外生殖器的硬下疳处蘸取渗出液，置于载玻片上，加盖玻片后立即送检。

5.6.2 前庭大腺：不要在黏膜部位使用乙醇。皮肤准备参见一般部位，吸取前庭大腺脓肿，使用厌氧转运培养基送至实验室。5.6.3 用于培养基的子宫颈（宫颈管）标本

5.6.3.1 准备阴道窥器，除温水外，避免使用润滑剂，插入阴道窥器，见到子宫颈，用棉拭子拭去多余的黏液，将涤纶拭子插入子宫颈，轻轻转动，并停留10～30s,取出拭子，置于细菌转运培养基。5.6.3.2 一般情况下，阴道标本培养不会产生有意义的结果，所以除B群链球菌筛检外，不推荐阴道标本培养。阴道标本不用于厌氧培养。5.6.4 羊膜腔穿刺术：通常由医生经超声定位留取样本，置于封口的注射器或厌氧转运培养基送抵实验室。

5.7 前列腺：用肥皂水清洗阴茎头，经直肠前列腺按摩获取前列腺液，用无菌拭子采集前列腺液，在室温下运送标本，选择前列腺按摩前和最近时刻的尿液同时送去培养。5.8 尿

5.8.1 女性：先以肥皂水清洗外阴部，再以无菌水冲洗，用无菌纱布擦拭，以手指将阴唇分开排尿，弃去前段尿，留取中段尿5～7ml于无菌试管内。

5.8.2 男性：翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，用清水冲洗，留取中段尿。

5.8.3 儿童、婴儿：先以无菌生理盐水棉球清洗其外阴或外生殖器，将无菌拭管或瓶口对准尿道口，以胶布固定于皮肤上，待尿排出后送检。

5.8.4 两侧肾盂尿：由专科医生采集，左右侧标本必须标明，避免混淆而误诊。

5.8.5 膀胱穿刺：此法用于厌氧菌培养。耻骨上皮肤经碘酊消毒后，再以75%乙醇擦拭，用无菌注射器行膀胱穿刺，吸取尿液后排去注射器内的空气，针头插于无菌橡皮塞上及时送检，2h内进行接种。5.9 粪便标本

5.9.1 自然排便采集：自然排便后，挑取其脓血、黏液部分2～3g,黏液粪便取絮状物2～3ml，盛于灭菌容器内，或置于保存液（运送培养基）、增菌培养基中送检。

5.9.2 直肠拭子：如不易获得粪便时，或排便困难病人及婴儿，可用直肠拭子采取，即以无菌棉拭用保存液或生理盐水湿润后，插入肛门

内4～5cm（幼儿2～3ml）轻轻转动取出，插入卡布（Cary-Blair）运送培养基内或无菌培容器内送检。

5.9.3 粪便标本应该立即送检，室温保存下不能超过2h，如不能及时送检可以发放入磷酸盐甘油（ph7.0）或转运培养基，但不能超过24h.培养艰难梭菌的标本保存于20℃以下。培养沙门菌和致贺菌的标本应放置磷酸盐甘油溶液中保存。保存弯曲杆菌和弧菌的标本，需加Cacl2(100mg/L)试剂。5.10 脓及创伤标本

5.10.1 封闭性脓肿消毒局部皮肤或黏膜表面后，用无菌注射器抽取，用无菌手术刀切开栗粒状脓肿（miliary abscess），使用无菌注射器和针头采集露出的标本。

5.10.2 将脓液注入多功能培养瓶或无菌试管内送检。疑为厌氧菌感染时，应做床边接种或厌氧运送培养基内送检。

5.10.3 开放性脓肿和脓性分泌物用无菌盐水或75﹪乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡深处采集2支拭子，1支为图片检查用，1支为培养用。

5.10.4 大面积烧伤的创面分泌物用灭菌棉拭取多部位创面的脓液或分泌物，置灭菌试管内（注明采集部位）送检。

5.10.5 对未引流脓肿：使用无菌注射器和针头，按无菌操作技术，从中采集脓性物。用无菌手术刀切开栗粒状脓肿，使用无菌注射器和针头采集露出的标本。

5.10.6 疑为放线菌属、奴卡菌属感染时，在检查单上注明需要排除

放线菌属、奴卡菌属。

5.11 褥疮溃疡：用无菌盐水清洗表面后如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集损伤底部。由于褥疮溃疡拭子临床价值不大，一般选择组织活检或针头抽吸样本。

5.12 大疱、蜂窝组织炎、小疱：皮肤消毒同血液培养，用无菌针头和注射器抽吸液体或化脓性物质，如果获得了抽吸物，将之置于合适细菌转运培养基。如果没有得到抽吸物，将小疱或大疱性病变打开，使用棉拭子采集病变部位，置于转运培养基中。

5.13 中心静脉导管标本：用无菌镊子将5cm导管尖端或近心端送至实验室。5.14 耳部标本

514.1 内耳：穿刺前用肥皂水清洗外耳道再进行消毒程序，最后用注射器穿刺鼓室抽吸脓液。对鼓室破裂者，用专用采样管中配备的细头软杆拭子采集脓液，脓液量大也可采用注射器抽吸。

5.14.2 外耳：先用润湿的棉签清洁外耳道，再用专用采样管中配备的毛刷状采样拭子在外耳道内用力旋转摩擦取样。5.15 眼部标本

5.15.1 结膜：采样前先用无菌盐水润湿拭子，再绕结膜取样，最好两眼各采集2支拭子：其中1支用于涂片。建议在床边接种。采集时，须小心地避免感染延至眼部临近区域。注意，须标明左眼、右眼的标本。

5.15.2 角膜：由眼科医生采用刮取法采集标本：采集前先滴2滴局

部麻醉液，再用角膜上皮刮铲刮取病变角膜组织，将刮擦物用少许生理盐水洗下，置无菌杯中送检。

5.16组织标本采集：表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除，对窦道和瘘管应深部刮取，获得部分管壁组织。深部组织标本可在手术过程中或采取穿刺活检或抽取分泌物送检，也可使用相应的内镜采集活检标本。标本置无菌容器中并加入少量生理盐水以保持湿度，或置肉汤增菌液中送检。如怀疑为军团菌感染，肺组织切片不要滴加生理盐水（能抑制军团菌生长）。如果怀疑为厌氧菌感染，应把组织放入厌氧的传输系统内立即送检。5.17引流液：用70%乙醇消毒导管采集部位，用注射器从引流管无菌采集2～3ml。标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

第三篇：微生物标本的采集和运送基本原则

一、盂县中医医院院微生物标本的采集和运

送基本原则

1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。

6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院微生物标本采集送检方法

1．血液与骨髓

① 通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处

采取血标本。

② 采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③ 每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以 10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④ 怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤ 每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。多次多部位采血可提高阳性率。

⑥ 对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。2．尿液

① 中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。

② 导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿

液。或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液、留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。不可从集尿袋的下端管口留取标本。

③ 尿厌氧菌培养，或婴幼儿中段尿采集困难，或培养结果与病情不符时，可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

④ 送检标本以早晨第一次尿液为佳。

⑤ 室温下尿标本耽搁稍久，可致尿内细菌浓度明显增加而影响病原菌与污染菌的区分。不能立即送检者，可暂存4℃冰箱。3．痰液

① 咳痰：清水反复漱口后用力咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。痰量极少者可用45℃的l0％氯化钠溶液雾化吸入导痰。

② 对咳嗽乏力或昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内吸引痰液。用纤维支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。

③ 双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者，可用吸痰管经人工气道插至肺支气管水平吸引痰液。④ 对重症、难治、或伴免疫抑制、或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染，可采用环甲膜穿刺经气管吸引(TTA)、经胸

壁穿刺肺吸引(LA)、经纤维支气管镜或人工气道作防污染双套管毛刷(PSB)或防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)采集无口咽部菌群污染的痰液，进行感染病原学诊断。

⑤ 痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。如果室温下延搁数小时，定植于口咽部的非致病菌可呈过度生长，而肺炎球菌、葡萄球菌和流感杆菌检出率则明显下降。4．伤口、烧伤创面与脓液

① 用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用无菌棉拭取病灶深部的脓液和分泌物，立即置无菌试管内送检。

② 对未破损的脓肿宜用碘酒、酒精消毒皮肤后，以无菌注射器抽取脓液送检：也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。5．粪便

① 排便后，挑取有脓血、粘液部分的粪便约2—3g(液状粪便则取絮状物)，盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。用棉拭子挑取粪便插入Cnry—BLair运送培养基或PH7.0的磷酸盐甘油中送检，可提高病原菌检出率．

② 对不易获取粪便者或婴幼儿，可用直肠拭于(又称肛拭)采集。将拭子前端用无菌甘油水湿润，然后插入肛门约4—5cm(幼儿约2—3cm)处，轻轻旋转擦取直肠表面粘液后退出置运送培养基内送检。6．咽拭、口腔拭子

① 病人清水嗽口后．由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能

向外牵引，棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧，反复擦拭数次，插入运送培养基。棉拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。

② 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，用棉拭子在病灶部位擦拭数次即可。

7．浆膜腔积液、脑脊液

① 浆膜腔积液包括胸水、腹水、心包液、关节液和鞘膜液等．以严格无菌操作抽取数毫升液体置无菌试管或小瓶送检。对易自凝的标本可添加抗凝剂（抗凝剂需无菌）。② 严格无菌操作下采取脑脊液数毫升置于无菌试管。标本采集后应立即送检，以防细菌死亡。疑似有脑膜炎奈瑟菌时，应注意保暖，不可置冰箱保存。8．生殖道标本

① 根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本。采集尿道标本时，应先用生理盐水局部清洗，以无菌棉拭子插入尿道口 l一2cm停留十余秒钟。轻轻旋转拭子后退出． ② 对外阴部糜烂、溃疡者，经生理盐水清洗后用棉拭子擦取病灶边缘的分泌物。

③ 阴道和官颈口分泌物须在窥阴器下用长棉拭子采集。④ 子宫内分泌物需用无菌导管抽取．导管外套一层保护膜，插入子宫后再刺穿该膜予负压吸引，可减少阴道菌群污染。

⑤ 女性盆腔脓肿，应在阴道局部消毒后，由直肠子宫凹陷处进针抽取。

⑥ 前列腺液需进行前列腺按摩获取。9．组织标本

① 表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除。对窦道和痰管应深部刮取管壁组织。

② 深部组织标本可经皮肤穿刺采集或手术切取。标本置无菌容器并加少量无菌生理盐水以保湿度，或置肉汤增菌液，或置血平皿送检。

③ 尸检标本应于死后20h内采取，以防肠道等菌群侵入引起污染。

④ 作病原体分离的组织标本，不可用福尔马林固定。疑有污染的较大组织块，可用烧红的烙铁烧灼其表面或置沸水中5—10秒钟使表面变白消除污染后，再用无菌器械切开组织，取中央部位组织送检。10.静脉导管

从病人体内拔出静脉插管，用无菌技术剪取5cm长导管尖端。不能作床旁接种者，导管置含有少量生理盐水的无菌试管内立即送检。实验室接到标本后马上把导管置于血平皿上作滚动涂布接种，也可将剪下的导管置肉汤增菌液或置于血培养液内，但不能区分导管感染菌与少量的定植菌。

三．内毒素检查

1、标本采集

【标本采集前注意事项】

不需特殊准备，最好空腹采血。周一至周五上午10点半之前送检。节假日不检测。【标本类型】

血浆（肝素抗凝）、脑脊液、胸水、腹水 【标本容器】

无热源试管（血液和胸、腹水需肝素抗凝），用时到检验科四楼细菌室领取，原则上不备管。【样本条码粘贴要求】

打印清晰的条码纵向粘贴在试管上，上下均应留有空间，具体以覆盖住原标签为准。病人的姓名端向上，条码区的任何区域不得被覆盖，注意不要在条码帖上涂写，保持条码的完整和清晰。【标本采集方法】

血液标本：以无菌方法采取患者空腹静脉血液约2ml，注入肝素抗凝无热源试管，充分混匀，避免凝集。

脑脊液、胸水、腹水：以无菌方法留取相应标本，于无热源试管中。胸、腹水置于肝素抗凝管。

尿液：因尿液标本在留取时易污染，暂不做尿液标本，除非为穿刺尿标本。

【标本的送检地点】

检验科微生物室（裙楼4楼）。

三、临床意义

健康人群生物参考区间: 10 pg/ml以下。1 革兰氏阴性菌败血症的诊断。能引起细菌和毒素入血的局部感染，如呼吸道感染，脑膜炎、髓膜炎、消化道、肾脏及腹腔感染等疾病时，血中内毒素水平也与临床具有较好的一致性。尿道感染：尿道感染大部分由革兰氏阴性菌引起，因此检测尿液中的内毒素水平可快速准确的对病人作出诊断，及时治疗。肠源性内毒素血症:肝脏疾病和急性坏死性胰腺炎时可引起肠源性内毒素血症。

四、1-3-β-D-葡聚糖检查 【标本采集前注意事项】

不需特殊准备，最好空腹采血。周一至周五上午10点半之前送检。节假日不检测。【标本类型】

血浆（肝素抗凝）、脑脊液、胸水、腹水 【标本容器】

真空采血管（血液和胸、腹水需肝素抗凝）【样本条码粘贴要求】

打印清晰的条码纵向粘贴在试管上，上下均应留有空间，具体以覆盖住原标签为准。病人的姓名端向上，条码区的任何区域不得被覆盖，注意不要在条码帖上涂写，保持条码的完整和清晰。【标本采集】

血液标本：以无菌方法采取患者空腹静脉血液约2ml，注入肝素抗凝试管（黑盖或绿盖），充分混匀，避免凝集。脑脊液、胸水、腹水：以无菌方法留取相应标本于无菌试管中。胸、腹水应用肝素抗凝。

尿液：无菌方法留取中段尿标本，避免阴道分泌物的污染。【血液标本的送检地点】 检验科微生物室（裙楼4楼）。

三、临床意义

健康人群生物参考区间: 10 pg/ml以下。

第四篇：护理人员检验标本规范化采集及运送培训讲座

护理人员检验标本规范化采集及运送培训讲座

— 分析前质量控制

检验工作分为检验前、检验、检验后三个部分，并不是单纯在检验科内部完成，因此三部分同等重要，但检验前工作最为困难、最难控制。何为“分析前质量控制”？ 分析前阶段（检验前）

按时间顺序自医生申请至分析检验启动的过程，包括检验申请、患者准备和识别、原始样品采集、运送和实验室内传递。分析前质量控制是影响因素最多，也是最难的环节。它贯穿于医、技、护共同重视并密切配合的监控过程中。分析前质量控制已经成为保证检验结果准确的重要核心部分。

目前国内现状，60%的检验误差由分析前造成，其中

1、采集后未及时送检（35.5 %）

2、采集标本不规范（25.5 %）

3、标本不合格（17.5 %）

4、采集时间不对（16 %）

5、检测项目不必要的重复（5.5 %）

第一部分

现采集及运送标本存在主要问题

1.溶血（Hemolysis）

溶血造成的后果

溶血干扰多个项目检测，如细胞内容物释放入血导致检测值假性偏高：红细胞内钾含量是细胞外的50倍。同时，溶血后释放的血红蛋白引起血清颜色加深，或浊度增加，释放的内容物干扰反应，影响上机检测。

溶血常见升高或降低项目

溶血造成多项目升高或降低(1)升高↑：ALT，AST，TB，DB，TP，GGT，CREA，UA，CHOL，CK，CK-MB，LDH，HBDH，血钾，血镁，血氨，叶酸，PLT计数，RDW，红细胞渗透脆性。(2)降低↓：GLU, 血钠，血钙，维生素B12，RBC计数，Hct。(3)导致溶血全套中蔗糖溶血试验结果出现假阳性。

(4)导致ELISA法检测的血清学项目出现假阳性。包括：感染四项，TORCH，甲肝，EB病毒，结核抗体。

造成溶血的常见原因

① 静脉穿刺处消毒液（如碘伏或酒精）未干即开始采血，可造成溶血。② 采血时定位或进针不准确，针尖在静脉内探来探去，造成血肿和标本溶血。③ 抽血困难：

危重症病人，由于血容量不足，管腔塌陷、变细，血液流入负压管速度缓慢，采血时间延长造成溶血；或患者意识障碍，病患儿紧张不予配合，操作者往往长时间紧扎止血带，寻找穿刺点，并反复拍打穿刺部位，从而干扰血流速度和流向，造成局部血液浓缩或激活凝血系统造成标本溶血。另外，止血带扎在伤口、结痂、伤痕处也可造成溶血。④ 抽血器具不合格：

真空静脉采血器为真空负压管，负压过大或过小均会造成溶血。负压相对较大，血液流入负压管底速度过快过猛，造成红细胞相互撞击，导致红细胞破裂，标本溶血如负压不够、漏气或抗凝剂剂量不足，使血流缓慢、间断造成溶血。采血量不足管内仍存有真空而导致溶血。

⑤ 在标本混匀过程中，操作者用力过猛，血细胞破坏可致溶血；选择采血针头口径过小、血流不畅也易造成溶血。

2、标本凝固

我们所谓的“标本凝固”：指使用抗凝管采血后，仍出现肉眼可见的血凝块，或者显微镜下可见微小凝块。

标本凝固造成的后果

① 肉眼可见凝块：若需检测血浆，标本中肉眼可见凝块导致标本无法检测。

② 肉眼不可见微小凝块：标本中肉眼不可见微小凝块，主要影响血液学检查如血小板计数严重假性偏低，PT和APTT延长甚至无法检出，FIB含量减少甚至无法检出，血沉加快，血氨升高。

造成标本凝固的常见原因

① 抽血困难：危重症病人，或患者意识障碍，病患儿紧张不予配合，操作者往往长时间紧扎压脉带，寻找穿刺点，并反复拍打穿刺部位，造成局部血液浓缩或激活凝血系统造成标本肉眼不可见微小凝块。

② 采血血流不畅、采血后未充分混匀标本易造成血液凝固。

③ 新生儿、妊娠、肾病综合征患者大多处于高凝状态，如采血时间过长易造成血液凝固。

3.采血量不足

采血量不足的后果

① 对需要血清量较多的项目（如性激素、普通生化、甲状腺激素、感染四项），采血量不足导致申请项目无法完成或复查，特别是新生儿血液中血清量相对较少，必须足量采血。② 使用不含抗凝剂的真空采血管时，采血量少，管内负压残留易导致血细胞破碎，造成溶血，溶血后果如前所述。

③ 使用含有抗凝剂的采血管时，采血量不足，抗凝剂相对过量，对结果造成不同程度影响，如：凝血功能检查（蓝头管）采血量不足，导致PT和APTT延长；血沉检测（黑头管）采血量不足，导致血沉加快，且无法使用自动血沉仪进行检测。④ 血培养采血量不足，可能造成阳性率降低。

采血量不足的原因

① 儿童和婴幼儿采血难度大，很多时候需同时采集多管标本，迫于家属压力，导致未执行规范操作，采血量不足。

② 如采集者对各类检验所需采血量相关知识未系统学习，仅按经验执行，易导致采血量不足。

4.采血量过多

使用含有抗凝剂的采血管时，采血量过多，抗凝剂相对不足，血液中容易出现微凝血块影响检测，常见如：PLT明显降低；PT和APTT延长甚至无法测出；FIB降低；血沉加快。

采血量过多的原因

① 采血过程中，多管采血换管或拔针不及时。

② 某些采集者采血时未警惕输液后由于血循环量增加，压力增强，或对各类检验所需采血量相关知识未系统学习长期不更新，仅按经验执行，导致采血量过量。

5.采血管选择错误

采血管选择错误的后果

① 血常规检测

必须使用EDTA-K2抗凝管(紫头管)。如误用肝素抗凝管（绿头管），会导致白细胞聚集，计数偏低，更不利于白细胞分类；如误用分离胶黄头管，会导致血液凝固无法检测。

② 凝血功能检测

必须使用1:9枸橼酸钠抗凝管（蓝头管）。如误用1:4枸橼酸钠抗凝管（黑头管），EDTA-K2抗凝管(紫头管)，肝素抗凝管（绿头管），可使PT和APTT显著延长。③ 生化常规项目

须采用血清作为测定标本（分离胶黄头管）。如误用EDTA-K2抗凝(紫头管)血用于检测，可使血钾升高数倍，并导致血钙、镁无法检测，ALP、CK 检测值偏低；如误用枸橼酸盐抗凝管（蓝头管或黑头管），可使AMY、CK、ALP等酶活性降低，测定值降低。④ 血沉检测

必须使用1:4枸橼酸钠抗凝管（黑头管）。如误用分离胶黄头管，血液凝固使检测值减慢。⑤ 溶血全套检测

必须同时使用肝素抗凝管（绿头管）和分离胶黄头管。如只抽一管，导致检测项目不完全。如使用其他抗凝剂，则影响红细胞渗透脆性结果无法检测。⑥ 血培养检测

血培养必须使用专用培养瓶。凭条码至检验科细菌室领取。注意：儿童请领取儿童专用培养瓶（粉红色头）；成人请领取成人用培养瓶（蓝色头）

采血管选择错误的原因

如对各类检验所需采血管相关知识未系统学习长期不更新，仅按经验执行，易导致采血管选择错误。

6.标本储存和运送不当

（1）胆红素检测需避光运送，光照可导致胆红素分解使检测值降低。（2）电解质 检测需采样后立即送检，否则可能导致血钾升高。（3）血氨 检测需采集至满管，立即送检。

（4）大便常规和尿常规采样后需注意环境温度，并在1小时内送检。温度超过25℃须半小时内送检，否则易导致致病菌及细胞等有形成分破坏，杂菌生长。

（5）白带常规、细菌培养标本采集后立即保温送检，否则可能导致假阴性。（6）标本管过度振荡可造成溶血。

（7）样本管破裂或管盖不严标本溢出，造成生物安全隐患，标本无法检测。

标本储存和运送不当的原因

① 如对标本运送的知识从未进行系统学习以致长期忽视，或者直接交给未受过正常培训的工人，或家属运送则容易导致错误。

② 某些护理人员习惯一次性大批量运送各类标本，而运送工具或过小，或不符合生物安全要求，运送中的挤压、碰撞或颠簸直接对标本造成破坏或交叉污染。7.条码-标本 对应错误

条码信息为A病患，标本采集实为B病患，导致检验科出具错误结果，临床医生得到错误的提示，导致严重的后果，甚至是医疗事故。

第二部分 《临床采集手册》的使用

一.目的：正确采集标本，做好分析前质量控制，保证检验结果准确可靠。二.使用范围：该手册适用于临床护理人员采集标本。

三.职责：临床护理人员须熟知标本的采集、贮存和运送过程中涉及的技术要求和注意事项，保证实验结果准确可靠。四．临床样本采集及运送

（一）血液标本采集及运送

静脉采血流程：

① 患者准备→② 准备与信息核对→③ 选择静脉→④ 扎止血带→⑤ 消毒→⑥ 穿刺→⑦ 接真空管→⑧ 拔针和按压穿刺点→⑨ 废弃物处理

采血注意事项

1）使用压脉带来初步寻找血管时不能在一个局部绑紧超过1分钟。消毒完成后，切不能再用手指去摸找静脉，穿刺有困难者，摸找静脉后应该再消毒。

2）采血过程中，确保病人的手或穿刺的部位向下放，防止血液倒流或回流，避免输液同侧采血。

3）采集血培养标本，严格无菌操作避免污染，并采集足够量。4）避免采血操作不当引起的溶血、血液凝块：

5）如采血后发现抗凝管或采血量错误，切忌互相倾倒血液。

6）遇婴幼儿需要颈静脉穿刺时，注意动作轻巧。颈静脉穿刺要注意婴幼儿呼吸及表情，发现有异样改变，及时停止操作。颈静脉穿刺后切不能用力按压穿刺孔。7）如有晕针、晕血病人，要注意安全，做好保护工作。8）血液标本采集后在规定时间内采用专用转运盒运输送检。

（二）尿标本采样及运送

1）将条码正确贴于容器侧面。

2）清洁标本采集部位：应用肥皂洗手、清洁外阴或尿道口及其周围皮肤。避免污染：应避免月经、阴道分泌物、包皮垢、粪便、清洁剂等各种物质污染，不能从尿布或便池内收集标本。

3）留取中段尿或导尿。

4）使用合格容器：不能用不清洁的或吸水的容器。

5）24小时尿液检查，需正确收集24小时内的全部尿液（如早上8点排尽尿液同时开始计时，收集至次日早上8点的24小时内的所有尿液，叮嘱患者次日早上8点必须排尿一次并计入24小时所有尿液中），由护理人员准确测量尿量并混匀后取尿杯半杯混合尿液送至检验科，如有需要在检验科指导下合理使用防腐剂。

6）常规尿液检查的标本量至少为20ml（尿杯半杯），其他尿液检查为10ml。7）尿常规检测在尿液标本采集后2小时内送检。

（三）粪便标本采集及运送

1）应取新鲜粪便，盛于洁净、干燥无吸水性的容器内，不得混有尿液、水或其它物质，不能使用尿布、纸张、棉签等吸水性材料包裹粪便。

2）采集标本应用干净竹签选取含有脓血、粘液、胨状等可疑病变成分处的粪便。外观无异常的粪便需从表面、深处及粪端多处取材，其量约为蚕豆大小（5g），稀水便留取2-3ml（一次性小便杯小半杯）。

3）粪便标本采集后 1h 内必须送检，查阿米巴滋养体时需立即送检。

五、检验科拒收标本准则

1、标识不准确

1）盛标本容器上无标识或标识不清

2）标本容器上标签或条形码与申请单上条形码信息不符 3）无申请单或申请单上信息不全

溶血全套条码易错

错误贴法

正确贴法

血培养贴条码时请勿覆盖瓶子本身条形码

2、标本不合格 1）中度以上溶血

2）抗凝血中有凝块

3）抽血量不足或过量

4）未使用合适的抗凝剂或标本类型不当。5）未按要求时间内送检 6）送检样本容器破损

结 束 语

送检标本质量的好坏很大程度上关系到是否能真实客观的反映患者当时的病情，关系到检验结果临床应用的可信度和有效性。因此，在标本采集、送检、保存等各个环节都要规范操作、严格控制，这是确保实验结果准确可靠的前提。

第五篇：输血标本采集运送保存外送管理制度

输血标本采集、运送、接收、保存、外送

管理制度与操作流程

1、在确定输血后，临床护士根据输血申请单上的要求，当面核对受血者的姓名、姓别、年龄、床号、血型和诊断等信息后，再进行采集血样。

2、采集的血液标本上条形码必须正确标记。

3、血标本采集量应有3-4ml，并观察是否溶血、乳糜血、如有此现象，应再留标本并做记录。

4、由医护人员或专门经过了输血培训上岗的人员，将采集的血样与输血申请单运送到输血科（血库），输血科（血库）工作人员接收标本。

5、输血科（血库），收到血样本后，在《输血标本接收、血型复核登记表》上进行登记。双方进行逐项核对。

6、交叉配血后的标本，以及受血者与供血者样本都应存入4±2℃冰箱中，标本必须密封或盖紧，有明确标识，保存7天以上，以便对输血不良反应追查原因。

7、输血科工作人员应每日检查、对交叉血标本进行分类放置、清理交叉血标本。

8、血标本应视为感染性物质，输血科工作人员应做好生物安全保护。用黄色生物垃圾袋封存，按保存日期填写《标本接受、保存、清除登记》，并按生物安全管理要求高压灭菌处理，保持容器完整，交给医院专业清洁人员，双方签名后运出实验室，再交医院垃圾暂存点按医疗废弃物统一处理。