生理学-呼吸运动调节实验报告

第一篇：生理学-呼吸运动调节实验报告

生理学-呼吸运动调节实验报告范文

实验且的：

学习呼吸运动的记录方法，观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响。

实验原理：

肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的，而呼吸运动是由于呼吸中枢不断地发放节律性冲动所致。呼吸中枢的紧张性活动，随着机体代谢需要，受许多因素影响。

本实验是向家兔气管插管，使呼出气的一部分经换能器连于记录仪记录呼吸运动，切断迷走神经和施给各种因素，观察呼吸曲线的变化。

实验对象：兔

实验器材和药品：哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、刺激器。20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等。

实验步骤和观察项目

一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯(1g／kg)，待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。沿颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管。分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。

二、记录呼吸运动插入的气管插管的主管接机械—电换能器，输入到生理记录仪，侧管暴露于大气。通过改变侧管的口径，使主管的输入信号适宜。

三、观察项目

(一)正常呼吸曲线

(二)增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细塑料或玻璃管插入气管插管的侧管，松开球胆的夹子，使部分CO2随吸气进入气管。气体流速不宜过急，以免明显影响呼吸运动。此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响。去掉球胆，观察呼吸恢复正常的过程。

(三)缺氧：将一空球胆吸进少量空气，中间经一钠石灰瓶连至气管插管的侧管，让动物呼吸球胆内的少量空气。观察此时呼吸运动有何变化?去掉上述条件，观察呼吸恢复正常的过程。

(四)增大无效腔：将50 cm长的橡皮管连接于气管插管的侧管上，观察此时呼吸运动的变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸恢复过程。

(五)血液中酸性物质增多时的效应：用5ml注射器，由耳缘静脉较快地注入3％乳酸2 ml，观察此时呼吸运动的变化及恢复过程。

(六)迷走神经在呼吸运动中的作用：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化。再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。在此基础上，观察对一侧迷走神经向中端低频，较弱的电刺激所至的呼吸运动的变化。

注意事项

一、手术过程中，应避免伤及主要血管(如：颈总动脉、颈

外静脉等)，以防出血。

二、为便于自身对照及互相对照，气管插管的侧管口径应自始至终保持一致。

讨论题

一、分析各项实验结果，缺O2及CO2增多时对呼吸的影响机制有何不同。

二、迷走神经在节律性呼吸运动中起何作用。

第二篇：呼吸运动调节实验报告

呼吸运动的调节

【实验目的 】

1、学习呼吸运动的记录方法 2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响 3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用

【实验对象 】

家兔 重量：1.9kg

【实验器材和 药品】

哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。

【实验方法与步骤 】

1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入 20%氨基甲酸乙酯溶液 10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入 20%氨基甲酸乙酯溶液 8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。

2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤 5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。分离气管并穿线备用。分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。手术完毕

后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。

3.实验装置 （1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。

（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。

（3）采样项目 ①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。

④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。

【实验 结果】

①缺氧对呼吸运动的影响

②CO 2 对呼吸运动的影响

③增大无效腔对呼吸运动的影响

④迷走神经在呼吸运动调节中的作用

【实验讨论 】

1.注射麻醉家兔时，没有准确注射入腹腔，麻醉效果生效缓慢，在老师的指导下补注入后，方成功麻醉。

2.剪去家兔兔毛不彻底，切开皮肤时较多的兔毛对手术造成了干扰。

3.生物信号采集处理系统没有寻找到“呼吸运动的调节”模板，自行设置实验参数与标记，部分图示不同。

【实验结论 】

1.二氧化碳对呼吸运动的影响：吸入气CO 2 浓度增加，肺通气量增大，血液中CO 2 分压增大，CO 2 透过血-脑屏障使脑脊液中CO 2 浓度增多，刺激了外周化学感受器，使呼吸加深加快。

2.氮气对呼吸运动的影响：吸入气氮气浓度增加，造成适度缺氧，肺泡氧分压下降使动脉血中氧分压下降，刺激外周化学感受器，呼吸肌活动加强，呼吸运动增加。

3.增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响：增加气道长度后家兔无效腔增大，减少肺泡通气量，血液中氧分压下降，刺激中枢和外周化学感应器，呼吸运动加深加快。

4.迷走神经对呼吸运动的调节：涉及肺扩张反射，当剪断单侧迷走神经以后，因为另一侧还有迷走神经能够进行肺扩张反射，家兔呼吸运动变化不明显。当切断两侧迷走神经时，扩张反射的生理作用被切断，动物吸气过程延长，吸气加深，呼吸变得深而慢。

第三篇：呼吸运动调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验

[目的要求]

1学习记录家兔呼吸运动的方法。观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。

[基本原理]

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

[动物与器材]

家兔、兔体手术台，手术器械、张力传感与滑轮或动物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。

[方法与步骤]

急性动物实验时，记录呼吸运动的方法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管连接记录；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有压力传感器的呼吸带记录；第三种是通过张力传感器记录隔肌运动。

先将动物麻醉、固定、进行颈部气管、动脉及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。

1、剑突软骨分离术

切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨于胸骨完全分离，但必须保留附于其下方的隔肌片，并使之完好无损。此时隔肌的运动可牵动剑突软骨。

2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上。

3、开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。

4、实验观察（1）记录呼吸运动曲线，并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。

（2）增加无效腔对呼吸运动的影响

将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔。观察并记录呼吸运动曲线的改变。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管待呼吸正常。

（3）CO2对呼吸的影响

将气管插管的一个侧管接通装有CO2的气袋，同时夹闭另一侧管，使家兔对着CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除CO2气袋，待呼吸恢复正常。

（4）缺氧对呼吸运动的影响将气管插管的一个侧管接通装有纳石灰的气袋，同时夹闭另一侧管，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除气袋，待呼吸恢复正常。

（5）增加气道阻力对呼吸运动的影响

待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，观察呼吸变化。

（6）KCN对呼吸运动的影响

由耳缘静脉注射1mlKCN溶液，观察并记录呼吸运动的变化。

（7）肺牵帐反射

待呼吸恢复正常后，在气管插管的一个侧管上连同一个20ml注射器，并吸入20ml空气。待呼吸运动平稳后，用相当正常呼吸时的三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml，与此同时夹闭另一侧管。注意观察呼吸节律的变化及运动的状态。实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。同法，于呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何区别（注意：注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管）。

（8）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎双侧迷走神经（二人同时操作，第一结一定要紧、狠，务必阻断神经的传导），注意观察并记录结扎前后呼吸运动曲线的变化。

（9）重复（7）。

（10）剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢段和外周端，观察并记录呼吸运动曲线的变化。

（11）在一侧总经动脉插入动脉插管，缓慢放血20ml，观察呼吸运动曲线的变化。

5、整理实验记录并完成作业。

[分析讨论]

1、CO2浓度增加使呼吸运动加强

CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2十H2O→ H2CO3 → HCO3-＋ H+ CO2通过它产生的 H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。

2、吸人纯氮气使呼吸运动增加

吸人纯氮气时，因吸人气中缺O2，肺泡气PO2下降，导致动脉血中PO2下降，而PCO2却基本不变（因CO2扩散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。

此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O2程度的加深而逐渐加强。所以缺O2程度不同，其表现也不一样。在轻度缺O2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。

3、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响

增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中PCO2、PO2-下降，刺激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深加快；另外，气道加长使呼吸气道阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频率加快。

4、静脉注人乳酸（血液中H+增高）

静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。因为乳酸改变了血液PH，提高了血中H+浓度。H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。

5.该实验是向肺部吹起造成的肺部牵张反射。

向肺部吹气相当于使肺部发生扩张，这种扩张刺激了气管平滑肌的牵张感受器，冲动由迷走神经传入延髓，抑制吸气神经元，切断吸气，引起被动呼气。

6.该实验是从肺部抽气造成的肺部牵张反射。

从肺部抽气造成了肺部的萎缩，信号通过迷走神经传入呼吸中枢的程度减弱，对于吸气神经元的抑制程度减小，就会引起吸气神经元发生兴奋，增加呼吸的强度

7、切断一侧迷走神经后，呈现慢而深的呼吸，但不是很明显。

迷走神经是肺牵张反射的传入纤维。肺牵张反射中的肺扩张反射（亦称吸气抑制反射）的生理作用，在于阻抑吸气过长过深，促使吸气及时转入呼气，从而加速了吸气和呼气活动的交替，调节呼吸的频率和深度，当切断一侧迷走神经以后，中断了该侧肺牵张反射的传入道路，肺扩张反射的生理作用就被消除，故呈现慢而深的呼吸运动。由于对侧的迷走神经尚未剪断，对侧仍然存在肺牵张反射，故整体情况下，慢而深的呼吸不是很明显。

8、切断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸（主要是吸气相）。

当切断双侧迷走神经以后，中断了左右两侧的肺牵张反射的传入道路，肺扩张反射的生理作用就被完全消除，故呈现很明显的慢而深的呼吸运动。

实验结论：机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平，动脉血中O2、CO2、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸，维持机体内环境的相对稳定。[实验结果]

第四篇：呼吸运动调节的实验证明

呼吸运动调节的实验证明

一、实验目的1、掌握描记呼吸运动的方法

2、掌握气管插管术

3、观察并分析肺牵张反射等不同因素对呼吸运动的影响及其作用机理

二、实验原理

1、呼吸运动是一种节律性运动，呼吸的频率和深度能随内、外环境条件的改变而改变，这都

依靠神经系统的反射性调节来实现。

2、由于无效腔的存在，每次吸入的新鲜空气不能都到达肺泡进入气体交换。增大无效腔，减

少了肺泡通气量，降低了气体更新率，导致血中二氧化碳增加、氧分压下降。气道加长，使呼吸气道阻力增大，从而使呼吸加深加快。

3、减少O2的浓度后，肺泡PO2，PaO2 ，PaCO2不变，轻度缺氧时，外周化学感受器兴

奋加强，同时延髓呼吸中枢抑制减弱，导致呼吸肌活动加强；严重缺氧时，外周化学感受器兴奋减弱，同时延髓呼吸中枢抑制加强，导致呼吸肌活动减弱。

4、吸入气中二氧化碳浓度增加会使呼吸运动加强：

5、静脉注射乳酸后对呼吸运动的影响：

6、迷走神经在呼吸中的作用：

迷走神经

牵张感受器

气和呼气的交替，使呼吸频率增加 延髓吸气切断机制兴奋，抑制吸气，加速了吸

切断双侧迷走神经后电刺激迷走神经中枢端：

以中等强度电刺激一侧迷走神经中枢端，一般可导致呼吸运动暂停

因为肺牵张反射包括肺扩张后反射性地引起吸气动作的抑制，或者是肺缩小后反射性地抑制呼气动作，使吸气加强。这两种反射的传人纤维都经迷走神经兴奋，产生传入冲动到呼吸中枢，导致呼吸运动的改变。由于电刺激引起的传入冲动持续性的传到呼吸中枢，抑制呼吸运动，故出现呼吸暂停现象。

7、哌替啶可降低呼吸中枢对CO2的敏感性，从而抑制呼吸。尼可刹米可选择性的直接兴奋芫

荽呼吸中枢和颈总动脉和主动脉化学感受器，使呼吸加深加快；同时尼可刹米也能提高呼吸中枢对CO2的敏感性，直接对抗哌替啶的抑制作用。

三、实验动物

家兔

四、实验材料

手术台、剪毛剪、手术刀、手术剪、眼科剪、手术镊、止血钳、台秤、气管插管、80cm橡皮管、注射器、钠石灰瓶、纱布、棉线、RM-6240多道生理信号采集处理系统、呼吸换能器、刺激电极、5%水合氯醛酒精溶液、3%乳酸溶液、生理盐水、碳酸钙、盐酸、哌替啶（也可用杜冷丁）、尼可刹米。

五、方法与步骤

（一）兔气管插管手术

1、麻醉与保定取兔称重，用5%水合氯醛酒精溶液按4ml/kg体重静脉麻醉，仰卧绑定。

2、气管插管手术颈部剪毛，沿颈部正中做3~4cm长的切口，钝性分离皮下组织和肌肉，分

离气管和两侧的迷走神经，穿线备用。用眼科剪在气管上朝向心方向剪一切口，插入Y型气管插管，两侧分别连接短橡胶管。

（二）仪器连接及参数设置

1、连接呼吸换能器导线连接于RM-6240多道生理信号采集处理系统放大器通道1插孔，另

一侧将呼吸带绑缚于实验动物胸部呼吸起伏明显处。刺激器连接于刺激输出插孔。

2、参数设置

（1）打开外置仪器的电源，双击计算机屏幕上的RM-6240多道生理信号采集处理系统图标进

入实验系统

（2）按照“实验呼吸呼吸运动调节”路径进入实验程序

（3）在示波状态下选择一通道，点击其他通道的“生物电”选择下拉菜单中的“关闭”，关

闭其它通道。

（4）参数设置：采样频率800hz，通道模式“呼吸运动”，扫描速度1/div，灵敏度5mv，时

间常数“直流”，滤波常数10hz，刺激参数“正电压刺激”，串联刺激，强度2，波宽1ms，延时0ms，重复次数

1（5）点击“开始记录”按钮即可开始记录。

（三）实验项目

1、描记正常呼吸曲线，记录呼吸频率、呼吸深度。

结果预测：呼吸正常平稳。

2、增大无效腔气管插管一侧接一段80cm橡皮管，观察呼吸运动的变化。

结果预测：呼吸加深加快

3、窒息夹闭橡皮管，观察呼吸运动的变化情况，结果明显后去掉橡皮管，恢复正常呼吸。

4、向鼻腔中注射冷水几滴，刺激鼻腔粘膜，观察对呼吸的影响。

结果预测：呼吸加深加快。

5、增加吸入气体中CO2的浓度将充气的胶皮手套套在气管插管的一侧管上，持续呼吸以缓

慢增加吸入气体中CO2的浓度，观察呼吸运动的变化。

结果预测：呼吸加深加快

6、减少吸入气体中O2的浓度将气管插管侧管通过一只钠石灰瓶与盛有空气的球胆相连，使动物呼吸球胆中的空气。经过一段时间后球胆中的氧气明显减少，但CO2并不增多，观察此时呼吸运动的变化。待呼吸变化明显后，恢复正常呼吸。

结果预测：呼吸先加强后减弱

7、牵张反射将事先装有空气（约20ml）的注射器经橡皮管与气管套管的一侧相连，在吸气

相之末立即向肺内打气，观察呼吸运动有何变化？待呼气运动平稳之后，再于呼气相之末立即抽去肺内气体（约20ml），观察呼吸运动有何变化？分析变化产生的机理。

结果预测：向肺内打气，呼吸运动暂时停止在呼气状态；抽去肺内气体，呼吸运动暂时停止在呼气状态

8、增加血液中H+的浓度经耳缘静脉快速注入3%乳酸1~2ml，观察呼吸运动的变化。结果预测：呼吸加深加快。

9、待呼吸曲线恢复正常之后，由兔耳缘静脉注射50g/L哌替啶，缓慢注射，同时密切观察家

兔呼吸曲线，一旦出现抑制立即停止给药。出现严重明显的抑制波形时，由耳缘静脉注射250g/L尼可刹米。观察并记录呼吸变化。

结果预测：注射哌替啶后呼吸减慢或停止；注射尼可刹米后，呼吸恢复正常。

10、迷走神经的作用

（1）切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。再将另一侧迷走神经结扎后在离中端剪断，观察呼吸运动又有何变化。

结果预测：呼吸频率增加。

（2）重复第6项实验，比较呼吸变化有什么区别。

结果预测：剪断迷走神经后，在缺氧状态下，呼吸频率和强度不发生变化

（3）以2~3V电压连续刺激迷走神经向终端，观察呼吸运动的变化。

结果预测：呼吸运动暂停

（四）实验后打印实验相关数据。

第五篇：生理学实验报告

生理学实验报告，请按照以下格式书写，将实验结果（包括图表）填写在实验结果项下，并对实验结果进行讨论与分析，每次实验课结束后一周内提交有效，逾期将无法提交。（写作业时可将本报告格式模板复制粘贴，以方便书写）（临床医学）专业生理学实验报告 第（1）次 【实验名称】坐骨神经——腓肠肌标本的制备

【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术，为以后实验打下基础。

【实验材料】两栖类手术器械一套（粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、金属探针、玻璃分针、蛙板）、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、脱脂棉、任氏液。【实验步骤】

1· 手术

（1）破坏脑和脊髓

取蟾蜍1只，用水冲洗干净。左手按住蟾蜍，用拇指按压背部，食指按压头部前端使其头部前俯，右手持刺蛙针在头前缘沿正中线向尾端刺划，所触划到的头部后端的凹陷处，即枕骨大孔。在此处将刺蛙针垂直刺入皮肤，有突破感后再将刺蛙针折向前经枕骨大孔刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织；再将刺蛙针刺入脊椎管，反复提插捣毁脊髓。此时若蟾蜍的四肢松软，呼吸运动消失，表示脑和脊髓已完全破坏，否则应按上法再行捣毁。

（2）剪除躯干上部及内脏

在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起，在骶髂关节水平以上0.5~1cm处用粗剪刀剪断脊柱，然后将粗剪刀向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤，是蟾蜍头、上肢与内脏自然下垂，将其一并剪除弃去，仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴与脊柱两侧的坐骨神经。在整个剪除过程中注意误伤神经。

（3）剥皮

左手用组织镊夹紧脊柱断端（注意：不要夹住或触碰神经），右手捏住其上的皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤，将标本放在盛有任氏液的平皿中。将手及用过的全部手术器械洗净，再进行下述步骤。

（4）分离两腿

用镊子从背位夹住脊柱将标本提起，剪去向上突出的骶骨，然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半，并从耻骨联合中央剪开两侧大腿，然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。

（5）制作坐骨神经腓肠肌标本。

①游离坐骨神经

取一腿放于蛙板上，用玻璃分针沿脊柱侧游离坐骨神经。将标本背侧向上放置，划开梨状肌群及其附近的结缔组织，循坐骨神经沟，找出坐骨神经的大腿部分，用玻璃分针小心剥离。用玻璃分针将坐骨神经轻轻提起，以眼科剪剪断其所有分支，并将神经一直游离至腘窝为止，再用粗剪刀剪下一小段与坐骨神经相连的脊柱，并将游离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上。

②去除大腿肌肉

在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉并用组织剪将股骨刮干净，然后在股骨中部剪去上段股骨。

③完成坐骨神经腓肠肌标本

用眼科剪剪开跟腱腱膜，在跟腱处穿针结扎，并于结扎线远端剪断跟腱。游离腓肠肌至膝关节处，然后沿膝关节将小腿其余部分全部剪掉，这样就制得一个具有附着在股骨上的腓肠肌并带有支配腓肠肌的坐骨神经的标本。2．用锌铜弓检查标本

将锌铜弓在任氏液中沾湿后，迅速接触坐骨神经，如腓肠神经发生明显而灵敏的收缩，则表示标本的兴奋性良好。即刻将标本放在盛有任氏液的平皿中，以保持其兴奋性。

【实验结果】（图表粘贴处）

【结果讨论与分析】这次试验总体来说，是非常成功的。我们完整地观察了蟾蜍坐骨神经反射的全过程，还观察到了阈上刺激和阈下刺激，通过串刺激观察到了蟾蜍的肌肉完成的强直性收缩过程，我们得到了清晰的数据图表。很好地锻炼了我们的动手实践能力。深刻理解了坐骨神经-腓肠肌标本完成的不同刺激强度、刺激频率对骨骼肌收缩的影响实验。尤其是强直收缩的生理意义：正常体内由运动神经传到骨骼肌的兴奋冲动都是快速连续的，体内骨骼肌收缩几乎都属于完全强直收缩。强直收缩显然可以产生更大的收缩效果，强直收缩所能产生的最大张力可达单收缩的4倍左右。另外肌肉发生强直收缩时，结合课文所学，动作电位也不会发生融合，肌肉动作电位只出现频率加快，却始终各自分离而不会发生融合或叠加。这是由于肌肉的动作电位只持续1～2ms，即使刺激频率落于前一次刺激引起的动作电位持续期间之内，组织又正好处于兴奋性的绝对不应期，这时新的刺激将无效，既不能引起新的动作电位，也不引起新的收缩。最后应注意，为了保证试验成功，用玻璃分针分离神经时，不可用金属器械碰触。及时用任氏液浸湿标本，保持其兴奋性。