血清γ-球蛋白的分离纯化实验报告

2019-09-16 15:04:09下载本文作者:会员上传
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血清γ-球蛋白的分离纯化

一、目的与要求

1、掌握分离纯化蛋白质的基本原理和基本过程。

2、熟悉盐析、离心、层析、电泳等生化基本技术在蛋白质分离纯化中的综合应用。

3、学会设计和制定分离纯化蛋白质的实验方案,技术路线,质量监控和保证措施。

二、实验原理

血清蛋白有300多种,可粗略的分为清、球蛋白两大类,γ球蛋白只是球蛋白中的一个亚类。欲用常规方法获得,可先用半饱和硫酸铵从血清中盐析出球蛋白,接着用葡萄糖凝胶G-25脱去球蛋白中的盐分最后用DEAE纤维素阴离子交换柱便可直接从脱盐的球蛋白溶液中分离纯化出γ球蛋白,其反应机理如下:

C2H5

H

纤维素-O-(CH2)2-N(C2H5)2

纤维素-O-(CH2)2-N+……H2PO4

H++H2PO4

DEAE纤维素离子交换柱

COOH

C2H5

α、β、γ球蛋白

NH2

COO

H

经过盐析和脱盐的球蛋白液

纤维素-O-(CH2)2-N+…α和β

G

PH6.3

NH2

交换到柱上的α和β-球蛋白

H2PO4

COOH

γ-球蛋白

NH3+

被DEAE柱分离纯化的γ-球蛋白

被柱层析交换结合的α球蛋白和β球蛋白,可通过增加洗脱液的离子强度或降低洗脱的pH值(也可两者同时改变),使其分部洗脱下来而被纯化。纯化前后的γ球蛋白可用电泳方法进行比较鉴定。

三、仪器和材料

仪器:离心机,1.5×40cm层析柱,层析架或滴定台,核酸-蛋白检测仪,部分收集器,紫外分光光度计,色谱柱,电泳槽,电泳仪。

材料:马血清,Sephadex

G-25×200g,DEAE-32×200g。

四、实验步骤

(一)分离纯化步骤

1、取3mL,4℃预冷血清,加入3mL

4℃预冷的饱和硫酸铵。边滴边摇。

2、静置大于10min后,3500rpm离心15min,弃去上清液,将沉淀溶于少量的生理盐水。从中取0.5mL用于测定蛋白质含量。

3、将剩余的样品上Sephadex

G-25柱,用0.02

mol/L

pH6.5的NH4AC缓冲液洗脱,每管收集3

mL,用于绘制洗脱曲线,选择颜色最深(即浓度最高管)的取0.5mL留待电泳用。

4、将剩余的蛋白质溶液上已平衡好的DEAE-32柱(装一半的柱子),用0.02

mol/L

pH6.5

NH4AC缓冲液洗脱,用干净的试管收集,并用20%磺基水杨酸检测是否有蛋白流出,并绘制洗脱曲线,收集的蛋白质溶液即为γ球蛋白(留少量电泳用,0.5ml测[Pr])。

5、柱子再生。先用0.3mol/L高盐缓冲液,再用0.02mol/L缓冲液平衡。

(二)电泳步骤

1、安装垂直板电泳槽,按表配制分离胶溶液。用滴管吸取分离胶溶液,沿管壁注入玻璃板至距上端3cm处(插梳为准)

2、立即用滴管沿凝胶管壁加人蒸馏水约0.5cm高度,加水时应注意减少胶液表面的震动与扩散。加蒸馏水的目的,隔离空气中的氧和消除凝胶柱表面的弯月面,使凝胶表面平坦(加水时切勿呈滴状滴入胶液)。

3、静置30分钟,在凝胶表面与水之间出现清晰的界面,表示聚合已完成(注:刚加水时看出有界面,后逐渐消失,等再看出清晰界面时,表明凝胶已聚合)。用滴管吸去凝胶管的水层,并用滤纸条(无毛边)轻轻吸去凝胶表面残留的水分,注意不要损伤已聚合的凝胶表面。

4、按表制备浓缩胶,沿管壁加入浓缩胶,插上梳子,静置15分钟,待凝胶聚合后,待用。

5、加入10倍稀释的甘氨酸一Tris缓冲溶液于电泳槽中,用注射针排除样品孔中的气泡,样品与样品处理液1:1混合后,用微量注射器上样。

6、将上电泳槽的电极接至电泳仪的负极,下电泳槽的电极接至电泳仪的正极,接通电源,刚开始5分钟内6-7

mA/板,待示踪染料迁移到下口约0.5cm处时,就可停止电泳,切断电源(电泳时间约为

2/小时左右)。

7、剥胶

取下玻璃板,用带有10cm长的注射针头,内盛蒸馏水作润滑剂。将针头插人胶与玻璃板之间,边注水边慢慢推针前进,靠水流压力和润滑作用使玻璃板与凝胶分开。

8、固定,染色与脱色

固定染色液染色过夜,用脱色液脱色.9、染色,加入染色液,染色过夜。

10、拍照,记录结果。

五、实验结果与分析

**

血清样由于蛋白质种类较多,区带不清。脱盐后,样品中剩余蛋白质为α、β、γ-球蛋白,从结果中可以看到几条较为明显的区带。γ-球蛋白的电泳结果显示其分离的较为纯净。

六、注意事项

1、上样前要将使用过的柱子重生。

2、上样时要注意3个相切:缓冲液与柱床表面相切;样品与柱床表面相切;洗样时缓

冲液与柱床表面相切。

3、用琼脂糖封胶时一定要封延时,防止漏胶。

4、配胶时要按照顺序加样,配完后要立刻混匀。

5、剥胶时要在水冲洗的情况下进行。

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