第一篇：实验三 细胞骨架的光学显微镜观察
实验三
细胞骨架的光学显微镜观察
一、实验目的
掌握植物细胞骨架的光镜标本制作方法。
细胞骨架是指细胞质中纵横交错的纤维网络结构，按组成成分和形态结构的不同可分为微管、微丝和中间纤维。它们对细胞形态的维持、细胞的生长、运动、分裂、分化和物质运输等起重要作用。光学显微镜下细胞骨架的形态学观察多用1% Triton X-100处理细胞，可使细胞膜溶解，而细胞骨架系统的蛋白质被保存，再用考马斯亮兰R250染色，使得胞质中细胞骨架得以清晰显现。
二、材料、试剂和仪器
1． 材料
新鲜洋葱鳞茎、人口腔上皮细胞
2． 试剂
1）M缓冲液（pH 7.2）各成分终浓度为：
50mmol/L咪唑(MW:68.08)，50mmol/L KCl(MW:74.55)，0.5mmol/L MgCl2?6H2O(MW:203.30)，1mmol/L EGTA(MW:380.36)，0.1mmol/L EDTA-Na2(MW:372.24)，1mmol/L DTT(MW:154.3)
2）6mmol/L PBS磷酸缓冲液（pH 6.5）:
KH2PO4 : Na2HPO4?2H2O = 7:3(见附录3 查磷酸缓冲液的配置)
3）0.7% NaCl生理盐水
4）1% Triton X-100(聚乙二醇辛基苯基醚)溶于 M-缓冲液
5）3% 戊二醛100mL: 25% 戊二醛取12mL ,PBS 88mL
6）0.2% 考马斯亮蓝R250染液 200mL:
考马斯亮蓝R250 0.2g，甲醇 46.5mL，冰乙酸 7mL，蒸馏水46.5 mL
3．仪器
光学显微镜，镊子，剪刀，试管，表面皿，滴管，载玻片，盖玻片,灭菌牙签，1.5mL离心管，1mL吸头，1mL取液器，酒精灯，染色缸 细胞骨架动画
三、实验程序
四、结果与分析
洋葱鳞茎外层与内层的表皮细胞比较（放大倍数10×20）
五、思考题
1．光镜下观察到的细胞骨架有何形态特征？
2．对实验成功或失败的原因进行讨论。
实验中的注意事项和关键步骤
第二篇：实验三 植物细胞骨架的光学显微镜观察
实验三 植物细胞骨架的光学显微镜观察
一、实验目的
了解细胞骨架的结构特征及其制备技术。
二、实验器具及试剂 1．器具
普通光学显微镜、50ml烧杯、玻璃滴管、容量瓶、试剂瓶、载玻片、盖玻片、镊子、小剪刀、吸水纸、擦镜纸。2．试剂
M-缓冲液：咪唑、KCL、MGCL2、EGTA【乙二醇双醚四乙酸】、EDTA、疏基乙醇或DTT(二硫苏糖醇)；（PH6.8）磷酸缓冲液（用NaHCO3调PH值）；Triton X-100，用M-缓冲液配制；考马斯亮蓝R250,其溶剂为：甲醇46.5ml、冰醋酸7ml、蒸馏水46.5ml；戍二醛、乙醇、叔丁醇、正丁醇、二甲苯、中性树胶等。3.实验材料 洋葱鳞茎
三、实验内容
细胞骨架事由蛋白质丝组成的复杂网状结构，根据其组成成分和形态结构可分为微管、微丝和中间纤维。它们对细胞形态的维持，细胞的生长、运动、分裂、分化，物质运输，能量转换，信息传递，基因表达等起到重要作用。当用适当浓度的Triton X-100处理细胞时，可经细胞质膜中和细胞质中的蛋白质和全部脂质被溶解抽提，但细胞骨架系统的蛋白质不受破坏而被保存，经用戊二醛固定，考马斯亮蓝R250染色后，可在光学显微镜下观察到由微丝组成的微丝束为网状结构，就是细胞骨架。
（一）溶液配制（1）M-缓冲液配制：
M-缓冲液(10×原液)：咪唑34.04g，氯化镁(MgCl2•6H2O)1.02g，EGTA（乙二醇双醚四乙酸）3.8g，EDTA(乙二胺四乙酸)0.29g，巯基乙醇0.78g(0.7ml)蒸馏水加至1 000 ml。使用时，取100 ml(10×原液)加900 ml蒸馏水。（2）6mmol/L（PH6.5）磷酸缓冲液配制： 甲液：NaH2PO4•2H2O，0.938g 溶于蒸馏水中，最后稀释至1 000ml。乙液：Na2HPO4 •12H2O，2.15g加蒸馏水溶解，最后加水至1 000ml。取甲液685ml，乙液315ml加蒸馏水1000ml即成6mmol/LPH6.5的磷酸缓冲液。
（3）1%Triton X-100，用M-缓冲液配制： 取22ml Triton X-100液加M-缓冲液至200ml。（4）0.2%考马斯亮蓝R250：
考马斯亮蓝R250为0.2g，甲醇46.5ml、冰醋酸7ml、蒸馏水46.5ml（5）3%戍二醛，用磷酸缓冲液配制。
（二）实验方法与步骤
（1）撕取洋葱鳞茎内表皮（约1cm2大小若干片）置于装有PH6.8磷酸缓冲液的50ml烧杯中，使其下沉。
（2）吸去磷酸缓冲液，用1% Triton X-100处理20~30min。（3）吸去Triton X-100，用M-缓冲液洗3次，每次10min。（4）3%戊二醛固定0.5~1h。
（5）PH6.5磷酸缓冲液洗三次，每次10min。（6）0.2%考马斯亮蓝R250染色20~30min。
（7）用蒸馏水洗1~2次，细胞置于载破片上，加盖玻片，于普通光学显微镜下观察。
（8）如观察效果好，可制作成永久切片。
在有样品的50ml烧杯中，顺序通过如下药物：50%乙醇、70%乙醇、95%乙醇、1/2V95%乙醇+1/2V叔丁醇、叔丁醇（每级5-10min）；或正丁醇、正丁醇、二甲苯、二甲苯（每级5-10min），然后捞取样品，平展于载玻片上，经镜检，效果好的，可加一滴中性树胶，盖上盖玻片，即成永久片。
四、实验报告
1．绘出植物细胞骨架微丝结构图。
2．分析在光学显微镜下观察到的细胞骨架的形态特征。
第三篇：实验五 植物细胞骨架的光学显微镜观察
实验五 植物细胞骨架的光学显微镜观察
一、实验目的：
掌握植物细胞骨架处理及染色方法。
二、实验原理：
用适当浓度的TritonX-100处理时，可将细胞内蛋白质破坏，但细胞骨架系统的蛋白质却被保存，后者用考马斯亮蓝R250染色，可在光学显微镜下观察到细胞骨架的网状结构。
三、实验试剂：
1、M-缓冲液；
2、pH6.8磷酸缓冲液； 3、1% TritonX-100，用M-缓冲液配制； 4、0.2%考马斯亮兰R250； 5、3%戊二醛，用pH6.8磷酸缓冲液配制；
四、实验步骤：
1、撕取洋葱鳞茎内表皮细胞约1cm2大小若干片，置于装有pH6.8磷酸缓冲液的培养皿中使其下沉(约1-2min)；
2、吸去pH6.8磷酸缓冲液，用1% TritonX-100处理30min；
3、吸去1% TritonX-100，用M-缓冲液洗三次，每次5min； 4、3%戊二醛固定30min；
5、pH6.8磷酸缓冲液洗三次，每次5min； 6、0.2%考马斯亮蓝R250染色10min；
7、用蒸馏水洗1-2次，将内表皮细胞平铺于载玻片上，加盖玻片，于显微镜下观察。
五、实验结果：
在光学显微镜下，可以清晰的看到细胞骨架呈淡蓝色。
六、分析与讨论：
1、洋葱表皮细胞中，质膜下，核周，胞质中的细胞骨架的分布有无不同？ 答: 核周细胞骨架分布紧密，向外基质出延伸时明显变得稀疏，质膜下维持细胞的外部形态。因此显微镜下看到的细胞骨架形态基本与细胞形态相似。胞质中细胞骨架呈现纤维状向质膜发射，质膜处的细胞骨架围成细胞固有形态。
2、为什么试验中所看到的洋葱表皮细胞中细胞骨架有的成纤维状，有的成串球状？
答: 细胞骨架有运输细胞内物质的作用，细胞内物质沿着细胞骨架的通路进行运输，因此细胞骨架成串珠状可能是由于被运输物质停留在纤维的某一位置上使纤维状的细胞骨架成串珠状。
第四篇：实验二、植物细胞骨架的观察
实验
二、植物细胞骨架的观察
一、实验目的
观察植物细胞内网状的骨架结构。
二、实验原理
在真核细胞的细胞质中，存在着由蛋白质纤维构成的网状骨架系统。Triton X-100是非离子去垢剂，用适当浓度的Triton X-100处理细胞，可将细胞的膜成分抽提掉，由于失去膜的保护和维系作用，细胞内其他可溶性成分也随之流失，这样一来水不溶性的细胞骨架系统蛋白质却被保留下来，而这被保留下来的蛋白质用考马斯亮蓝R250染色，便可在光学显微镜下观察它们——细胞骨架的网状结构。为了更好地观察微丝束的结构，采用了戊二醛对细胞进行固定。戊二醛是一种双交联剂，渗透快，交联能力强，对蛋白质的固定效果好，且不破坏细胞骨架的结构。M-缓冲液洗涤细胞,可以提高细胞骨架的稳定性。M－缓冲液和磷酸缓冲液作用都是维持细胞的渗透压
三、实验用品
显微镜、50ml烧杯、盖玻片、载玻片、滤纸、M-缓冲液、磷酸缓冲液（PBS）、1% Triton X-100、0.2%考马斯亮蓝R250、3%戊二醛、洋葱鳞茎。
四、实验方法与步骤
1、撕取洋葱鳞茎内表皮若干片，大小约1平方厘米，置于装有PH6.8的磷酸缓冲液（PBS）的50ml烧杯中，使其下沉。
2、用滤纸吸去磷酸缓冲液（PBS），用1% Triton X-100处理20-30分钟。
3、吸去Triton X-100，用M-缓冲液洗3次，每次10分钟。
4、用3%戊二醛固定10-15分钟。
5、用磷酸缓冲液（PBS）洗3次，用滤纸吸干。
6、用0.2%考马斯亮蓝R250染色20-30分钟。
7、用蒸馏水洗1-2次，将洋葱细胞置于载玻片上，加上盖片。
8、在光学显微镜下镜检。
五、作业
写出你的实验结果并绘成图。
附：药品配置
1、M—缓冲液（10×原液）
咪唑（50m mol）34.04g MgCl.6H2O 1.02g EGTA（1m mol）3.80g EDTA（0.1m mol）0.29g 巯基乙醇 0.78（0.7ml）蒸馏水 加至1000ml 用时稀释，取50ml（10×原液）加450ml蒸馏水。
2、磷酸缓冲液（PBS）
配方①：
NaCl 8.0g Na2HPO4.2H2O 1.42g KCl 0.20g KH2PO4 0.20g MgCl2.6H2O 0.10g CaCl2（无水）0.10g 0.5%酚红 4ml 双蒸水 加至100ml 用 5%NaHCO3调PH值至6.8。也可先配成10被浓缩液，使用时再稀释。配方②：
6m mol/L PH6.5磷酸盐缓冲液
A液：NaH2PO4.2H2O 938mg/1000ml B液：Na2HPO4.12H2O 2150mg/1000ml 取A液68.5ml，B液31.5ml，加蒸馏水100ml即为工作液。加入0.5%酚红4ml。3、1% Triton X-100 用M-缓冲液配制。
取1mlTriton X-100液加M-缓冲液至100ml。4、0.2%考马斯亮蓝R250配制
考马斯亮蓝R250 0.2g 甲醇 46.5ml 冰醋酸 7ml 蒸馏水 46.5ml 5、3%戊二醛的配制
用磷酸缓冲液（PBS）配制。取3ml戊二醛加PH7.0、（1/15）磷酸盐缓冲液至100ml。
第五篇：细胞骨架的观察
细胞生物学实验
细胞骨架的观察
姓名：邓燕玲 学号：201011202912 专业：生命科学生物科学 实验时间：20121030 指导老师：张伟 同组同学：张丽华
细胞生物学实验
实验目的
1.了解细胞骨架的组成、结构和功能。2.学习细胞骨架标记的原理和方法。3.学习用鬼笔环肽标记微丝的方法步骤。
4.观察小鼠胚胎成纤维细胞和中国仓鼠卵巢细胞的细胞微丝骨架。5.讨论细胞骨架在中学中教学的重点与难点。
实验原理
1.细胞骨架一般是指真核细胞质内的蛋白质纤维网架系统。广义大的细胞骨架包括细胞膜骨架、细胞核骨架和细胞质骨架。直至1963年，科学家用戊二醛在室温下固定成功后，人们才广泛地观察到各类细胞骨架纤维的存在。细胞骨架包括微管、微丝和中间纤维。不同成分有不同的结构和功能。细胞骨架处于不断地动态平衡中，并且有极性。2.微丝的标记方法可分为在固定细胞中标记和在活体中标记。本实验采用的是固定细胞标记，主要运用带荧光探针的抗体或鬼笔环肽标记，这需要对样品进行化学固定和膜的通透。
3.荧光探针是一种标记物，其中包含的荧光物质在从外界吸收能量后变成激发态，在回到基态时以电磁波的形式释放能量，从而产生荧光。荧光物质在受到长时间的照射后会淬灭。
4.鬼笔环肽（phalloidin）是一种剧毒生物碱，能结合F-actin，而不与G-actin结合，并且在结合后可以抑制微丝的解聚，破坏微丝聚合和解聚的动态平衡。鬼笔环肽对细胞有毒害作用，因此不利于活体细胞的研究。
5.荧光显微镜是用于观察和分析样品中产生的荧光物质的成分和定位的一种光学显微镜，荧光物质在受到激发光的激发下，会发出比激发光波长更长的光，从而在显微镜下观察。
实验器材
1.材料：小鼠胚胎成纤维细胞、CHO中国仓鼠卵巢细胞
2.试剂：PEM缓冲液（50 mM pipes,5 mM EGTA, 5 mM MgSO4, 0.225M 山梨醇），0.5 % Triton X-100（溶于PEM缓冲液），4%多聚甲醛（溶于PEM缓冲液），55nM Alex-phalloidin 3.器械：荧光显微镜 实验步骤
1.将小培养皿中的培养液用移液枪吸掉，加入预热的1mlPEM清洗，注意不要打在盖玻片
细胞生物学实验
上，洗三次。
2.加入1ml37°C预热的0.5 % Triton X-100，放置10min。3.加入预热的1mlPEM清洗，洗三次。4.加入预热的4%多聚甲醛1ml，放置15min。5.加入预热的1mlPEM清洗，洗三次。
6.剪下一段与载玻片宽度一样的封口膜，将封口膜包在在玻片上，在玻片上的封口膜上加10L的 55nM Alex –phalloidin，将载玻片有细胞的一面朝下盖片，在暗盒中静置25min。7.用37°预热的PEM洗三次，将载玻片有细胞的一面朝上转移到一个新的载玻片中，在荧光显微镜下观察并拍照。
实验结果 思考题
1.PEM缓冲液的作用是什么？
答：促进微管中肌动蛋白的聚合，抑制其解聚，使微管形态固定，便于观察。2.1％Triton X-100处理细胞的作用是什么？
答：能溶解膜上的脂类和蛋白质，使细胞膜穿孔，便于标记物质进入细胞。3.如何在中学教学中推进细胞骨架的教学？
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