血液临床检验分析前阶段标本准备的质量管理

第一篇：血液临床检验分析前阶段标本准备的质量管理

血液临床检验分析前阶段标本准备的质量管理

【摘 要】血液临床检验分析前阶段标本准备的质量控制是保证血液检验结果准确、可靠的一个基础环节，是保证整个检验质量的前提，只有得到良好的标本，才能得到准确真实的检验结果。本研究分析了影响标本质量的因素，提出了提高血液临床分析前阶段标本准备的质量管理的方法，以保证检验的高质量高速率的进行。

【关键词】血液临床检验分析；标本准备；质量管理

【文章编号】1004-7484（2014）03-01062-01

血液临床检验分析前阶段标本准备的质量保证是减少结果误差、保证检验质量的前提，其质量的控制与患者的准备、医疗人员的工作手段、标本最终的储存及处理均有很大的关联，正确的、规范的采集和处理标本是质量控制的重要内容。如若不注意分析前的标本准备的质量管理和控制，那么再完美的检验设备和检验过程也无法保证检验结果的客观准确。选择合适的检验项目

医生应注意选择正确、科学的检验项目，着重考虑检验分析的针对性、有效性、时效性和经济性，其中，针对性是指根据患者的病情来确定检验项目；有效性是指要明确该检验项目对疾病诊断的敏感性和特异性；时效性是指报告结果的及时程度；经济性是指尽量减少不必要的检查费用。患者采血前的准备

2.1减少饮食因素带来的影响

患者的饮食成分、饮食结构与习惯对标本的化学成分和含量都有影响，部分项目要严格控制饮食。饮食影响血糖、三酰甘油和无机磷等结果，高脂肪饮食，脂肪经乳糜化进入血液成乳糜微粒，导致血清混浊，血液中某些物质含量异常，出现吸光度干扰。因此，根据检验目的，标本留取前医生、护士要指导患者进行适当合理的饮食。

2.2尽量减少患者的剧烈运动

人体剧烈运动会引起血液某些成分含量的改变，因为运动时出汗、剧烈呼吸、肌肉收缩及神经紧张等导致了生理状况的改变。钾、钠、钙、磷、白蛋白、尿酸、尿素、胆红素、天门冬氨酸转移酶、碱性磷酸酶等都会有所升高。正常人坐立时血浆总量比卧位减少12%左右，静脉渗透压增加，又进一步导致血管活性物质的释放，直立时醛固酮、肾上腺素、血管紧张素和去甲肾上腺素都有7%左右不等的升高。因此，采血前避免剧烈运动、情绪过分紧张和保持正确坐姿是非常重要的。若患者有较为剧烈的运动，则标本采集人员应嘱其安静休息三十分钟后再开始采血。

2.3采血前尽可能的减少药物的服用

在服用多种药物的同时进行多项化验检查，药物引起的化验异常会与疾病引起的一样多，影响检验结果的常见药物包括：抗凝剂、降糖药、兴奋剂、激素、抗癫痫药、降压药、镇痛药、抗感染药及某些中药等，不同的药物造成的影响程度不一，有些药物影响检验结果的机制目前还不清楚。有的改变是因检验过程中化学反应被干扰，有的则反映特殊器官受损，有的患者代谢功能特殊，对某一化合物的形成或排出呈加速或迟滞。为了最大限度地避免和消除“药物干扰检测”这一现象，医师、化验师和药师必须研究不同给药途径给药后的药物代谢动力学，判定检验结果时要综合考虑给药途径、药物的血药浓度水平、药物的半衰期、排泄途径和清除率等。许多药物对检验结果的干扰，常与血药浓度呈正相关，故检验取样应尽量避开血药高峰期。当然，疾病条件许可时，应提早几天停药，以完全排除药物对检测的影响，但这并不是每个患者都能做到的 规范标本的采集过程

要尽量的规范标本的采集过程，在采血时要执行三查七对制度，全面核对患者信息。不规范的操作往往会对患者的身体造成不必要的伤害。压脉带束缚时间过长并用力拍打拟穿刺部位可致标本溶血，采血部位消毒后，消毒剂未干燥即行静脉穿刺，可发生溶血而影响检验结果，在同一部位反复进行静脉穿刺，针头在静脉内探来探去，采血不顺利易发生凝血或溶血，采血后不拔下针头，直接用力将血注入试管易溶血，采血时注射器漏气，注射器、针头、试管不干燥，将气泡注入血标本都会引起标本溶血，采血量的准确性也会对检验结果造成影响。这些问题应通过规范的采血操作尽量的避免。在用全血或血浆检验的标本中，需加入抗凝剂并混匀，应严格的控制血液与抗凝剂的比例。由于体液随着体位的不同可在血管内外流动，造成血液稀释度的不同而影响检验结果，采集应采取坐位或卧位，减少影响的同时提高安全性。绝对避免在输液手臂采血，造成检验结果严重偏差。止血带的使用时间不宜过长及过紧，也不宜用力拍打穿刺部位，采血要在一分钟内完成，避免混入组织液和产生气泡，以免激活凝血因子。应用成品凝血测定管时要适当调整血液量，否则会影响检测结果。血液采出后要轻柔地将真空采血管上下颠倒或倾斜旋转使血液和抗凝剂充分混匀，避免剧烈晃动溶血或混匀不够凝血。要保证真空采血管密封，避免双向污染或溶血。标本的储存及转运

血液标本不宜放置过久，因为细胞还在继续进行新陈代谢，使pH及血氧分压下降，二氧化碳分压上升，影响数据的准确性，标本采集后应将血液立即送检，储存以十五到二十度储藏为宜，高温会加速凝血因子失活，低温可以使凝血因子变性。储存时间不超过两小时，在四小时内应检测完毕。要记录储存温度和储存时间。应用密封容器转运标本，转运过程要平稳，摇动、震荡等因素均可造成溶血，要防止标本容器的破损及标本的污染，防止唯一标志的丢失和混淆。标本运送到实验室后，检验科要认真核实检验单与标本是否一致，是否符合检测要求，对合格标本要经过检验人员验收。不合格标本要有拒收措施，注明拒收原因。标本到达实验室后按照文件尽快对标本进行处理。结语

标本的采集受到的影响因素很多，是临床检验系统质量管理中较为薄弱的环节，标本检验数据的准确性和及时性，直接影响着临床医师对患者疾病的正确诊断、及时救治、及预后判断等。因此，要建立健全各项规章制度，规范操作过程，加强标本准备的质量管理，以保证检验工作的高质量、高速度完成，更准确的了解患者的病情，更好的为患者服务。

参考文献：

[1] 徐奎军，影响实验室分析检测前阶段质量的因素及管理对策[J]，职业与健康，2007

[2] 吕珏，浅谈医学检验前质量保证[J]，临床检验杂志，2007

第二篇：一般血液标本在临床检验的正确采集及注意事项.

北方药学 2011年第 8卷第 2期 能更好地服务于患者。4讨 论

随着现代医学技术的发展, 不断更新的医疗设备, 医药用 品的广泛应用,手术室工作人员的职业危害因素也在发生着 新的变化,因此应不断正确认识手术室工作环境中现存的及 潜在的职业危害因素, 在实际工作中加强防护, 采取规范的防 护措施, 并且不断消除和减少手术室的各种职业危害因素;不 仅我们护士本身重视职业危害, 而且管理者更应该重视起来, 在硬件上采取多种措施, 如手术室房间的设置, 各种仪器的科 学管理, 物品材料的使用, 消毒, 处置, 在软件上人员的科学配 置, 新技术的推广, 人才的培养等, 只有这样才能有效保证护 理工作质量, 维护手术室护士的身心健康, 才更有利于手术室 工作的可持续性发展。

参考文献

[1]卢艺生, 魏银英, 肖丽珍.手术室护士对血液传播疾病的安全 防护 [J].中国保健 ,2005,13(22:98.[2]郑灵 , 丁兆红 , 王敬茹.手术护士职业危害与防护对策 [J].齐鲁 护理杂志 2004,10(7:458-487.[3]曾因明, 邓小明.2007麻醉学新进展 [M].北京 :人民卫生出版 社 ,2007:292-294.[4]谭群淑.护士职业压力与减负的探讨 [J].现代医药卫生 , 2007,23(3:414.[5]孙增勤.实用麻醉手册 [M].北京 :人民军医出版社 ,2005:50-51.一般血液标本在临床检验的正确采集及注意事项 李 滨(安徽省蚌埠市第 94565部队卫生队 蚌埠 233000

关键词 :血液标本 采集 注意事项

中图分类号:R 446.11文献标识码:B 文章编号:1672-8351(2011 02-0116-01 影响临床实验室检查结果的主要关键因素之一是血液标 本的采集。高质量的血液标本对临床诊断、治疗十分重要。怎 样才能保证血液标本达到检验项目的质量要求,现将体会介 绍如下。

1采血前的患者准备

一般用宣传栏或告示牌告之检查的患者所检查的项目和 注意事项, 如检查血糖、血脂、肝功能等, 最好让患者空腹采 血, 因该状态下血液的各种化学成分处于相对恒定状态, 避免 剧烈运动, 不要饮酒, 检查前一天避免高脂饮食。避免服用有 影响的药物, 以保证化验结果的稳定和准确。当患者需做某些 处置和诊断时应安排在标本采集后进行。

查对制度也要严格执行, 检查采血管的管盖有无松动等。2采血时的质量控制 采血时的无菌操作和采血的时间:采血时要使用合格的 一次性塑料, 要做到一人一针一管一带一垫。理想的采血时间 一般是早晨 7:00~8:00。

采血方法:让患者暴露手臂或其他抽血部位, 采血部位常 用肘静脉或其他静脉, 嘱患者握拳使静脉充盈暴露, 用 0.5%碘 状液由内向外消毒穿刺部位, 直径范围约 5CM , 消毒后, 应等 皮肤干后再抽血。嘱咐患者不要紧张, 情绪放松。入针要准、稳, 尽可能及早松开止血带, 嘱咐患者松拳, 用干棉签按压穿 刺点, 迅速拔出针头, 嘱咐患者或其家属按压穿刺点 3~5min。到不出血为止, 以免发生瘀血。操作人员取下针头, 将血液缓 慢推入试管,避免将泡沫或用力将血液急速推入容器而造成 溶血。整个采血过程的时间越短越好, 最好在 1min 以内完成。如果第 1次采血不成功, 要主动向患者道歉, 以求得患者的谅 解。对第 2次采血没有把握时, 应让有经验的操作人员采血。3采血后的标本处理

标本采集后应尽可能即时送检,向患者详细交待取检验 报告时间。送检过程中注意不要震动或长时间暴露于空气和 过大的温度变化中。对于有严格温度要求的标本, 要使用专用 运送容器, 保温瓶和冷却器等。

采血用品的一般处理:医护人员应旋下采血针, 套入原针 套内, 送焚烧间焚烧处理, 止血带和持针器用 0.5%84消毒液 侵泡 30min 后清洗备用。

4采血注意事项

采血的采集标本量与检验结果有密切关系。很多检验项 目对标本量要求十分严格, 尤其是抗凝标本, 如血沉等, 血量 不够可使结果值偏低, 超量则使结果值偏高, 甚至造成凝血。穿刺的静脉选择不当, 如穿刺的是小静脉或是血管塌陷, 从而使血液流速受到影响, 所以应该选择较大的静脉。

长时间过度加压可以导致血管的溶血,用注射器采血时 用力过大或未去掉针头即将血液注入试管, 用具不干燥, 均可 引起溶血。血液中各种化学成分在红细胞和血浆中的含量不 同, 溶血后使某些化学成分浓度发生明显改变, 使测定结果不 准确。

在采血过程中, 一定要争取患者配合, 建立良好的医患关 系, 营造协调和谐的环境, 让患者采血时保持放松状态, 对待 患者要态度和蔼、热情。详细询问饮食、运动等情况, 对患者不 明白的问题要耐心讲解, 并对检查项目及所需血量告之患者, 认真执行查对制度。

总之,每位临床医护人员在采集检验标本时要熟练掌握 标本容器的准备。采血前、中、后的操作规则, 只有这样才能保 持检验结果的准确, 为临床诊断、治疗提供有用的价值。参考文献

[1]陈永生, 林正大.专家解答化验报告 [M].上海:上海科学技术 文献出版社, 2005, 5.[2]蒋良春.临床检验质量管理的体会 [J].中国基层医药, 1994, 3.[3]王毓三.医学检验科建设管理规范 [M].南京:东南大学出版 社, 2003, 25.116

第三篇：血液标本临床检验不合格原因和相应优化措施

血液标本临床检验不合格原因和相应优化措施

【摘要】目的 探究血液标本临床检验中出现的不合格因素和优化策略。方法 此次针对2016年1月至2018年5月期间本院的64份不合格血液样本进行回顾性分析，并将针对不合格的原因进行分析，并进行有效的处理策略。结果 64例不合格血液样本中，12份采集血液位置不当凝血、20份溶血、6份标准量和要求差异大、4份使用抗凝管错误、3份标签错误、5份脂血、7份送检不及时、7份采集血液位置错误。结论 明确产生血液标本临床检验不合格的原因，对采血的过程进行严格控制，并不断加强工作人员的能力，以提升血液标本临床检验的质量。

【关键词】血液标本；临床检验；不合格

血液标本属于临床中广泛应用的生物体液，而血液标本的检验结果能够为相应的疾病提供诊断参考依据，所以，血液标本的检验准确率可对患者的诊治产生直接影响[1]。其中血液标本的管理和采集和标本质量密切相关，如果标本质量未达标，检测结果则无效且不能为临床诊治提供操作依据。而确保检验质量的基础则是血液标本正确采集的规范性和送检时间，但是产生血液标本不合格的因素较多。因此本次针对血液标本临床检验中出现的不合格因素和优化策略进行了研究。详细内容如下： 资料和方法 1.1 一般资料

此次针对2016年1月至2018年5月期间本院的64份不合格血液样本进行回顾性分析，15份免疫检验标本、17份生化标本、14份凝血功能标本、13份血常规检验标本，5份其它检验标本。

1.2 方法

由相关人员运送血液标本到检验科，之后对核查，并仔细阅读各个科室具体检验项目，检查血液标本的剂量、完整性、有无凝血现象、采取时间以及抗凝剂的正确使用等，按照血液标本具体资料分类归档，对诱发不合格标本的因素记录，并将不合格血液标本退回，并再次进行采血操作，并针对不合格血液标本提出相应的处理策略。

1.3 观察指标 将诱发血液标本不合理因素记录。1.4统计学处理

此次实验数据经统计学软件SPSS19.0进行处理，计数资料以百分比率（%）表示，用卡方χ2检验，组间对比差异较大，存有统计学意义（P＜0.05）。结果

64例不合格血液样本中，18.75%（12/64）采集血液位置不当凝血、31.25%（20/64）溶血、9.38%（6/64）标准量和要求差异大、6.25%（4/64）使用抗凝管错误、4.69%（3/64）标签错误、7.81%（5/64）脂血、10.94%（7/64）送检不及时、10.94%（7/64）采集血液位置错误。讨论

3.1 产生血液不合格的因素 3.1.1脂血与溶血

产生脂血与溶血的主要原因和标本分离、储存以及采集阶段受到多种因素影响相关，进而导致血液样本中的红细胞产生破裂现象，在血液标本采集过程中，皮肤上的消毒液未完全挥发时行采血操作，进而生成大量气泡[2]。采血时间过长、过力拍打采血位置、摇晃试管幅度较大均会诱发脂血与溶血。

3.1.2 血液样本送检不及时

血液标本在运送过程中，极易出现污染、容器渗漏等现象，同时血液样本采集数量较多，未及时送至检验科，进而错过最佳时间，以上几种情况均会直接对检验结果造成影响。

3.1.3 凝血

血液采集用时较长，会导致血液在注射器中出现凝固现象，此外抗凝剂和血液标本置入试管先后顺序混乱、血液采取后为充分摇匀、摇晃时间较短全部会导致血液产生严重的凝血现象。另外，采血剂量超出标准也极易产生凝血。

3.1.4 其它原因

相关采集血液标本的工作人员操作技能缺乏熟练性、责任心较差、标本放错溶器或抗凝管、书写标签措施，血液标本采集为按标准流程操作，为保证全程无菌操作，以上集中现象均会导致血液标本不合格。

3.2 处理措施 3.2.1 创建完整的规范制度，规范采血流程

要改进和完善查对制度，相关采血人员和检验人员需仔细核对血液样本的具体信息，如姓名、所检项目等，核对无误后方可进行相应的操作，要将查对制度贯穿于整个采血和检验流程中。创建标准的采血操作流程制度，以规范采血工作人员的具体操作步骤，要确保准确使用血液容器、控制采集量、选择最佳采血位置，当血液采集完毕后要加入标准剂量的抗凝剂，充分摇匀后密封好，避免与空气接触。要注意采血管必须竖放，预防血液细胞损伤[3]。

3.2.2 血液标本储存和送检

血液样本采集完毕后，必须要保证在四小时内完成检验，若能在规定时间进行检验则需分离血液样本中的血清，要放置于干冰箱内存储。所以，采血后要及时送至检验科，避免错过最佳检验时间，致使标本失效，产生血液标本检验不合格的现象。

3.2.3 强化工作人员的专业技能和责任心

为相关工作人员发放相关血液标本的知识手册，主要内容有详细操作流程、各个流程所用最佳时间、作用以及易发生的错误操作等。院内相应的管理人员定期为采血科与检验科的工作人员开展培训活动，不仅需要培训相应的操作技术，也要注重相关操作规范的重要性，既有利于提升专业技能，也可以加强相关工作人员的责任心，进而有效的提升采集血液标本的质量和效率。

3.2.4 为相应的受检者进行相关知识的宣教

采集血液标本前为患者讲解采血和验血的重要性，并告知其采血过程中一些禁忌事项以及可能发生的问题等。进行采血时要多和患者沟通，分散其注意力，并指导患者深呼吸，放松全身紧张的肌肉并缓解紧张的情绪。

在此次实验中，对64例不合格血液样本的临床资料进行回顾性分析，结果提示产生血液标本临床检验不合格的因素有，18.75%采集血液位置不当凝血、31.25%溶血、9.38%标准量和要求差异大、6.25%使用抗凝管错误、4.69%标签错误、7.81%脂血、10.94%送检不及时、10.94%采集血液位置错误。因此要不断改进和完善相应的管理制度、确保血液样本及时送检和有效的储存、予以工作人员培训，有效的预防和减少血液标本临床检验不合格现象。

总而言之，分析血液标本临床检验中出现的不合格因素，并针对其开展有效的优化策略，有助于提升血液标本临床检验质量，减少不合格现象。

【参考文献】

[1] 黄平, 马明炎, 余登琼.血液检验标本不合格原因分析及处理措施[J].重庆医学, 2017, 46(22):3123-3124.[2] 杜娟.微生物检验标本不合格原因分析及质量控制对策探讨[J].河北医学, 2016, 22(4):693-695.[3] 林一民, 陆芸瑶, 蒋焦,等.某院不合格标本原因分析及对策方案[J].验医学与临床, 2016, 13(22):3158-3160.检

第四篇：临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

一

血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

二

红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

三

凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。

C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。

四

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

六

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

七

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。

八

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

九

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水

冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。

⑿

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。

脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送检；标本运送可采用注射器（已驱氧）或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。

第五篇：临床检验质量管理

（一）临床检验质量管理（20分）

3.3.1.1临床检验部门设置、布局、设备设施符合《医疗机构临床实验室管理办法》，服务项目满足临床诊疗需要，能提供24小时急诊检验服务。（5分）

3.3.1.1.1符合《医疗机构临床实验室管理办法》的要求，全院临床实验室集中设置、统一管理、资源共享。

①《医疗机构临床实验室管理办法》文件

② 科室设置平面图

3.3.1.1.2临床检验项目满足临床需要，对本院临床诊疗临时需要，而不能提供的特殊检验项目，可委托其他机构提供服务或多院联合开展服务，但应签署医院之间的委托服务协议，有质量保证条款。

①科室仪器设备一揽表

A.生化仪采购可行性报告

a.迈瑞生化仪可行性报告

b.日立7180生化仪可行性报告

B.电解质分析仪可行性报告

C.酶标仪采购可行性报告

D.化学发光分析仪采购可行性报告

E.血流变仪采购可行性报告

F.超高倍显微镜采购分析报告

G..血球仪采购分析报告

H.血凝仪采购分析报告

I.液基细胞（TCT）采购分析报告

J.电泳仪采购分析报告

②本院开展的临床检验项目一览表

②委托服务资料

*市妇幼保健院产前筛查新生儿筛查检验委托协议书

**临床检验委托协议书

**检验委托协议书

③微生物检验项目对院感控制及合理用药资料：

全院2013年1—4季度医院感染控制报表

全院2011年1—4季度医院感染控制报表

全院2012年1—4季度医院感染控制报表

全院2013年1—3季度医院感染控制报表

2013年上半年、下半年临床细菌耐药情况统计报表

2011年上半年、下半年临床细菌耐药情况统计报表

2012年上半年、下半年临床细菌耐药情况统计报表

2013年上半年、临床细菌耐药情况统计报表

医院感染控制监测原始记录本（2013—2013年）

3.3.1.1.3提供24小时急诊检验服务，明确急诊检验报告时间，临检项目≤30分钟出报告，生化、免疫项目≤2小时出报告。

①提供院办关于医技科室24小时值班制的文件通知（排班表）②关于急诊、平诊检验的报告时间（门口设承诺书）

3.3.1.1.4检验项目、设备、试剂及校准品管理符合现行法律法规及卫生行政部门标准的要求。

①检验项目一览表

②所有试剂的三证

③试剂采购申报表

④检验设备一览表

⑤所有设备的三证

3.3.1.2有实验室安全流程，制度及相应的标准操作流程，遵照实施并记录。（7分）

3.3.1.2.1有实验室安全管理制度和流程。

①制定实验室安全管理制度

医疗安全管理制度

实验室危险品管理规定

预防院内感染管理制度

工作人员安全防护制度

医务人员避免HIV感染的措施

实验室废物处置管理规定

安全事故应急处理预案

菌（毒）株保管和使用制度

②制定安全管理制度相应的流程

危险品、危险设施等意外事故预防流程

应急处理程序实验室生物污染处理及生物防护措施

③实验室安全记录资料

④实验室安全管理培训资料（课件、签到表、相片）

⑤科室安全管理小组文件

3.3.1.2.2实验室进行生物安全分区并合理安排工作流程以避免交叉污染。

①实验室的分区有明显的标识

②实验室入口及外候诊区制作明显的标识

③每个工作室门口要贴粘生物安全等级标志

④完善每天废弃标本的登记记录、废弃标本的处理流程

3.3.1.2.3实验室根据工作人员的不同性质，按照行业规范，进行充分的个人防护。实验室制订各种传染病职业暴露后的应急措施，并详细记录处理过程。

①制订各种传染病职业暴露后的应急预案

②配备相应工种的个人防护用品（如手套、口罩、帽子、护目镜等）

③完善警示标识

④职业暴露处置登记及随访记录

3.3.1.2.4实验室制定针对不同情况的消毒措施，并保留各种消毒记录。定期监控各种消毒用品的有效性。

①做好各种消毒记录

②各种消毒用品有效性的定期监控记录

3.3.1.2.5实验室废弃物、废水的处置符合要求。

①制定废弃物、废水的处理流程

②实验室废弃物、废水处置登记记录

3.3.1.3由具备临床检验专业资质的人员进行检验质量控制活动。（1）

①完善科室技术人员档案

身份证、毕业证、资格证、聘任证复印件

②科主任上岗培训合格证

③产前筛查、输血资质证书

④大型生化仪上岗证

⑤DHIV培训资质岗位培训证

⑥生物安全岗位合格证

3.3.1.4检验报告及时、准确、规范，严格审核制度。（5分）①制定室内质量控制制度、室间质量评价制度

②完善室内质控管理

A.生化室2013——2013年所有项目每月的室内质控图、失控记录分析、月质控小结

B.免疫室2013——2013年所有项目每月的室内质控图、失控记录分析、月质控小结

C.临检室2013——2013年所有项目每月的室内质控图、失控记录分析、月质控小结

③做好室间质量评价总结、分析

A.生化室2013——2013年所有项目每次的室间质量评价总结、分析，尤其对失控项目要做重点分析

B.免疫室2013——2013年所有项目每次的室间质量评价总结、分析，尤其对失控项目要做重点分析

C.临检室2013——2013年所有项目每次的室间质量评价总结、分析，尤其对失控项目要做重点分析

④日常工作要加强检验报告审核规定

3.3.1.5成立质量与安全管理小组，制定质量与安全管理计划和质量控制指标，开展质量管理工作。所有POCT项目均应开展室内质控和院内比对实验，并参加室间质评。（2分）

①成立科室质量管理小组文件

②成立科室安全管理小组文件

③成立我院床旁检验管理小组文件

④制定各专业组的标准操作规程

A.制定生化组各项目的的标准操作规程

B制定免疫组各项目的的标准操作规程

C.制定临检组各项目的的标准操作规程

D.制定细菌组各项目的的标准操作规程

⑤完善标准操作规程相应的表格记录

A.完善生化组相关的记录

B.完善免疫组相关的记录

C.完善临检组相关的记录

D.完善细菌组相关的记录

检验科另需完善的资料：

危急值报告制度、流程、制定检验危急值

生化检验的制度、流程、操作规程、表格

临床检验的制度、流程、操作规程、表格

免疫检验的制度、流程、操作规程、表格

细菌检验的制度、流程、操作规程、表格