实验十四水中总大肠杆菌的测定（大全5篇）

第一篇：实验十四水中总大肠杆菌的测定

实验十四水中总大肠杆菌的测定

1原理

总大肠杆菌群可用多管发酵法或滤膜法检测。多管发酵法的原理是根据大肠菌群细菌能发酵乳糖，产酸产气以及具备革兰氏染色阴性，无芽孢，呈杆状等有关特性，通过三个步骤进行检验，求得水样中的总大肠菌群数，实验结果以最可能数（most probable number），简称MPN表示。仪器

2.1 高压蒸汽灭菌器。

2.2 恒温培养箱，冰箱。

2.3 生物显微镜，载玻片。

2.4 酒精灯，镍铬丝接种棒。

2.5 培养皿(直径100mm)，试管(5×150mm)，小倒管，吸管(1，5，10ml)，烧杯(200，500，2000ml)，锥形瓶(500，1000ml)，采样瓶。

3培养基及染色剂的制备

3.1乳糖蛋白胨培养液：

将10g蛋白胨、3g牛肉浸膏、3g乳糖和5g氯化钠加热溶于1000mL蒸馏水中，调节pH为7.2－7.4，再加入1.6%溴甲酚紫乙醇溶液1mL，充分混匀，分装于试管（内有倒管）中，于121℃高压灭菌器中灭菌15min，贮存于冷暗处备用。

3.2三倍浓缩蛋白胨溶液：

按上述乳糖蛋白胨培养液的制备方法制备。除蒸馏水外，各组分用量增加至三倍。

3.3品红亚硫酸钠培养基

3.3.1贮备培养基的制备

于2000mL烧杯中，先将20-30g琼脂加到900mL蒸馏水中，加热溶解，然后加入

3.5g磷酸氢二钾及10g蛋白胨，混匀，使其溶解，再用蒸馏水补充到1000mL调节溶液pH至7.2-7.4。趁热用脱脂棉或绒布过滤，再加10g乳糖，混匀，定量分装于250或500mL

锥形瓶内，置于高压灭菌器中，在121℃灭菌15min，贮存与冷暗处备用。

3.3.2平皿培养基的制备

将上法制备的贮备培养基加热融化。根据锥形瓶内培养基的容量，用灭菌吸管按1：50比例吸取5%碱性品红乙醇溶液，置于灭菌空试管中；再按1：200比例称取无水亚硫酸钠，置于另一灭菌空试管内，加灭菌水少许使其溶解，再置于沸水浴中煮沸10min（灭菌）。用灭菌吸管吸取已灭菌的亚硫酸钠溶液，滴加于碱性品红乙醇溶液内至深红色再褪至淡红色为止（不宜加多）。将此混合液全部加入已融化的贮备培养基内，并充分混匀（防止产生气泡）。立即将此培养基适量（约15mL）倾入已灭菌的平皿内，再冷却凝固后置于冰箱内备用，但保存时间不宜超过2周。如培养基由淡红色变成深红色则不能再用。

3.4伊红美蓝培养基制备

于2000mL烧杯中，先将20g琼脂加到900mL蒸馏水中，加热溶解，再加入2g磷酸二氢钾及10g蛋白胨，混合使之溶解，用蒸馏水补充至1000mL，调节溶液pH值至7.2-7.4，趁热用脱脂棉或绒布过滤，加入2%伊红水溶液（0.4g伊红溶于20mL水中）20ml和0.5%美蓝水溶液（0.065g美蓝溶于13mL水中）13ml，再加入10g乳糖，混匀后定量分装于250或500mL锥形瓶内，于121℃高压灭菌15min，放冷至45℃左右，无菌操作下将此培养基适量倾入已灭菌的空平皿内，待冷却凝固后，置于冰箱内备用。

3.5革兰氏染色剂 3.5.1结晶紫染色液：

将20mL结晶紫乙醇饱和溶液（称取4-8g结晶紫溶于100mL95%乙醇中）和80mL1%草酸铵溶液混合并过滤。该溶液放置过久会产生沉淀，不能再用。

3.5.2助染剂：

将1g碘与2g碘化钾混合后，加入少许蒸馏水，充分振荡，待完全溶解后，用蒸馏水补充至300mL。此溶液2周内有效。当溶液由棕黄色变为淡黄色时应弃去。为易于贮备，可将上述碘与碘化钾溶于30mL蒸馏水中，临用前再加水稀释。

3.5.3脱色剂：95%乙醇。

3.5.4复染剂：将0.25g沙黄加到10mL95%乙醇中待完全溶解后，加90mL蒸馏水。4 测定步骤

4.1生活饮用水

4.1.1初发酵实验：在两个装有已灭菌的50mL三倍浓缩乳糖蛋白胨培养液的大试管或烧瓶中（内有倒管），以无菌操作加入充分混匀的水样10mL，混匀后置于37℃恒温箱内培养24h。

4.1.2平板分离：上述各发酵管经培养24h后，将产酸，产气及只产酸的发酵管分别接种于伊红美蓝培养基或品红亚硫酸钠培养基上，置于37℃培养箱内培养24h，挑选符合下列特征的菌落。

a.伊红美蓝培养基上：深紫黑色，具有金属光泽的菌落；紫黑色，不带或略带金属光泽的菌落：淡紫红色，中心色较深的菌落。

b.品红亚硫酸钠培养基上：紫红色，具有金属光泽的菌落；深红色，不带或略带金属光泽的菌落；淡红色，中心颜色较深的菌落。

4.1.3取有上述特特征的群落进行革兰氏染色 a、用已培养18－24h的培养物涂片，涂层要薄。

b、将涂片在火焰上加温固定，待冷却后滴加结晶紫溶液，1min后用水洗去。c、滴加助染剂，1min后用水洗去。

d、滴加脱色剂，摇动玻片，直至无紫色脱落为止（约20－30s），用水洗去。e、滴加复染剂，1min后用水洗去，晾干、镜检，呈紫色者为革兰氏阳性菌，呈红

色者为阴性菌。

4、复发酵实验：上述涂片镜检的菌落如为革兰氏阴性无芽孢的杆菌，则挑选该菌落的另一部分接种于装有普通浓度乳糖蛋白胨培养液的试管中（内有倒管），每管可接种分离自同一初发酵管（瓶）的最典型菌落1－3个，然后置于37℃恒温箱中培养24h，有产酸、产气者（不论倒管内气体多少皆作为产气论），即证实有大肠菌群存在。根据证实有大肠菌群存在的阳性管（瓶）数查表2-5“大肠菌群检数表”，报告每升水样中的大肠菌群数。

4.2 水源水

4.2.1 于各装有5ml三倍浓缩乳糖蛋白胨培养液的5个试管中（内有倒管），分别加入10ml水样；于各装有10ml乳糖蛋白胨培养液的5个试管中（内有倒管），分别加入

1ml水样；再于各装有10ml乳糖蛋白胨培养液的5个试管中（内有倒管），分别加入1ml 1：10稀释的水样。共计15管，三个稀释度。将各管充分混匀，置于37℃恒温箱内培养24h。

4.2.2平板分离和复发酵试验的检验步骤同“生活饮用水检验方法”。

4.2.3根据证实总大肠菌群存在的阳性管数，查附表2-6“最可能数（MPN）表”，即求得每100ml水样中存在的总大肠菌群数。我国目前系以1L为报告单位，故MPN值再乘以10，即为1L水样中的总大肠菌群数。

对污染严重的地表水和废水，初发酵试验的接种水样应作1：

10、1：100、1：1000或更高倍数的稀释，检验步骤同“水源水”检验方法。

如果接种水的水样量不是10ml、1ml和0.1ml，而是较低或较高的三个浓度的水样量，也可查表求得MPN指数，再经下面公式换算成每100ml的MPN值。

MPN值＝MPN指数×10（ml）/接种量最大的一管（ml）

表2-5大肠菌群检数表

接种水样总量300ml（100ml 2份，10ml 2份）

100mL水量的阳性瓶数

10mL水量的阳性管数

1L水样中大肠菌群数

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 103 7 11 14 18 22 27 31 36 40

1L水样中大肠菌群数8 13 18 24 30 36 43 51 60 69

1L水样中大肠菌群数18 27 38 52 70 92 120 161 230 230

表2-6 最可能数（MPN）表

（接种5份10ml水样、5份0.1ml水样时，不同阳性及阴性情况下100ml水样中细

菌数的最可能数和95％可信限值）

出现阳性份数 10ml 1ml 0.1ml 管 0 0 0 0 1 1 1 1 1 2 2 2 2 2 2 3 3 3 3 3 3 3 4 4 4 4 4 4

管 0 0 1 2 0 0 1 1 2 0 0 1 1 2 3 0 0 1 1 2 2 3 0 0 1 1 1 2

管 0 1 0 0 0 1 0 1 0 0 1 0 1 0 0 0 1 0 1 0 1 0 0 1 0 1 2 0

每100ml水样中 95％可信

细菌数的 最可能数 <2 2 2 4 2 4 4 6 6 5 7 7 9 9 12 8 11 11 14 14 17 17 13 17 17 21 26 22

<0.5 <0.5 <0.57 7

出现阳性份数 管 4 4 4 4 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5

管 2 3 3 4 0 0 0 1 1 1 2 2 2 3 3 3 3 4 4 4 4 4 5 5 5 5 5 5

管 1 0 1 0 0 1 2 0 1 2 0 1 2 0 1 2 3 0 1 2 3 4 0 1 2 3 4 5

每100ml水样中 95％可信限值

细菌数的 最可能数 26 27 33 34 23 34 43 33 46 63 49 70 94 79 110 140 180 130 170 220 280 350 240 350 540 920 1600 ≥2400

下限9 9 11 12 7 11 15 11 16 21 17 23 28 25 31 37 44 35 43 57 90 120 68 120 180 300 640

上限78 80 93 93 70 89 110 93 120 150 130 170 220 190 250 310 500 300 190 700 850 1000 750 1000 1400 3200 5800

下限 上限 10ml 1ml 0.1ml

<0.5 11 <0.5 11 <0.5 11 <0.5 15 <0.5 15 <0.5 13 1 1 2 2 3 1 2 2 4 4 5 5 3 5 5 7 9 717 21 21 28 19 25 25 34 34 46 46 31 46 46 63 78 67

第二篇：水中大肠杆菌的检测(多管发酵法)

水中大肠杆菌群书的检测（发酵法）

一、试验目的：

1.了解和学习水中大肠杆菌的测定原理和测定意义。

2.学习和掌握水中大肠杆菌的检测方法。

二、试验原理：

水的微生物学的检验，特别是大肠杆菌的检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。国家饮用水的标准规定饮用水中大肠杆菌群书每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。

水中大肠杆菌的检验方法，常用多管发酵发和滤膜法。多管发酵发可运用于各种水样的检验，但操作繁琐，需要时间长。滤膜法仅用于自来水和深井水。操作简洁快速，但不适用于杂质较多，易于阻塞滤孔的水样。

三、实验器材：

1.水样：自来水

2.试剂 ：乳糖蛋白胨发酵管内有倒置小套管三倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管瓶内有倒置小套管

伊红美蓝或复红亚硫酸钠琼脂平板革兰氏染液。3.仪器及其它用品：载玻片灭菌带玻璃塞空瓶灭菌吸管灭菌试管革兰氏染液显微镜香柏油二甲苯擦镜纸吸水纸灭菌三角瓶等

四、实验步骤：

第一步：

1.水样的采集

自来水洗将自来水龙头用酒精灯火焰灼烧灭菌，在开放水龙头取水流5ｍｈ，以灭菌山角瓶接水取样以备分析。

2.用发酵法检查大肠杆菌

（1）生活饮用水的检验

①初步发酵试验：在2个各装有50ｍｈ的3倍乳糖蛋白胨培养液的三角瓶中，以无菌操作各自加水样10ｍｈ。摇匀后，37℃培养24ｈ

第二步：

②平板分离：经24ｈ培养后。特产酸产气及只产酸的发酵管，分别划线接种于伊红美蓝琼脂平板（EMD培养基上），37℃培养18～24ｈ。大肠杆菌群在EMD平板上，菌落呈紫黑色，具有或略带或不带有金属光泽，或者呈淡紫红色，仅中心颜色较深，挑取符合上述特征的菌落进行涂片，革兰氏染色，镜检。

第三步 ：

③复发酵试验：将革兰氏阴性无芽孢杆菌的菌落的剩余部分接于单倍乳糖发酵管中，为防止遗漏，每管可接种来自同一初发酵管的平板上同一类型菌群1～3个，37℃培养24ｈ，如果产酸又产气者，即证实有大肠菌群存在。

第四步 ：

④报告：根据证实有大肠菌群存在的复发酵管的阳性管，查表，报告每升水样品中大肠菌群数（MPN）.

第三篇：5.水中大肠杆菌的检测(多管发酵法)

水中大肠杆菌群书的监测（发酵法）

一、试验目的：

1.了解和学习水中大肠杆菌的测定原理和测定意义。

2.学习和掌握水中大肠杆菌的监测方法。

二、试验原理：

水的微生物学的检验，特别是大肠杆菌的检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。国家饮用水的标准规定饮用水中大肠杆菌群书每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。

水中大肠杆菌的检验方法，常用多管发酵发和滤膜法。多管发酵发可运用于各种水样的检验，但操作繁琐，需要时间长。滤膜法仅用于自来水和深井水。操作简洁快速，但不适用于杂质较多，易于阻塞滤孔的水样。

三、试验材料：

1.培养基：乳糖蛋白胨培养基，伊红美蓝培养基

2.器材：灭菌三角瓶、无菌平皿、无菌吸管、无菌试管等。

四、试验内容

第一天 ：

1.水样的采集

自来水洗将自来水龙头用酒精灯火焰灼烧灭菌，在开放水龙头取水流5ｍｈ，以灭菌山角瓶接水取样以备分析。

2.用发酵法检查大肠杆菌

（1）生活饮用水的检验

①初步发酵试验：在2个各装有50ｍｈ的3倍乳糖蛋白胨培养液的三角瓶中，以无菌操作各自加水样10ｍｈ。摇匀后，37℃培养24ｈ

第二天 ：

②平板分离：经24ｈ培养后。特产酸产气及只产酸的发酵管，分别划线接种于伊红美蓝琼脂平板（EMD培养基上），37℃培养18～24ｈ。大肠杆菌群在EMD平板上，菌落呈紫黑色，具有或略带或不带有金属光泽，或者呈淡紫红色，仅中心颜色较深，挑取符合上述特征的菌落进行涂片，革兰氏染色，镜检。

第三天 ：

③复发酵试验：将革兰氏阴性无芽孢杆菌的菌落的剩余部分接于单倍乳糖发酵管中，为防止遗漏，每管可接种来自同一初发酵管的平板上同一类型菌群1～3个，37℃培养24ｈ，如果产酸又产气者，即证实有大肠菌群存在。第四天 ：

④报告：根据证实有大肠菌群存在的复发酵管的阳性管，查附录1或2，报告每升水样品中大肠菌群数（MPN）

五、思考题

记录试验结果，并对所测样品作出评价。

第四篇：《仪器分析实验》(离子选择性电极测定水中氟含量)

离子选择性电极测定水中氟含量

一、实验目的

1、掌握直接电位法的基本原理。

2、了解加入总离子强度调节缓冲溶液的意义和作用。

3、掌握用标准曲线法和标准加入法测定水中微量F离子的方法和实验操作。

二、实验原理

将两电极与酸度计相连，氟离子选择性电极为指示电极，双液接甘汞电极为参比电极，插入试液中组成工作电池。

在一定的条件下，电池电动势与氟离子活度的对数成线性关系：

2.303RT

E电池KlgaF F当保持待测液离子强度为一定值时

2.303RT

E电池KlgcF F本实验采用标准曲线法（标准加入法）进行测定。



三、仪器与试剂

1、试剂：

①.1×10-1mol/L氟离子标准溶液 ②.总离子强度调节缓冲溶液TISAB ③.未知水样

2、仪器： ①.精密酸度计或离子计 ②.氟电极 ③.饱和甘汞电极 ④.塑料烧杯、搅拌子和容量瓶等

四、实验步骤

1、仪器准备

2、水样中氟离子浓度测定（标准曲线法）

3、水样中氟离子浓度测定（标准加入法）

五、数据处理

六、思考题

1、氟电极在使用时应注意哪些问题？

2、本实验中加入总离子强度调节缓冲溶液的目的是什么？

3、为什么要把氟电极的空白电位洗至-300mv(视电极生产厂家不同数据略有差别)？

4、标准系列的测定为什么一定要由稀至浓？

5、电极响应时间是什么？如何缩短电极的响应时间？

离子选择性电极测定水中氟含量

6、标准加入法进行定量分析时应满足的条件是什么？

附：思考题答案

2、本实验中加入总离子强度调节缓冲溶液的目的是什么？

惰性电解质

TISAB

pH缓冲剂

(总离子强度调节缓冲溶

掩蔽剂

4、标准系列的测定为什么一定要由稀至浓？ 避免迟滞效应。

5、电极响应时间是什么？如何缩短电极的响应时间？

响应时间：从两电极刚接触溶液时起，到电池电动势达到稳定数值(E变化在±1mV之内)所需时间。

搅拌是缩短响应时间的有效方法。

6、标准加入法进行定量分析时应满足的条件是什么？

①Vx>>Vs ②Cs>>Cx

{

附：使用饱和甘汞电极的注意事项

1、使用前取下电极小胶帽

2、检查饱和KCl的液位和晶体

3、检查电极内有无气泡

4、检查多孔性物质是否畅通

5、电极插入液面位置要适中

6、电极应在一定温度下使用

7、为避免干扰可使用双液接型饱和甘汞电极

8、使用完毕电极应按要求保存

附：标准加入法

Ex = k + SlgCx

Cx, Vx 加入标准溶液Cs, Vs后

和并得

EkSlgCxVxCsVsVsVx

E|EEX|SlgCxVxCsVs(VsVx)Cx

离子选择性电极测定水中氟含量

当Vx>>Vs时

Cx10E/SCxVxCsVs(VsVx)CxE/SCsVsVsVx(10VxVxVs)1

CxCsVsVx(10E/S1)1

第五篇：水中挥发酚测定注意事项（最终版）

《生活饮用水卫生规范》中挥发酚的测定方法是4-氨基安替比林（4-AAP）分光光度法，样品处理需经过蒸馏，蒸馏样品量大，费时费电，而且显色后用氯仿萃取，氯仿毒性大，操作繁锁 ［1］用乙醚萃取，4-氨基安替比林直接分光光度法测定挥发酚，检出限完全满足生活饮用水卫生标准要求，而且操作简便快速，适用于日常检测工作的需要。

材料与方法

1.1 仪器与试剂

1.1.1 仪器 分光光度计。

1.1.2 试剂 酚标准溶液:1000mg/L（苯酚计），购买国家标准物质中心生产的酚标准溶液;酚标准应用溶液为临用前用无酚水稀释成1.00μg/ml;氢氧化钠溶液（2mol/L）;4-氨基安替比林溶液（20g/L），临用新配;铁氰化钾溶液（80g/L），临用新配;氨水-氯化铵缓冲溶液（pH9.8）:20g氯化铵，溶于100ml氨水中。

1.2 方法

1.2.1 标准曲线绘制 取8个500ml分液漏斗，每个分液漏斗中加入纯水250ml，然后分别加入酚标准应用溶液0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、6.00、8.00、10.00ml，加入5ml硫酸（1+1）溶液混匀，分别以30、10、10ml乙醚萃取，合并乙醚液于100ml分液漏斗中，分别以2.0ml、2.0ml、2.0ml氢氧化钠溶液（2mol/L）进行反提取，合并氢氧化钠于25ml比色管中，用硫酸溶液中和至中性后供测定。

1.2.2 测定 于标准及样品提取液（提取方法同标准品提取法）中各加入1.0ml氨水-氯化铵缓冲溶液（pH9.8）摇匀。加入1.0ml4-AAP溶液，摇匀.最后加入1.0ml铁氰化钾溶液，摇匀。用纯水稀释至10.0ml，混匀。放置10min，于510nm波长处，用2cm比色皿，空白管作参比，测量吸光度值A。以吸光度值A为纵坐标，酚标准含量值M（μg）为横坐标作线性回归。

1.2.3 结果计算

X=M V

X为水中挥发酚的含量（mg/L）;M为标准曲线上查得样品中挥发酚的含量（μg）;V为取水样的体积（ml）。结果与讨论

2.1 方法的精密度、回收率 在已知浓度（0.002mg/L）样品中分别加入不同量的酚标准溶液，用上述方法重复测定6次，计算方法的精密度，结果见表1。在浓度为0.002mg/L的水样分别加入不同量的酚标准溶液，进行加标回收率测定，结果见表2。

表1 加标水样测定的精密度（n=6）（略）

表2 加标水样的回收率（略）

2.2 方法的线性范围和最小检出限 该方法在检出范围为0.002～0.04mg/L内绘制标准曲线，结果表明该范围内有良好的线性关系，检出限为0.002mg/L，结 果见表3。

表3 标准曲线的回归方程及相关系数（略）

2.3 实际应用 利用乙醚萃取4-AAP直接分光光度法（新方法）测定102份井水、生活饮用水、水源水及地面水中的挥发酚，其中有10份检测结果值>0.002mg/L，与《生活饮用水卫生规范》中挥发酚的测定方法4-氨基安替比林萃取分光光度法（国标法）所测定的结果比较，经统计配对检验，结果见表4。

表4 两种方法测定结果（略）

2.4 样品萃取条件控制 酚类为弱酸性物质，在碱性条件下，以各种盐的形式存在于水中，几乎不溶于乙醚;在酸性条件下，以酸的形式存在，在水中溶解度很小，用乙醚几乎可以完全萃取。以硫酸调节样品呈酸性（pH<1.0）后，用乙醚萃取，以氢氧化钠水溶液调节pH>12再进行反提取，操作简便，避免蒸馏带来的耗时耗电。

2.5 4-AAP的净化 4-AAP经过苯净化处理后的空白测定值大为降低，能提高低浓度标准测定的精密度和准确度。

2.6 标准溶液的稀释及试剂配制用水必须用无酚的纯水，以便降低空白测定值。

参考文献:

［1］中华人民共和国卫生部卫生法制与监督司.生活饮用水卫生规范［S］.2001.酚类为原生质毒物，属高毒类物质，在人体富集时出现头痛、贫血，水中酚浓度达5g/L时，水生生物中毒。酚类污染物主要来自炼油厂、洗煤厂和炼焦厂等。

根据酚类能否与水蒸气一起蒸出，分为挥发酚（沸点在230度以下）与不挥发酚（沸点在230度以上）。

挥发酚类的测定方法有容量法、分光光度法、色谱法等。尤以4-氨基安替比林分光光度法应用最广，对高浓度含酚废水可采用溴化容量法。无论哪种方法，当水样中存在氧化剂、还原剂、油类及某些金属离子时，均应设法消除并进行预蒸馏。预蒸馏作用有二，一是分离出挥发酚，二是消除颜色、浑浊和金属离子等的干扰。

溴化容量法

测定原理：在含过量溴（由溴酸钾和KBr产生）的溶液中，酚与溴反应生成三溴酚，进一步生成溴代三溴酚。剩余的溴与KI作用放出游离碘，与此同时，溴代三溴酚也与KI反应生成游离碘，用硫代硫酸钠标准溶液滴定释出的游离碘，并根据其耗量，计算出以苯酚计的挥发酚含量。

计算公式：

挥发酚（以苯酚计，mg/L）=（V1-V2）×C × 15.68 × 1000/V

水中挥发酚测定注意事项

挥发酚的测定有很多种方法, 通常有蒸馏后的4-氨基安替比林比色法及蒸馏后溴化容量法紫外法、气相色谱法等，4-氨基安替比林氯仿萃取法适用于低浓度挥发酚的测定，该方法选择性高且稳定，市环境监测分析人员经过长期实验比对，在前人工作的基础上总结了水中挥发酚测定注意事项； 1.样品保存：酚类化合物在水中不稳定尤其是低浓度样品，所以必须加磷酸和硫酸铜固定剂，保证样品存储运输的有效性。

2.显色剂4-氨基安替比林容易受光照氧化变色，进而影响试剂空白，使测量空白偏高，须对配制好的4-氨基安替比林溶液进行纯化处理，可使用氯仿萃取法提纯，遵循少量多次萃取原则，每次使用5ml左右氯仿萃取三次，因为4-氨基安替比林易溶于氯仿，氯仿用量过大会大幅降低溶液中4-氨基安替比林的浓度影响显色；

3.蒸馏完后样品，需加入氯化铵缓冲溶液、4-氨基安替比林显色剂、铁氰化钾三种试剂进行反应显色，必须先加氯化铵缓冲溶液是样品保持溶液呈碱性pH约10±0.2，在铁氰化钾的存在下，4-氨基安替比林与酚类化合物反应，如果先加入4-氨基安替比林和铁氰化钾，两种试剂会在非碱性条件下反应，使实验失败;4.萃取结束后在分液漏斗底部加入一小块棉花，可防止收集萃取液过程中水溶液流入比色皿中,影响比色结果.