第一篇:溶血标本血钾的测定(范文)
利用溶血程度指数法校正溶血标本血清钾离子测定研究
钱高潮
黄旭东
丁志祥
金文涛
张琪
常州市中医医院检验科 常州
213003 摘要
目的对于一些不宜重新抽取血液的溶血标本,通过全自动生化分析仪中血清信息功能溶血程度H与血钾的相关性,探索一种简单方便的校正公式检测溶血标本中血钾浓度,供临床参考。方法
分析溶血程度H与血钾的相关性并建立回归方程,研究不同人群中H=50时血钾浓度是否存在差异并通过外加溶血标准液和制备溶血标本两种方法进行验证。结果 H与[K+]成正相关(r=0.9996),回归方程y=0.1068H+0.2789,当H在1~200(Hb约为95g/L)之间成线性;经单因素方差检验,新生儿、成年男性和成年女性之间差异无统计学意义;两种方法验证均表明计算得到的K+与实际检测值之间差异无统计学意义,理论值平均相对误差3.0%,最大相对误差7.0%。结论 通过全自动生化分析仪中血清信息功能溶血程度H和公式K未=K
溶-0.1068H-0.2789能比较准确的测算出溶血标本中真实血钾浓度,这个公式不受患者年龄、性别的影响。关键词
溶血; 溶血程度H;血钾
鉴于人红细胞脆性较大,多种原因可使标本发生不同程度的溶血,直接影响测定结果的准确性[1-5]。溶血会对许多检验结果产生影响,尤其在血钾检测中影响非常明显,因为人体体液中98%的钾分布于细胞内液,细胞外液只占2%,钾在组织细胞内的平均浓度为150mmol/L,红细胞内钾浓度为105mmol/L,血清中钾浓度仅为3.5~5.5mmol/L,红细胞内钾浓度约为血清钾浓度的20倍,溶血后红细胞中的钾会释放到血清中,引起血钾浓度的升高,因此标本溶血是血钾误差的主要原因之一[6-8]。溶血标本为一类不合格标本,对于因采集、运输、保存不当等原因造成溶血必须查找原因,避免或降少溶血的发生,而对于容易溶血的标本(如儿科标本)、有红细胞结构异常的标本,血钾的检验结果很难保证。解决该问题的关键在于检验与临床的密切沟通。但有时临床有不方便立即复查的情况,以及其他因素不宜重新抽取血液标本时,如果能探索出一个根据标本异常情况程度对检验结果进行校正的方法,给临床一个比较准确的报告,对临床将非常有意义。溶血后标本血钾的增高主要是由于红细胞被破坏而造成红细胞内的血钾释放所致。血清中血红蛋白的含量能直接反映出标本的溶血程度。如能通过检测血清中血红蛋白的含量,计算出因溶血造成血钾增高的部分,检测的血钾减去因溶血增高的血钾就能消除溶血对血钾的影响。现在配有血清信息功能的生化分析仪(如日立、罗氏、岛津系列生化分析仪)均可通过血清信息中溶血程度(Hemolytic 简写:H)指数法直接测定Hb, 试剂单一稳定, 自动简便[9]。鉴于上述思路,我们对溶血标本血钾的测定进行了研究,以期找到一种比较方便的检测方法。
材料与方法
1.1 标本来源 江苏省常州市中医医院2010年6月至2010年12月住院新生儿40例(1~20天)、成年男性40例(20~68岁)、成年女性40例(21~73岁)。
1.2 试剂与主要仪器:自配Tris-HCl缓冲液(pH7.4);6.0mmol/LKCl标准液;胆红素标准液(上海生物制品研究所提供);日立7600全自动生化分析仪;-70℃冰箱(SANYO)
1.3 溶血程度H及血钾的测定
按日立7600全自动生化分析仪操作说明书要求设定血清信息使用项目样品吸量为10µl, Tris-HCl缓冲液吸量为190µl, 采用速率法, 反应时间10分钟。设定血清信息参数C=1,B=121000;血钾的测定选用离子选择电极间接法。
1.4 溶血程度H与血钾相关性
取抗凝血,离心去除血浆,用生理盐水洗涤红细胞3次,以压积红细胞的容积为准,加入等体积的生理盐水,-70℃冻存1小时,立即放入37℃水箱5分钟,反复冻溶2次,3000转离心5分钟,分离出Hb溶液,并用生理盐水调节至H=200的标准液, 然后用生理盐水稀释成H为150,100,75,50,45,40,35,30,25,20,15,10,8,6,5,4,3,2,1共20种浓度Hb溶液,检测血钾浓度(当H<20时,用6.0mmol/L KCL标准液替代生理盐水进行稀释,血钾浓度通过计算得到)。
1.5 不同人群红细胞溶血H=50时血钾的测定
选取我院2010年6月至2010年12月住院新生儿40例、成年男性40例、成年女性40例标本,制备Hb方法同上,将H调整为50,检测各标本血钾浓度。
1.6 验证试验1 选取上述120例标本(新生儿40例、成年男性40例、成年女性40例标本)进行血清钾浓度检测,制备H=200的Hb标准液,向上述血清中加入不同比例的Hb标准液,检测标本溶血程度H及血钾浓度。
1.7 验证试验2 选取上述120例标本(新生儿40例、成年男性40例、成年女性40例标本)进行血钾浓度检测,同时吸取少量红细胞到血清中,反复冻溶2次(方法同上),3000转离心5分钟,吸取上清,检测标本溶血程度H及血钾浓度。
1.8 统计学分析采用SPSS 17.0统计软件包对检测结果进行分析。数据资料呈正态分布,以均数±标准差表示;多组间比较采用方差分析,组内两两比较采用SNK-q检验,配对资料采用配对t检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
结果
1.溶血程度H与血钾相关性
以H为横坐标,K+浓度(mmol/L)为纵坐标,经统计学处理H与K+浓度成正相关(r=0.9996),回归方程K+=0.1068H+0.2789,当H在1~200(Hb约为95g/L)内成线性,见图1。2520K mmol/Ly = 0.1068x + 0.27892R = 0.9993***0H
图1 溶血程度H与血钾相关性
150200250
2.不同人群红细胞溶血H=50时血钾的测定
由于H和K+浓度成线性关系,故选择H=50时,检测K+浓度,40例新生儿K+浓度6.02±0.42;40例成年男性K+浓度5.92±0.39;40例成年女性K+浓度5.84±0.34;经单因素方差检验,三组间差异无统计学意义(F=2.306,P=0.104)。验证公式1 将H=200的标准Hb液按1:n的比例加入到已知K+浓度的不同血清标本中,按公式K
理论
= [n/(n+1)]×K++0.1068H+0.2789可得到理论上K+浓度,并将理论上K+与实际检测值之间进行配对t检验,统计结果表明理论上K+与实际检测值基本一致(t=1.263,P=0.209),无统计学差别,理论值平均相对误差3.0%,最大相对误差7.0%。表1为1例标本(K=4.52 mmol/L)加入不同比例H=200的标准Hb液后理论K和实际K的比较,其他标本结果类似。表2为20例不同样本加入1/9体积H=200的标准Hb液后理论K与实际K的比较,其余标本均得到类似结果。
表1 H=200的标准Hb液不同稀释度时理论K与实际K浓度的比较
n 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 H 98 65 49 38 32 28 26 24 20 19 17 15 14 13 12 12 11 11 10 10 理论K 13.01 10.23 8.90 7.95 7.46 7.14 7.01 6.86 6.48 6.42 6.24 6.05 5.97 5.89 5.80 5.81 5.72 5.74 5.64 5.65 实际K 13.32 10.25 9.21 8.05 7.16 7.21 7.15 6.9 6.58 6.34 6.15 5.98 5.87 5.55 5.65 5.81 5.64 5.59 5.42 5.35 相对误差% 2.36 0.15 3.34 1.20-4.23 0.92 1.95 0.58 1.48-1.22-1.43-1.22-1.72-6.05-2.62-0.08-1.46-2.61-4.08-5.64 注:将H=200的标准Hb液按1:n的比例加入已知K+浓度为4.52mmol/L的血清标本中,理论K+= [n/(n+1)]×K++0.1068H+0.2789
表2 不同血清样本中加入标准Hb液后理论K与实际K浓度的比较 n 标本原始浓度
理论K
实际K
相对误差% 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 3.45 5.26 4.35 4.65 5.68 4.12 3.89 3.58 3.69 4.23 4.96 4.12 3.67 3.48 3.76 4.35 4.78 4.62 3.95 4.05 5.26 6.88 6.07 6.34 7.26 5.86 5.65 5.37 5.47 5.96 6.61 5.86 5.45 5.28 5.53 6.07 6.45 6.31 5.71 5.80 5.04 6.78 6.21 6.43 7.45 5.76 5.43 5.68 5.52 6.25 6.48 6.28 5.29 5.19 5.65 5.81 6.58 6.12 5.89 5.85-4.27-1.53 2.33 1.48 2.52-1.70-4.07 5.42 0.89 4.69-2.07 6.72-3.08-1.77 2.05-4.39 1.95-3.07 3.14 0.94 注:将H=200的标准Hb液按1:9的比例加入已知K+浓度的20个血清标本中,理论K= 0.9×K+ +0.1068H+0.2789 验证公式2
溶血标本中标本原来的血清K+浓度应该为实际测得的K+浓度减去因溶血造成K+浓度升高部分即K
未
=K
溶-0.1068H-0.2789,并将计算得到的校正后血清K+浓度与实际检测值之间进行配对t检验,统计结果表明溶血标本校正后K+浓度与未溶血标本实际测得K+浓度基本一致,差异无统计学意义(t=0.165,P=0.869),校正值平均相对误差2.9%,最大相对误差6.9%。
6.56.05.5校正后血清K浓度5.04.54.03.53.03.03.54.04.55.0实际血清K浓度5.56.06.5
图2 校正后血清K浓度与实际血清K浓度的比较
讨
论
血清信息是对血清的混浊程度(Lipemi 简写:L)、溶血程度(Hemolytic简写:H)、黄疽程度Icteric 简写:I)的测定,并提供指数的一种功能, 利用无色透明试剂分别与胆红素标准液, 人溶血液标准, 浊度标准液按一定比例混合,用不同波长扫描吸光度。日立7600全自动生化分析仪利用这个原理当采用血清信息功能后仪器在(λ1/λ2)480/505,570/600,660/700(nm)自动测定I、H、L。在570/600 nm处胆红家不干扰Hb的吸收,但混浊则干扰。本法利用一个计算式来校正混浊干扰并计算H指数, 计算式为:H=1/C×(△EH-B×△EL),其中的△EH,△EL分别是570/600, 660/700(nm)处测得的吸光度(ABS×104),B是吸收光谱中求出的一种补偿系数,C为H指数的输出系数,当C=1时,H指数为校正混浊后的血浆Hb吸光度。
血钾测定对临床疾病的诊治非常重要,常涉及危重病人的处理。临床要求快速而准确地测定钾离子浓度。由于血清中钾浓度为3.5~5.5mmol/L,范围较窄,许多因素均会引起血钾的明显误差而误导临床医生诊治。其中标本溶血则是血钾误差的主要原因之一。有研究表明红细胞内钾的浓度对血红蛋白的α-螺旋和折叠构象及功能有关键作用[10]。红细胞的钾浓度和血红蛋白含量均较为稳定,红细胞内钾的浓度高于血浆水平近20倍[11]。标本发生溶血时,血钾增高的误差主要来源于红细胞内钾。故溶血程度与钾的误差值有一定关系。首先我们以H作为溶血程度指标探讨血红蛋白与钾之间相关性,结果证实,H与K+浓度显著相关且成线性关系。当H在1~200(Hb约为95g/L)内成线性,可惜仪器给出的H灵敏度(H=1)稍低,不过从回归方程K+=0.1068H+0.2789可以看出H灵敏度对K+浓度影响不大,在0.1mmol/L左右(H=±1),与血清中钾浓度3.5~5.5mmol/L相比,误差在5%之内,不会造成大的影响。另外需要说明的是由于K+浓度在小于2mmol/L时测量的值已经不准确,因此当H<20时,我们采用6.0mmol/LKCL标准液替代生理盐水进行稀释,血钾浓度通过计算得到。H与K+浓度这种线性关系是否受年龄、性别影响,特别是新生儿是否和成年人一样。通过对新生儿、成年男性和成年女性各40例标本进行统计分析它们之间没有差别。说明这个线性公式适合不同的人群。限于贫血种类较多,收集标本数目有限,对于贫血病人未作专门讨论,通过对失血性贫血和缺铁性贫血标本的初步研究H与[K+]的相关性与正常人相比没有差别,但仍有必要收集更多标本和更多种类贫血作进一步研究。通过外加溶血标准Hb液和制备溶血标本的方法进行验证通过公式计算得到的[K+]与实际测得的值之间没有统计学差别,说明完全可以通过公式计算来校正溶血标本中[K+]。通过对大量的生化标本(真空采血管正常采集)进行检测发现H均为0,因此公式K未=K溶-0.1068H-0.2789中H无需纠正。Vincenzo Brescia等[12]近来发表了一篇有关溶血标本血钾检测纠正方法的报道,但其报道的方法需先检测并计算出血浆游离血红蛋白(fsHb)浓度,然后通过公式才能校正血钾浓度,步骤复杂,不易推广[12]。本文所采用的H测定法,只需在全自动生化分析仪上同时直接测定溶血标本的[K+]和H值,便可直接在公式K未=K溶-0.1068H-0.2789下计算,无需制备标准液和其它显色剂,价廉、快速、操作简便,且具有较好的重复性和线性范围,对溶血程度的判定尤为适宜。
综上所述,如果临床检测血钾的标本为溶血标本,当球形红细胞增多症等易溶因素、凝血机能障碍以及其他因素不宜重新抽取血液标本时,使用公式K未=K溶-0.1068H-0.2789校正,能提供与实际值较为接近的测定结果,可作为一种补救措施。因此,在不便重采标本补测时,数学校正成为提供临床参考的有效方法。参考文献
[1] Evliyaoğlu O, Toprak G, Tekin A, et al.Effect of pneumatic tube delivery system rate and distance on hemolysis of blood specimens.J Clin Lab Anal, 2012, 26:66-69.[2] Tiwari AK, Pandey P, Dixit S, et al.Speed of sample transportation by a pneumatic tube system can influence the degree of hemolysis.Clin Chem Lab Med, 2011,Nov 10.[Epub ahead of print] [3] Tamechika Y, Iwatani Y, Tohyama K, et al.Insufficient filling of vacuum tubes as a cause of microhemolysis and elevated serum lactate dehydrogenase levels.Use of a data-mining technique in evaluation of questionable laboratory test results.Clin Chem Lab Med, 2006,44:657-561.[4] G Lippi, GL Salvagno, M Montagnana, et al.Influence of hemolysis on routine clinical chemistry testing.Clin Chem Lab Med, 2006,44: 311-316.[5] Lippi G, Blanckaert N, Bonini P, et al.Haemolysis: an overview of the leading cause of unsuitable specimens in clinical laboratories.Clin Chem Lab Med, 2008,46:764-772.[6]Hawkins RC.Poor knowledge and faulty thinking regarding hemolysis and potassium elevation.Clin Chem Lab Med, 2005,43:216-220.[7]Hawkins RC.Correction and reporting of potassium results in haemolysedsamples.Ann Clin Biochem, 2006,43:88-89.[8] Hawkins R.Variability in potassium/hemoglobin ratios for hemolysis correction.Clin Chem, 2002,48:796.[9] JZ Ji,QH Meng.Evaluation of the interference of hemoglobin, bilirubin, and lipids on Roche Cobas 6000 assays.Clin Chim Acta, 2011;412: 1550-1553.[10] Mahato M, Pal P, Kamilya T, et al.Influence of KCl on the interfacial activity and conformation of hemoglobin studied by Langmuir-Blodgett technique.Phys Chem Chem Phys,2010, 12:12997~13006.[11] Koeppen BM, Stanton BA.Potassium, calcium and phosphate homeostasis in Berne and Levy, eds.Principles of Physiology.4th ed.Philadelphia: Mosby, Inc.Editions Similia;2005.[12] Vincenzo Brescia, Marilina Tampoia, Antonella Mileti.Evaluation of Factitious Hyperkalemia in Hemolytic Samples: Impact of the Mean Corpuscular Hemoglobin Concentration.Lab Med, 2009, 40: 224-226.Determination of Plasma Potassium Concentration in Hemolytic Specimen by Hemolytic in Automatic Analyzer QIAN Gao–chao, HUANG Xu-dong, DING Zhi-xiang, JING Wen-tao, ZHANG Qi Department of Clinical laboratory, Changzhou TCM Hospital Affiliated to Nanjing TCM university, No25, Changzhou 213003, China 【Abstract】
Objective
to explore a simple correction formula for detection of actual plasma potassium concentration in hemolysis specimen by the hemolytic(H)in automatic analyzer Methods
Studying on the relationship of hemolytic and plasma potassium and establishing an regression equation to analyze potassium concentration in different people when H=50 and be confirmed by two models.Results
H and [K+] concentration was significantly correlated(r = 0.9996)and the regression equation y = 0.1068H +0.2789, in which H from 1 to 200(Hb of about 95g / L)in a linear, and sensitivity to H=1;There was no significant difference in potassium concentration when H=50 among newborns、male and female patients by one-way ANOVA test;It showed that the calculated value of [K+] and the actual value of [K+] was no significant difference, in which the theoretical value of the average relative error was 3.0% and the maximum relative error was 7.0%.Conclusion
Using the formula to correct the test value of plasma potassium can rapidly get actual plasma potassium concentration in hemolytic specimens from different ages and gender.【Key words】
hemolysis;Hemolytic;plasma potassium;
第二篇:标本溶血原因分析
标本溶血原因分析及对策
我院于2004年3~7月份临床科室对采血的血样标本的溶血情况进行了分析,对溶血产生的原因提出了相应的预防措施,现报告如下。1 临床资料
我院自2004年3~7月份共采集血标本6420例,溶血50例,对每一份标本溶血的原因进行分析,分别对病人的情况、抽血所用器具、抽血操作方法及标本的存放、送检等各方面进行追查。不同原因造成的标本溶血情况,见表1。
表1 不同原因造成的标本溶血50例情况原因 略 通过调查发现造成标本溶血的原因主要有以下几点。
2.1 操作不当 在发生溶血的50例标本中,大部分与抽血困难有关。其低血容量25例,新生儿10例。(1)给这些病人采集血样标本时,操作者多将止血带扎的时间过长、过紧,再加上用力拍打穿刺部位。(2)将空针一次抽到510ml处,等待血液靠负压进入注射器中。(3)由于针头固定不好,使针头斜面贴于血管壁上,造成血液中混有大量的泡沫。(4)操作者没有按操作规程执行,将血沿血管壁缓慢注入,而是注入速度太快。造成泡沫与血液一同注入试管,从而造成溶血。(5)操作者过于用力晃动标本瓶,造成溶血。
2.2 标本容器不合格 空针质量不过关,密封不好,造成溶血。
2.3 标本冻结 将标本置于窗台上,没有及时送检,由于温度太低造成冻结。3 对策
(1)加强操作者的责任心,一定按操作规程操作,将所采血沿血管壁缓慢注入,同时要轻轻摇匀。(2)尽量及时送检,要放在远离气低温的地方。(3)在操作时,尽量减少扎止血带的时间,不要用力拍打所抽部位,如:血管隐藏不清。可用热敷,让病人休息片刻,重新选择穿刺部位。(4)注意 加强医药管理,防止劣质空针的采用。
第三篇:血标本管理程序
血标本管理程序
为了执行《临床输血技术规范》第三章“受血者血样采集与送检”有关规定,确保血液样本的有效性,防止发生差错事故,以及便于追踪调查,特制定本制度。
6.1 预防患者血标本张冠李戴,最有效的方法是为每个患者配戴标明患者姓名和病案号的腕环或腕带(该方法在国外及国内一些大中城市已普遍应用)。
6.2 血标本由输血患者所在科室采集,不得由别的科室代为采集。住院患者采集血标本后又转科或转床,此时需要输血应重新采集血标本。已执行给患者配戴腕带的医院可以例外。6.3 如果患者未配戴腕带,又不知血型者,应严格遵循两次采集血标本的规定,即检验科做正定型,输血时由输血科复查正定型,加做反定型,或者备血时由输血科做血型鉴定,不配血。输血时,重抽血标本做血型鉴定及交叉配血试验。如发现两次血标本血型不一致或者血标本血型与《临床输血申请单》所填写血型不一致时应通知所在科室重抽血标本。6.4 采集血标本时,采血护士必须认真核对受血者身份,如果患者是清醒的,应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清,通过询问患者的亲属确认患者身份。只有当《临床输血申请单》与患者腕带的资料完全一致时方可采集血标本,二者有矛盾时不得采集血标本,不得使用来源不明或者无人对其来源负责的血标本进行交叉配血。绝对禁止通过床头卡来核实患者身份。使用条形码的医院,应在采血后将标有患者姓名、性别、年龄、住院号、检测项目的条形码标签贴在采血试管上并与患者腕带资料仔细核对。
6.5 血标本采集后,采血护士必须在离开患者床边之前在血标本标签上标明患者姓名、病案号及血标本采集日期(应强制执行该项规定)。不要在采血前贴上标签,一位医护人员不得同时采集两位患者的血标本,因为这样做存在将血样注入到错误的试管中的危险。使用血标本专用试管采集的,应将试管上两个相同的号码条其中一个粘贴在该患者的《临床输血申请单》上。最好由采血者和患者在申请单上签名共同确认血标本的正确性。若患者不能签名时,则应说明理由,并请随同人员见证并签名。保证采血和填写标签人员由同一人完成,出现任何差错均由同一人负责。推荐标签在计算机上完成并打印,以避免书写错误。
6.6 贴有标签的血标本连同输血申请单经核对后由医护人员送输血科,双方仔细核对患者信息,包括患者姓名、性别、年龄、病案号及试管与输血申请单的号码是否一致等,并签名确认。不得由非医护人员送血标本。
6.7 输血科工作人员在检验前必须确认试管上的标签与输血申请单上的资料一致,如有疑问应重新采集血标本,不得电话询问后就擅自修改错误的标签及输血申请单。6.8 血标本须不抗凝或EDTA抗凝(大约需5ml血液),且要做到八不收: 6.8.1 血标本无标签或填写不清不收; 6.8.2 血标本与申请单所填项目不符不收; 6.8.3 血标本量少于3ml不收;
6.8.4 血标本被稀释不收(如从输液管获取血标本,应以生理盐水冲注,并将首先抽取的5ml血液弃去,以防血标本被稀释); 6.8.5 血标本溶血不收(溶血性疾病可例外,为了防止对溶血结果误判为阴性,建议反定型及交叉配血的红细胞中加入适量EDTA盐水溶液。由于EDTA能够螯合补体激活所需的Mg和Ca,故可阻断补体活化引起的红细胞破坏,即溶血;或者在试验前后作溶血程度的比较)。6.8.6 用肝素治疗者的血标本未用鱼精蛋白对抗使之凝结不收; 6.8.7 非医护人员送血标本不收;
6.8.8 用右旋糖酐、聚乙酰吡咯酮(PVP)等大分子物质治疗后采集的血标本未作标记说明不收(如已标记说明应将红细胞洗涤)。脂肪乳可干扰配血实验结果,在输用脂肪乳之前应抽取血标本备用。
6.9 献血者的血标本必须从与血袋相连的塑料管中获得。
6.10
受血者配血试验的血标本必须是输血前3天之内的,或血标本能代表患者当前的免疫学状态。※
6.11
血液发出后,受血者和献血者的血标本保存于2~6℃冰箱,至少7天,以便对输血不良反应追查原因。
输血完毕后,医护人员将输血记录单(交叉配血报告单)贴在病历中,并将血袋送回输血科,放入2~6℃冰箱至少保存1天。2+
2+
第四篇:标本溶血处理流程20110531
上门体检客户血标本溶血处理流程
为进一步做好精心优选寿险客户上门核保体检服务,预防血标本溶血情况的发生给客户带来的不便,特拟定标本溶血问题处理流程,以规范操作。
一、合作检验机构发现标本溶血和检验结果异常,首先向亲情健康客服报告*,客服人员接到报告立即向亲情健康医务主任*报告,由医务主任向合作检验机构了解可能的溶血原因和对检验结果的影响程度等相关问题;
二、亲情健康医务主任致电人保核保人员报告事情经过,并从医学临床角度提出是否需要复检的建议;
三、人保核保人员根据检验结果对核保结论的影响程度,初步作出是否重新采血的决定,将意见向慕再和总公司汇报,听取意见和建议,经过合作方协商研究,最后做出是否复检和复检项目的决定,如需重新采血,致电告知明亚保险经济公司客服*;
四、由明亚保险经济公司客服人员通知当地业务经理,转告客户并解释重新采血的原因,征得客户的同意;
五、人保寿险核保人员收到明亚保险经济公司业务经理客户同意复检的反馈,邮件告知亲情健康客服人员,确定客户复检预约方式,由客户再次与亲情健康预约复检,或由亲情健康致电客户或业务员,客户需了解原因时解释核保要求重新采血的理由和决定,并约定重新采血的时间。
六、亲情健康协调医核员对客户进行重新采血送检,并将化验结果数据录入慕再核保系统。原件快递人保。
七、上门体检的医核人员在未明确标本溶血原因的情况下,不得擅自向任何人员解释。
八、标本溶血原因以外的其它任何标本问题,也按上述流程处理。
注:
1、亲情健康客服电话:4006509679
2、明亚保险经济公司客服电话:4008110606
2011-5-31
第五篇:血标本采集错误演练
标本采集错误的应急演练
时间:2015-2-14 地点:外科大楼8楼产科病房
参加人员:主班()责护()护士()护士()病人()病人()家属()
主班接到医嘱,3床()查凝血功能,和责护核对无误后粘贴采血管,并登记在标本采血登记本。责护(),拿着采血单到病房:3床(),你今天在门诊抽血,查了血常规和肝肾功,没有查凝血功能。办了住院,我们就不允许外出外宿,请你明天早上七点务必要在病房,我们护士会到床边给你采血的。
护士():三床()是吧,现在我给你抽血了? 病人处于半睡半醒状态:是的。责护进行采血,采血毕.三床按呼叫器,护士赶到床边询问:您好,请问你有什么事吗? 病人回答:昨天我的责任护士告诉我今天早上,我要抽血化验,昨天晚上家里有事就回去了,刚来,麻烦你现在给我抽血吧。
护士()和护士()核对后发现3床的凝血功已抽,并已经送检了,去病房询问,原来早上抽血时加3床病人睡在三床了。护士()电话联系检验科:你好,检验科吗?我们是产科,刚送去的3床()的凝血功你们化验了吗?
检验科:正在准备化验呢,有什么事吗? 护士():发生采血错误,麻烦你们暂停化验,并将此标本丢弃,我们马上再抽血送检,谢谢!
护士()重新打印了3床的凝血功能的条码,粘贴试管,和护士()核对无误后去病人床边,核对无误后给3床()抽血,并及时送检。
护士()来到加3床床边:不好意思,早上抽血的时候,您躺在3床的床上,我没有仔细核对你的身份信息,就抽成你的了,我们已经给检验科打电话暂停化验了。你不要太紧张。
加3床:没事,晚上家属没地方睡,3床回去了,所以我就睡在她的床上了。护士():钟护士长,刚才发生一起标本采集错误,现在向您汇报。
钟护士长:通知全科护士,今天下午5:30学习,共同讨论分析标本采集错误的原因并提出整改措施,现在先进行网报。演练结束!